Isojen nivelten periprosteettisten infektioiden patogeenien mikrobiologinen rakenne koronaviruksen jälkeisellä kaudella

Jatkuva vertaileva retrospektiivinen tutkimus raajojen nivelten PJI-tapauksista, joissa mikro-organismien mikrobiologinen kasvu oli positiivista ennen Covidia (2018-2019) ja sen jälkeen (2021-2022), suoritettiin tietopohjalta. Venäjän terveysministeriön (Cheboksary, Venäjä) Traumatologian, Ortopedian ja Artroplastian liittovaltion keskuksen lääketieteellinen tietojärjestelmä (MIS), jäljempänä keskus.

Syvän PJI:n diagnoosin varmistus suoritettiin Skeleti- ja liikuntaelinten infektioiden seuran diagnostisten kriteerien mukaisesti.

Otokseen sisältyi polvi-, lonkka-, olkapää- ja ranteen nivelleikkauksen jälkeisiä syviä ja pinnallisia infektioita riippumatta primaarileikkauksen paikasta. Eristetyt mikro-organismit tunnistettiin kasvun perusteella yhdessä tai useammassa viljelmässä, jotka oli saatu pistemäisestä nivelnesteestä, intraoperatiivisista kudoksista ja poistetuista implanteista (niiden ultraäänikäsittelyn jälkeen).

Infektio luokiteltiin polymikrobiseksi tai monomikrobiseksi. Johtavan patogeenin rooli määritettiin monomikrobi-infektion rakenteessa. Polymikrobiaalista infektiota edustavat tapaukset, joissa yhdestä potilaasta eristetään samanaikaisesti kaksi tai useampi taudinaiheuttaja. Antibioottiresistenssiprofiili sisälsi kaikki mono- ja polymikrobiaalisen PJI:n eristetyt patogeenit.

Potilailta otettiin tutkittavaksi vähintään 4 näytettä leikkauksensisäisestä materiaalista (kudosbiopsiat, nivelaspiraatti, poistetut endoproteesikomponentit).

Aspiraatti nivelestä laitettiin Bact/Alert 3D-analysaattorin (Bio Merieux, Ranska) FA plus, FN plus -pulloihin. Jos näytetilavuus oli riittämätön (alle 1 ml), se siirrostettiin injektiopulloon Schedlerin liemellä ja, kun se oli sameaa, jatkoviljeltiin kiinteälle alustalle.

Leikkauksen aikana poistetut endoproteesikomponentit laitettiin steriiliin muovisäiliöön ja toimitettiin laboratorioon. Laboratoriossa säiliöön lisättiin suolaliuosta ja käsiteltiin ultraäänikoneessa kirjoittajan menetelmän mukaisesti. Ultraäänikäsittelyn jälkeen 0,5 ml tuloksena olevaa nestettä levitettiin kiinteälle alustalle.

Homogenisoidut kudosnäytteet asetettiin liemeen tioglykolaattiväliaineen kanssa. Viljelmiä inkuboitiin 37 °C:ssa 14 päivään asti, jatkoviljeltiin kiinteillä ravintoalustoilla: 1. päivänä - Columbia-, Chocolate- ja Schedler-agarilla; 5. päivänä - Chocolate- ja Schedler-agarilla ja 10. päivänä - vain Schedler-agarilla. Aerobisille, anaerobisille ja kapnofiilisille mikro-organismeille luotiin inkubointiolosuhteet kaasua tuottavien pakettien avulla.

Eristettyjen mikro-organismien tunnistaminen ja herkkyys antibiooteille suoritettiin automaattisella analysaattorilla (Vitec2 compact; Bio Merieux, Ranska) ja puoliautomaattisella analysaattorilla (Multiscan FC; Thermo Fisher, USA) sarjoilla (Erba Lachema, Tšekki), testi järjestelmät ("Diagnostiikkajärjestelmät", Venäjä).

Herkkyys antibakteerisille lääkkeille testattiin levydiffuusiomenetelmällä ja analysaattorisarjoilla. Antibioottiherkkyysarviointi suoritettiin EUCAST 2018 (tutkimukset 2018-2019), EUCAST 2021 (tutkimukset 2021-2022) kriteerien mukaisesti.