Riduzione batterica del sistema di limatura rotante rispetto a quello manuale utilizzando diversi irriganti nei molari primari

La dimensione del campione calcolata per lo studio sarà di 22 partecipanti per ciascun gruppo con un livello di significatività del 5% e una potenza dell'80% di 30 partecipanti per ciascun gruppo (10 per La dimensione del campione verrà aumentata per compensare i dati incompleti e per aumentare lo studio in ciascun sottogruppo) per dare potenza

Raggruppamento:

30 bambini saranno selezionati dalla Clinica Pediatrica, Facoltà di Odontoiatria, Università di Mansoura. il bambino dovrebbe avere 2 molari primari controlaterali indicati per la pulpectomia. I bambini verranno divisi in modo casuale in 2 gruppi principali in base al tipo di lima utilizzata nella preparazione del canale radicolare: Gruppo I con lima manuale. Gruppo II con lima rotativa.

Quindi i bambini verranno raggruppati in modo casuale in base all'irrigante che verrà utilizzato:

Gruppo IA e gruppo II A con soluzione salina normale. Gruppo IB e gruppo II B con neem. Gruppo IC e gruppo II C con NaOCl. procedure cliniche:

1. Gestione psicologica del bambino
2. Radiografia per i criteri di inclusione
3. Il dente procedurale viene anestetizzato e isolato con diga di gomma. Il dente e la diga di gomma adiacente verranno disinfettati con tintura di soluzione di iodio
4. . Tutto il tessuto cariato verrà rimosso mediante una fresa rotonda sterilizzata e verrà effettuato l'accesso al canale radicolare
5. Una volta ottenuto l'accesso, per la procedura di campionamento verranno scelti il ​​canale distale dei molari primari mandibolari e il canale palatale dei molari primari mascellari.
6. Verrà inserita una broccia sterile per ottenere il contenuto del canale radicolare, quindi una punta di carta sterile inserita nel canale radicolare e verrà lasciata per 1 minuto. 19 La punta di carta verrà rimossa con una pinzetta sterilizzata che verrà immediatamente trasferita nella provetta contenente il mezzo di trasporto (eppendrof di contenente 200 μl di brodo nutriente).
7. Nel gruppo 1 verrà preparata con file manuali l'irrigazione con soluzione salina in IA, con neem in IB e l'irrigazione con NaOCl in IC.
8. Nel gruppo II verrà preparata con lime rotanti l'irrigazione con soluzione salina in IIA, con neem in IIB, con NaOCl in IIC
9. La punta di carta sterile verrà introdotta nel canale radicolare e verrà lasciata per 1 minuto, la punta di carta verrà rimossa con una pinzetta sterilizzata e quindi trasferita in una provetta contenente terreno di trasporto 19.
10. Il campione post-irrigazione e il campione pre-preparazione verranno trasferiti al laboratorio microbiologico.
11. I canali verranno limati con materiale di otturazione (Metapex), quindi la corona verrà restaurata con vetro inomar e corona in acciaio inossidabile

Procedure di laboratorio:

1. Tutti i campioni verranno incubati su agar sangue in condizioni aerobiche e anaerobiche a 37 per 48-72 ore e striscieranno aspettosamente le piastre 19,20.
2. Identificazione dei batteri mediante caratteristiche della coltura, esame microscopico e reazione biochimica 21.
3. Verrà contato il numero di unità formanti colonie (CFU/ml)