- ICH GCP
- Registro de ensayos clínicos de EE. UU.
- Ensayo clínico NCT03333590
Ensayo clínico de transferencia de genes para administrar rAAVrh74.MCK.GALGT2 para la distrofia muscular de Duchenne
Ensayo clínico de transferencia génica de fase I/IIa para la distrofia muscular de Duchenne utilizando rAAVrh74.MCK.GALGT2
Descripción general del estudio
Estado
Condiciones
Intervención / Tratamiento
Descripción detallada
Este es un ensayo abierto de escalada de dosis en el que el vector se administrará a través de la arteria femoral a los músculos de ambas piernas de sujetos con DMD.
El objetivo principal de este estudio es la evaluación de la seguridad de la administración intravascular de rAAVrh74.MCK.GALGT2 a pacientes con DMD. Los criterios de valoración de seguridad se evaluarán mediante cambios en hematología, química sérica, análisis de orina, respuesta inmunológica a rAAVrh74 y GALGT2, y antecedentes informados y observaciones de síntomas. Las medidas de eficacia se utilizarán como resultado secundario para este trastorno, incluida una combinación de prueba funcional de caminata de 6 minutos (6MWT) y prueba muscular directa para determinar la fuerza (MVICT) de los músculos de las extremidades inferiores.
Los sujetos serán evaluados al inicio, en la visita de infusión (días 0-2) y regresarán para las visitas de seguimiento los días 7, 14, 30, 60, 90 y 180 y los meses 12, 18 y 24.
Tipo de estudio
Inscripción (Actual)
Fase
- Fase 2
- Fase 1
Contactos y Ubicaciones
Ubicaciones de estudio
-
-
Ohio
-
Columbus, Ohio, Estados Unidos, 43205
- Nationwide Children's Hospital
-
-
Criterios de participación
Criterio de elegibilidad
Edades elegibles para estudiar
Acepta Voluntarios Saludables
Descripción
Criterios de inclusión
- Pacientes ambulatorios de 4 años o más.
- Mutaciones confirmadas en el gen DMD utilizando una técnica clínicamente aceptada que define completamente la mutación 1,2
• Función muscular deteriorada medible (definida como menos del 80 % del valor predicho para 100 MWT), pero con suficiente preservación muscular para garantizar la evaluación de la transfección muscular según la evaluación clínica realizada por el IP y colegas expertos. Este grado de conservación incluirá:
- Capacidad para extender la rodilla completamente contra la gravedad.
- Deambulación conservada con capacidad para caminar ≥ 350 metros durante la 6MWT
- Una imagen de resonancia magnética del cuádriceps que muestra la preservación de suficiente masa muscular para permitir la transfección
- Los hombres de cualquier grupo étnico serán elegibles
- Capacidad para cooperar con las pruebas musculares.
- Dosis diaria estable de terapia con corticosteroides (que incluye prednisona, prednisolona, deflazacort o sus formas genéricas) durante 12 semanas antes de la transferencia génica
Criterio de exclusión
- Infección viral activa basada en observaciones clínicas
- La presencia de una mutación DMD sin debilidad o pérdida de función
- El sujeto es susceptible o está siendo tratado actualmente con eteplirsen
Síntomas o signos de miocardiopatía, que incluyen:
- Disnea de esfuerzo, edema de los pies, dificultad para respirar al acostarse o estertores en la base de los pulmones
- Ecocardiograma con fracción de eyección inferior al 40%
- Evidencia serológica de infección por VIH o infección por hepatitis B o C
- Diagnóstico de (o tratamiento en curso para) una enfermedad autoinmune
- Leucopenia o leucocitosis persistente (WBC ≤ 3,5 K/µL o ≥ 20,0 K/µL) o un recuento absoluto de neutrófilos < 1,5 K/µL
- Enfermedad concomitante o requerimiento de tratamiento farmacológico crónico que a juicio del IP crea riesgos innecesarios para la transferencia de genes
- Sujetos con títulos de anticuerpos de unión a rAAVrh74 ≥ 1:50 según lo determinado por inmunoensayo ELISA
- Presencia de anticuerpos anti-Sda circulantes según lo determinado por el laboratorio aprobado por el estudio
- Valores de laboratorio anormales en el rango clínicamente significativo, basados en valores normales en el Laboratorio del Hospital Nacional de Niños
Plan de estudios
¿Cómo está diseñado el estudio?
Detalles de diseño
- Propósito principal: Tratamiento
- Asignación: No aleatorizado
- Modelo Intervencionista: Asignación de un solo grupo
- Enmascaramiento: Ninguno (etiqueta abierta)
Armas e Intervenciones
Grupo de participantes/brazo |
Intervención / Tratamiento |
|---|---|
|
Experimental: Cohorte 1 (dosis mínima eficaz) rAAVrh74.MCK.GALGT2
N = 3 [2,5 x E13 vg/kg por pierna, entregado bilateralmente (total 5,0 x E13 vg/kg)]
|
El serotipo rh74 del virus adenoasociado que lleva el gen GALGT2 bajo el control de un promotor MCK (rAAVrh74.MCK.GALGT2) se administrará una vez en cada uno de los miembros inferiores a través de la arteria femoral utilizando una técnica de infusión intravascular en miembros (ILI)
|
|
Experimental: Cohorte 2 (escalada de dosis) rAAVrh74.MCK.GALGT2
N=3 [5 x E13 vg/kg por pierna, administrado bilateralmente (total 1,0 x E14 vg/kg)]
|
El serotipo rh74 del virus adenoasociado que lleva el gen GALGT2 bajo el control de un promotor MCK (rAAVrh74.MCK.GALGT2) se administrará una vez en cada uno de los miembros inferiores a través de la arteria femoral utilizando una técnica de infusión intravascular en miembros (ILI)
|
¿Qué mide el estudio?
Medidas de resultado primarias
Medida de resultado |
Periodo de tiempo |
|---|---|
|
Número de toxicidades no anticipadas relacionadas con el tratamiento de grado III o superior
Periodo de tiempo: 2 años
|
2 años
|
Medidas de resultado secundarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
|---|---|---|
|
Expresión de GALGT2 demostrada por tinción inmunofluorescente con anticuerpos epítopos anti-CT o lectina WFA en secciones de biopsia muscular 120 días después de la inyección (cohorte 1) y 90 días después de la inyección (cohorte 2).
Periodo de tiempo: Día 90 (Cohorte 2) y Día 120 (Cohorte 1)
|
Porcentaje de fibras que expresan GALGT2 en cada muestra de biopsia.
|
Día 90 (Cohorte 2) y Día 120 (Cohorte 1)
|
|
Expresión de proteína GALGT2 cuantificada por Western Blot y evaluada por densitometría en tejido de biopsia muscular 120 días después de la inyección (cohorte 1) y 90 días después de la inyección (cohorte 2)
Periodo de tiempo: Día 90 (Cohorte 2) y Día 120 (Cohorte 1)
|
Día 90 (Cohorte 2) y Día 120 (Cohorte 1)
|
Otras medidas de resultado
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
|---|---|---|
|
Número de metros caminados durante la prueba de caminata de 6 minutos
Periodo de tiempo: Día 90 (Cohorte 2) y Día 120 (Cohorte 1) y Día 180 para ambas cohortes
|
Día 90 (Cohorte 2) y Día 120 (Cohorte 1) y Día 180 para ambas cohortes
|
|
|
Fuerza de los Flexores y Extensores Bilaterales de la Rodilla Durante el Test de Fuerza Isométrica Máxima Voluntaria.
Periodo de tiempo: Días 90 (cohorte 2), 120 (cohorte 1) y ambas cohortes en el día 180, meses 12, 18 y 24
|
Días 90 (cohorte 2), 120 (cohorte 1) y ambas cohortes en el día 180, meses 12, 18 y 24
|
|
|
Tiempo necesario para caminar 100 metros durante la prueba de caminata de 100 metros.
Periodo de tiempo: Días 90 (Cohorte 2), 120 (Cohorte 1); ambas cohortes en el día 180, meses 12, 18 y cohorte 2 en el mes 24
|
Días 90 (Cohorte 2), 120 (Cohorte 1); ambas cohortes en el día 180, meses 12, 18 y cohorte 2 en el mes 24
|
|
|
Puntuación de la función muscular mediante la evaluación ambulatoria de The North Star (NSAA).
Periodo de tiempo: Días 90 (cohorte 2), 120 (cohorte 1) y ambas cohortes en el día 180, meses 12, 18 y 24
|
La NSAA proporciona una puntuación entre 0 y 34, donde los números más altos representan una mayor función muscular.
|
Días 90 (cohorte 2), 120 (cohorte 1) y ambas cohortes en el día 180, meses 12, 18 y 24
|
Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Investigadores
- Investigador principal: Kevin Flanigan, MD, Nationwide Children's Hospital
Publicaciones y enlaces útiles
Publicaciones Generales
- Mendell JR, Rodino-Klapac LR, Rosales XQ, Coley BD, Galloway G, Lewis S, Malik V, Shilling C, Byrne BJ, Conlon T, Campbell KJ, Bremer WG, Taylor LE, Flanigan KM, Gastier-Foster JM, Astbury C, Kota J, Sahenk Z, Walker CM, Clark KR. Sustained alpha-sarcoglycan gene expression after gene transfer in limb-girdle muscular dystrophy, type 2D. Ann Neurol. 2010 Nov;68(5):629-38. doi: 10.1002/ana.22251.
- Mendell JR, Rodino-Klapac LR, Sahenk Z, Roush K, Bird L, Lowes LP, Alfano L, Gomez AM, Lewis S, Kota J, Malik V, Shontz K, Walker CM, Flanigan KM, Corridore M, Kean JR, Allen HD, Shilling C, Melia KR, Sazani P, Saoud JB, Kaye EM; Eteplirsen Study Group. Eteplirsen for the treatment of Duchenne muscular dystrophy. Ann Neurol. 2013 Nov;74(5):637-47. doi: 10.1002/ana.23982. Epub 2013 Sep 10.
- Mendell JR, Goemans N, Lowes LP, Alfano LN, Berry K, Shao J, Kaye EM, Mercuri E; Eteplirsen Study Group and Telethon Foundation DMD Italian Network. Longitudinal effect of eteplirsen versus historical control on ambulation in Duchenne muscular dystrophy. Ann Neurol. 2016 Feb;79(2):257-71. doi: 10.1002/ana.24555. Epub 2016 Jan 8.
- Mendell JR, Moxley RT, Griggs RC, Brooke MH, Fenichel GM, Miller JP, King W, Signore L, Pandya S, Florence J, et al. Randomized, double-blind six-month trial of prednisone in Duchenne's muscular dystrophy. N Engl J Med. 1989 Jun 15;320(24):1592-7. doi: 10.1056/NEJM198906153202405.
- Chicoine LG, Rodino-Klapac LR, Shao G, Xu R, Bremer WG, Camboni M, Golden B, Montgomery CL, Shontz K, Heller KN, Griffin DA, Lewis S, Coley BD, Walker CM, Clark KR, Sahenk Z, Mendell JR, Martin PT. Vascular delivery of rAAVrh74.MCK.GALGT2 to the gastrocnemius muscle of the rhesus macaque stimulates the expression of dystrophin and laminin alpha2 surrogates. Mol Ther. 2014 Apr;22(4):713-24. doi: 10.1038/mt.2013.246. Epub 2013 Oct 22.
- Biggar WD, Harris VA, Eliasoph L, Alman B. Long-term benefits of deflazacort treatment for boys with Duchenne muscular dystrophy in their second decade. Neuromuscul Disord. 2006 Apr;16(4):249-55. doi: 10.1016/j.nmd.2006.01.010. Epub 2006 Mar 20.
- Brooke MH, Fenichel GM, Griggs RC, Mendell JR, Moxley R, Miller JP, Province MA. Clinical investigation in Duchenne dystrophy: 2. Determination of the "power" of therapeutic trials based on the natural history. Muscle Nerve. 1983 Feb;6(2):91-103. doi: 10.1002/mus.880060204.
- Eagle M, Baudouin SV, Chandler C, Giddings DR, Bullock R, Bushby K. Survival in Duchenne muscular dystrophy: improvements in life expectancy since 1967 and the impact of home nocturnal ventilation. Neuromuscul Disord. 2002 Dec;12(10):926-9. doi: 10.1016/s0960-8966(02)00140-2.
- Griggs RC, Moxley RT 3rd, Mendell JR, Fenichel GM, Brooke MH, Pestronk A, Miller JP. Prednisone in Duchenne dystrophy. A randomized, controlled trial defining the time course and dose response. Clinical Investigation of Duchenne Dystrophy Group. Arch Neurol. 1991 Apr;48(4):383-8. doi: 10.1001/archneur.1991.00530160047012.
- Rodino-Klapac LR, Montgomery CL, Mendell JR, Chicoine LG. AAV-mediated gene therapy to the isolated limb in rhesus macaques. Methods Mol Biol. 2011;709:287-98. doi: 10.1007/978-1-61737-982-6_19.
- Rodino-Klapac LR, Montgomery CL, Bremer WG, Shontz KM, Malik V, Davis N, Sprinkle S, Campbell KJ, Sahenk Z, Clark KR, Walker CM, Mendell JR, Chicoine LG. Persistent expression of FLAG-tagged micro dystrophin in nonhuman primates following intramuscular and vascular delivery. Mol Ther. 2010 Jan;18(1):109-17. doi: 10.1038/mt.2009.254. Epub 2009 Nov 10.
- Rodino-Klapac LR, Janssen PM, Montgomery CL, Coley BD, Chicoine LG, Clark KR, Mendell JR. A translational approach for limb vascular delivery of the micro-dystrophin gene without high volume or high pressure for treatment of Duchenne muscular dystrophy. J Transl Med. 2007 Sep 24;5:45. doi: 10.1186/1479-5876-5-45.
- Flanigan KM, von Niederhausern A, Dunn DM, Alder J, Mendell JR, Weiss RB. Rapid direct sequence analysis of the dystrophin gene. Am J Hum Genet. 2003 Apr;72(4):931-9. doi: 10.1086/374176. Epub 2003 Mar 11.
- Seinen JM, Hoekstra HJ. Isolated limb perfusion of soft tissue sarcomas: a comprehensive review of literature. Cancer Treat Rev. 2013 Oct;39(6):569-77. doi: 10.1016/j.ctrv.2012.10.005. Epub 2012 Dec 8.
- Mendell JR, Shilling C, Leslie ND, Flanigan KM, al-Dahhak R, Gastier-Foster J, Kneile K, Dunn DM, Duval B, Aoyagi A, Hamil C, Mahmoud M, Roush K, Bird L, Rankin C, Lilly H, Street N, Chandrasekar R, Weiss RB. Evidence-based path to newborn screening for Duchenne muscular dystrophy. Ann Neurol. 2012 Mar;71(3):304-13. doi: 10.1002/ana.23528.
- Koenig M, Hoffman EP, Bertelson CJ, Monaco AP, Feener C, Kunkel LM. Complete cloning of the Duchenne muscular dystrophy (DMD) cDNA and preliminary genomic organization of the DMD gene in normal and affected individuals. Cell. 1987 Jul 31;50(3):509-17. doi: 10.1016/0092-8674(87)90504-6.
- Bonilla E, Samitt CE, Miranda AF, Hays AP, Salviati G, DiMauro S, Kunkel LM, Hoffman EP, Rowland LP. Duchenne muscular dystrophy: deficiency of dystrophin at the muscle cell surface. Cell. 1988 Aug 12;54(4):447-52. doi: 10.1016/0092-8674(88)90065-7.
- Oudet C, Hanauer A, Clemens P, Caskey T, Mandel JL. Two hot spots of recombination in the DMD gene correlate with the deletion prone regions. Hum Mol Genet. 1992 Nov;1(8):599-603. doi: 10.1093/hmg/1.8.599.
- Beggs AH, Koenig M, Boyce FM, Kunkel LM. Detection of 98% of DMD/BMD gene deletions by polymerase chain reaction. Hum Genet. 1990 Nov;86(1):45-8. doi: 10.1007/BF00205170.
- Chamberlain JS, Gibbs RA, Ranier JE, Nguyen PN, Caskey CT. Deletion screening of the Duchenne muscular dystrophy locus via multiplex DNA amplification. Nucleic Acids Res. 1988 Dec 9;16(23):11141-56. doi: 10.1093/nar/16.23.11141.
- Lalic T, Vossen RH, Coffa J, Schouten JP, Guc-Scekic M, Radivojevic D, Djurisic M, Breuning MH, White SJ, den Dunnen JT. Deletion and duplication screening in the DMD gene using MLPA. Eur J Hum Genet. 2005 Nov;13(11):1231-4. doi: 10.1038/sj.ejhg.5201465.
- Dent KM, Dunn DM, von Niederhausern AC, Aoyagi AT, Kerr L, Bromberg MB, Hart KJ, Tuohy T, White S, den Dunnen JT, Weiss RB, Flanigan KM. Improved molecular diagnosis of dystrophinopathies in an unselected clinical cohort. Am J Med Genet A. 2005 Apr 30;134(3):295-8. doi: 10.1002/ajmg.a.30617.
- Balaban B, Matthews DJ, Clayton GH, Carry T. Corticosteroid treatment and functional improvement in Duchenne muscular dystrophy: long-term effect. Am J Phys Med Rehabil. 2005 Nov;84(11):843-50. doi: 10.1097/01.phm.0000184156.98671.d0.
- Bushby K, Finkel R, Wong B, Barohn R, Campbell C, Comi GP, Connolly AM, Day JW, Flanigan KM, Goemans N, Jones KJ, Mercuri E, Quinlivan R, Renfroe JB, Russman B, Ryan MM, Tulinius M, Voit T, Moore SA, Lee Sweeney H, Abresch RT, Coleman KL, Eagle M, Florence J, Gappmaier E, Glanzman AM, Henricson E, Barth J, Elfring GL, Reha A, Spiegel RJ, O'donnell MW, Peltz SW, Mcdonald CM; PTC124-GD-007-DMD STUDY GROUP. Ataluren treatment of patients with nonsense mutation dystrophinopathy. Muscle Nerve. 2014 Oct;50(4):477-87. doi: 10.1002/mus.24332.
- Finkel RS, Flanigan KM, Wong B, Bonnemann C, Sampson J, Sweeney HL, Reha A, Northcutt VJ, Elfring G, Barth J, Peltz SW. Phase 2a study of ataluren-mediated dystrophin production in patients with nonsense mutation Duchenne muscular dystrophy. PLoS One. 2013 Dec 11;8(12):e81302. doi: 10.1371/journal.pone.0081302. eCollection 2013.
- Harper SQ, Hauser MA, DelloRusso C, Duan D, Crawford RW, Phelps SF, Harper HA, Robinson AS, Engelhardt JF, Brooks SV, Chamberlain JS. Modular flexibility of dystrophin: implications for gene therapy of Duchenne muscular dystrophy. Nat Med. 2002 Mar;8(3):253-61. doi: 10.1038/nm0302-253.
- Gregorevic P, Blankinship MJ, Allen JM, Crawford RW, Meuse L, Miller DG, Russell DW, Chamberlain JS. Systemic delivery of genes to striated muscles using adeno-associated viral vectors. Nat Med. 2004 Aug;10(8):828-34. doi: 10.1038/nm1085. Epub 2004 Jul 25.
- Xu R, DeVries S, Camboni M, Martin PT. Overexpression of Galgt2 reduces dystrophic pathology in the skeletal muscles of alpha sarcoglycan-deficient mice. Am J Pathol. 2009 Jul;175(1):235-47. doi: 10.2353/ajpath.2009.080967. Epub 2009 Jun 4.
- Xu R, Chandrasekharan K, Yoon JH, Camboni M, Martin PT. Overexpression of the cytotoxic T cell (CT) carbohydrate inhibits muscular dystrophy in the dyW mouse model of congenital muscular dystrophy 1A. Am J Pathol. 2007 Jul;171(1):181-99. doi: 10.2353/ajpath.2007.060927.
- Liu G, McNicol PL, Macall P, Bellomo R, Przybylowski G, Bowkett J, Connellan J, McInnes F, Thurlow PJ. The Effect of Preoperative Aspirin and/or Heparin Therapy on Coagulation and Postoperative Blood Loss after Coronary Artery Bypass Surgery. Crit Care Resusc. 1999 Jun;1(2):139.
- Veikutiene A, Sirvinskas E, Grybauskas P, Cimbolaityte J, Mongirdiene A, Veikutis V. [Influence of preoperative treatment with aspirin or heparin on platelet function and intensity of postoperative bleeding in early period after coronary artery bypass surgery]. Medicina (Kaunas). 2005;41(7):577-83. Lithuanian.
- Sun JC, Crowther MA, Warkentin TE, Lamy A, Teoh KH. Should aspirin be discontinued before coronary artery bypass surgery? Circulation. 2005 Aug 16;112(7):e85-90. doi: 10.1161/CIRCULATIONAHA.105.546697. No abstract available.
- Taylor LE, Kaminoh YJ, Rodesch CK, Flanigan KM. Quantification of dystrophin immunofluorescence in dystrophinopathy muscle specimens. Neuropathol Appl Neurobiol. 2012 Oct;38(6):591-601. doi: 10.1111/j.1365-2990.2012.01250.x.
- Anthony K, Arechavala-Gomeza V, Taylor LE, Vulin A, Kaminoh Y, Torelli S, Feng L, Janghra N, Bonne G, Beuvin M, Barresi R, Henderson M, Laval S, Lourbakos A, Campion G, Straub V, Voit T, Sewry CA, Morgan JE, Flanigan KM, Muntoni F. Dystrophin quantification: Biological and translational research implications. Neurology. 2014 Nov 25;83(22):2062-9. doi: 10.1212/WNL.0000000000001025. Epub 2014 Oct 29.
- Flanigan KM, Dunn DM, von Niederhausern A, Soltanzadeh P, Gappmaier E, Howard MT, Sampson JB, Mendell JR, Wall C, King WM, Pestronk A, Florence JM, Connolly AM, Mathews KD, Stephan CM, Laubenthal KS, Wong BL, Morehart PJ, Meyer A, Finkel RS, Bonnemann CG, Medne L, Day JW, Dalton JC, Margolis MK, Hinton VJ; United Dystrophinopathy Project Consortium; Weiss RB. Mutational spectrum of DMD mutations in dystrophinopathy patients: application of modern diagnostic techniques to a large cohort. Hum Mutat. 2009 Dec;30(12):1657-66. doi: 10.1002/humu.21114.
Fechas de registro del estudio
Fechas importantes del estudio
Inicio del estudio (Actual)
Finalización primaria (Actual)
Finalización del estudio (Actual)
Fechas de registro del estudio
Enviado por primera vez
Primero enviado que cumplió con los criterios de control de calidad
Publicado por primera vez (Actual)
Actualizaciones de registros de estudio
Última actualización publicada (Actual)
Última actualización enviada que cumplió con los criterios de control de calidad
Última verificación
Más información
Términos relacionados con este estudio
Palabras clave
Términos MeSH relevantes adicionales
Otros números de identificación del estudio
- GALGT2 Gene Therapy for DMD
Información sobre medicamentos y dispositivos, documentos del estudio
Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.
Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.
Esta información se obtuvo directamente del sitio web clinicaltrials.gov sin cambios. Si tiene alguna solicitud para cambiar, eliminar o actualizar los detalles de su estudio, comuníquese con register@clinicaltrials.gov. Tan pronto como se implemente un cambio en clinicaltrials.gov, también se actualizará automáticamente en nuestro sitio web. .