Réduction bactérienne du système de classement rotatif par rapport au système de classement manuel utilisant différents irrigants dans les molaires primaires

La taille de l'échantillon calculée de l'étude sera de 22 participants pour chaque groupe à un niveau de signification de 5 % et une puissance de 80 %, 30 participants pour chaque groupe (10 pour la taille de l'échantillon sera augmentée pour compenser les données incomplètes et pour augmenter l'étude de chaque sous-groupe). au pouvoir

Regroupement:

30 enfants seront sélectionnés à la Clinique Pédiatrique, Faculté de Dentisterie, Université de Mansoura. l'enfant doit avoir 2 molaires primaires controlatérales indiquées pour une pulpectomie. Les enfants seront répartis au hasard en 2 groupes principaux selon le type de lime utilisée dans la préparation canalaire : Groupe I avec lime manuelle. Groupe II avec lime rotative.

Ensuite, les enfants seront sous-regroupés au hasard en fonction de l'irrigant qui sera utilisé :

Groupe IA et groupe II A avec solution saline normale. Groupe IB et groupe II B avec neem. Groupe IC et groupe II C avec NaOCl. procédures cliniques :

1. Prise en charge psychologique de l'enfant
2. Radiographie pour les critères d'inclusion
3. La dent procédurale est anesthésiée et isolée avec une digue en caoutchouc. La dent et la digue adjacente seront désinfectées avec une teinture de solution d'iode
4. . Tous les tissus carieux seront enlevés à l'aide d'une fraise ronde stérilisée et un accès au canal radiculaire sera effectué.
5. Lors de l'accès, le canal distal des molaires primaires mandibulaires et le canal palatin des molaires primaires maxillaires seront choisis pour la procédure d'échantillonnage.
6. Une broche stérile sera insérée pour obtenir le contenu du canal radiculaire puis une pointe de papier stérile insérée dans le canal radiculaire et sera laissée pendant 1 min 19. La pointe de papier sera retirée avec une pince stérilisée qui sera immédiatement transférée dans un tube contenant un milieu de transport (eppendrof contenant 200 μl de milieu de bouillon nutritif).
7. L'intérieur du groupe 1 sera préparé avec des fichiers manuels l'irrigation avec une solution saline en IA, avec du neem en IB et l'irrigation avec NaOCl en IC.
8. Dans le groupe II sera préparé avec des limes rotatives l'irrigation avec une solution saline en IIA, avec du neem en IIB, avec NaOCl en IIC
9. La pointe en papier stérile sera introduite dans le canal radiculaire et y sera laissée pendant 1 min, la pointe en papier sera retirée avec une pince stérilisée puis transférée dans un tube contenant le milieu de transport 19.
10. L'échantillon post-irrigation et l'échantillon de pré-préparation seront transférés au laboratoire microbiologique.
11. Les canaux seront limés avec un matériau d'obturation (Metapex), puis la couronne sera restaurée avec de l'inomar en verre et une couronne en acier inoxydable.

Procédures de laboratoire :

1. Tous les échantillons seront incubés sur gélose au sang en aérobie et en anaérobie à 37 °C pendant 48 à 72 heures et strieront de manière aspectique les plaques 19,20.
2. Identification des bactéries par caractéristiques de culture, examen microscopique et réaction biochimique 21.
3. Le nombre d'unités formant colonies sera compté (UFC/ml)