Capacidad regenerativa de dientes permanentes necróticos inmaduros utilizando diferentes estructuras (regeneration)

El estudio se realizará en 30 dientes anteriores superiores con ápice abierto; con 10 dientes anteriores superiores con ápice abierto en cada grupo (n=10). Se le pedirá al paciente que elija un sobre cerrado opaco que contendrá un número del 1 al 3. El número resultante determinará en qué grupo se colocarán los participantes. En este estudio se mantendrá el cegamiento simple como evaluador de resultados y los pacientes no conocerán su grupo/grupo de control del grupo (I) de andamio utilizado sin andamio utilizado. Grupo (II) que utiliza fibrina rica en plaquetas (PRF) como andamio. Grupo (III) utilizando ácido hialurónico (HYA) como andamio.

Pasos procesales:

1ra visita

1.A los pacientes se les administrará anestesia con vasoconstrictor. Se realizará el aislamiento y el acceso con dique de goma. 2. Se realizará una irrigación suave con hipoclorito de sodio (NaOCl) al 1,5-3% (20 ml/5 minutos) utilizando una aguja con el extremo cerrado y ventilaciones laterales con la aguja colocada a 1 mm del ápice. 3. Luego, la irrigación se realizará con solución salina o ácido etilendiaminotetraacético (EDTA) al 17% (20 ml/canal, 5 min) 4. El espacio del canal se secará usando Puntas de papel estériles. Se colocarán 5,1 ml de hidróxido de calcio (metapasta) en el espacio del canal. 6. Se insertará una bolita de algodón estéril y se sellará la cavidad de acceso utilizando 3-4 mm de restauración temporal (Coltosol F; Coltene Whaledent, Altstatten, Suiza) para 3 semanas.

2da visita

1. Se programará la visita final para tres grupos cuando el diente esté asintomático y sin signos de secreción.
2. En caso de infección persistente se programarán una o más visitas para alta y desinfección.
3. Se anestesiará al paciente con mepivacaína al 3% sin vasoconstrictor, se realizará el aislamiento adecuado, se retirará la restauración temporal y la bolita de algodón.
4. El canal se irrigará con EDTA al 17% (20 ml/5 minutos).
5. Los conductos se secarán utilizando puntas de papel esterilizadas.

6. En el grupo (I) Se utilizará una lima de mano estéril de tamaño n.º 50 con movimientos bruscos 2 mm más allá del ápice hacia el tejido periapical hasta que el sangrado sea evidente en la porción cervical del canal. En el grupo (II) Para la preparación de PRF, 10 ml de sangre completa del paciente Se recogerá en tubos estériles de la vena cubital. Los tubos se centrifugarán durante 10 minutos a una velocidad de 3000 rpm.

   Dentro de cada tubo de ensayo se formarán tres capas: una capa base que contiene eritrocitos, una capa intermedia de coágulo PRF y una capa superficial de plasma acelular. El coágulo de PRF se separará de las otras capas y luego se comprimirá en una caja de PRF (Intra-Lock International).

   La membrana PRF comprimida se enrollará sobre sí misma para permitir su implantación en el canal.

   La membrana PRF se insertará dentro del conducto radicular y se condensará apicalmente con un obturador manual de endodoncia.

   En el grupo (III), se utilizará una lima de mano estéril de tamaño n.° 50 con movimientos bruscos de 2 mm más allá del ápice hacia el tejido periapical hasta que el sangrado sea evidente en la porción cervical del canal, luego se insertará hidrogel de ácido hialurónico dentro del canal.

7. Se utilizará un tapón de orificio de tapón MTA como material de tapado para sellar el orificio del canal.
8. Capa de 3-4 mm de ionómero de vidrio (p. ej. Fuji IX™, GC America, Alsip, IL) se hará fluir suavemente sobre el material de recubrimiento y se fotopolimerizará durante 40 s para sellar la cavidad de acceso.
9. Se tomará una radiografía periapical estandarizada posoperatoria para registros de referencia.
10. Una vez finalizado el tratamiento, el paciente será llamado para seguimiento cada tres meses durante un año.