Микробиологическая структура возбудителей перипротезной инфекции крупных суставов в постковидный период

Проведено непрерывное сравнительное ретроспективное исследование случаев ППИ суставов конечностей с положительным микробиологическим ростом микроорганизмов в доковидный (2018-2019) и постковидный (2021-2022) периоды на основе данных медицинская информационная система (МИС) Федерального центра травматологии, ортопедии и эндопротезирования Минздрава России (Чебоксары, Россия), именуемого в дальнейшем Центр.

Верификацию диагноза глубокой ППИ проводили по диагностическим критериям Общества скелетно-мышечных инфекций.

В выборку вошли случаи глубокого и поверхностного инфицирования после эндопротезирования коленного, тазобедренного, плечевого и лучезапястного суставов независимо от места первичной операции. Идентификацию изолированных микроорганизмов осуществляли по результатам роста в одной или нескольких культурах, полученных из пунктата синовиальной жидкости, интраоперационных тканей, а также из удаленных имплантатов (после их ультразвуковой обработки).

Инфекцию классифицировали как полимикробную или мономикробную. Определена роль ведущего возбудителя в структуре мономикробной инфекции. Полимикробная инфекция представлена ​​случаями одновременного выделения двух и более возбудителей у одного больного. В профиль антибиотикорезистентности вошли все выделенные возбудители моно- и полимикробной ППИ.

Для исследования у пациентов было взято не менее 4 образцов интраоперационного материала (биопсии тканей, аспират суставов, удаленные компоненты эндопротеза).

Аспират из сустава помещали во флаконы FA plus, FN plus анализатора Bact/Alert 3D (Bio Merieux, Франция). Если объем пробы был недостаточным (менее 1 мл), ее инокулировали во флакон с бульоном Шедлера и при помутнении пересевали на плотные среды.

Удаленные во время операции компоненты эндопротеза помещали в стерильный пластиковый контейнер и доставляли в лабораторию. В лаборатории в емкость добавляли физиологический раствор и обрабатывали в ультразвуковом аппарате по авторской методике. После обработки ультразвуком 0,5 мл полученной жидкости наносили на твердые среды.

Гомогенизированные образцы тканей помещали в бульон с тиогликолевой средой. Культуры инкубировали при 37°С до 14 сут, субкультивировали на плотных питательных средах: в 1-е сутки - на Колумбийском, Шоколадном агарах и агарах Шедлера; на 5-й день - на шоколаде и агаре Шедлера и на 10-й день - только на агаре Шедлера. Для аэробных, анаэробных и капнофильных микроорганизмов условия инкубации создавали с помощью газогенерирующих пакетов.

Идентификацию выделенных микроорганизмов и чувствительности к антибиотикам проводили с помощью автоматического анализатора (Vitec2 Compact; Bio Merieux, Франция) и полуавтоматического анализатора (Multiscan FC; Thermo Fisher, США) с использованием наборов (Erba Lachema, Чехия), тест системы («Диагностические системы», Россия).

Чувствительность к антибактериальным препаратам проверяли с помощью дисково-диффузионного метода и наборов-анализаторов. Оценку чувствительности к антибиотикам проводили в соответствии с критериями EUCAST 2018 (исследования 2018-2019 гг.), EUCAST 2021 (исследования 2021-2022 гг.).