Struktura mikrobiologiczna patogenów infekcji okołoprotezowych dużych stawów w okresie post-covidowym

Ciągłe retrospektywne badanie porównawcze przypadków PJI stawów kończyn z dodatnim wzrostem mikrobiologicznym mikroorganizmów w okresie przed Covid (2018-2019) i po Covid (2021-2022) przeprowadzono na podstawie danych z system informacji medycznej (MIS) Federalnego Centrum Traumatologii, Ortopedii i Artroplastyki Ministerstwa Zdrowia Rosji (Czeboksary, Rosja), zwanego dalej Centrum.

Weryfikację rozpoznania głębokiego PJI przeprowadzono zgodnie z kryteriami diagnostycznymi Towarzystwa Zakażeń Mięśniowo-Szkieletowych.

Do próby włączono przypadki infekcji głębokich i powierzchownych po endoprotezoplastyce stawów kolanowych, biodrowych, barkowych i nadgarstkowych, niezależnie od lokalizacji pierwotnej operacji. Wyizolowane mikroorganizmy identyfikowano na podstawie wzrostu w jednej lub większej liczbie hodowli uzyskanych z punktowej mazi stawowej, tkanek śródoperacyjnych oraz z usuniętych implantów (po ich obróbce ultradźwiękowej).

Zakażenie sklasyfikowano jako wielobakteryjne lub jednobakteryjne. Określono rolę patogenu wiodącego w strukturze zakażenia monodrobnoustrojowego. Zakażenie wielodrobnoustrojowe jest reprezentowane przez przypadki jednoczesnej izolacji dwóch lub więcej patogenów u jednego pacjenta. Profil oporności na antybiotyki obejmował wszystkie izolowane patogeny mono- i wielobakteryjne PJI.

Od pacjentów do badania pobrano co najmniej 4 próbki materiału śródoperacyjnego (biopsje tkankowe, aspirat stawowy, usunięte elementy endoprotezy).

Aspirat ze stawu umieszczono w butelkach FA plus, FN plus analizatora Bact/Alert 3D (Bio Merieux, Francja). Jeżeli objętość próbki była niewystarczająca (mniejsza niż 1 ml), zaszczepiano ją do fiolki z bulionem Schedlera i, gdy zmętnieła, hodowano na podłożu stałym.

Usunięte podczas zabiegu elementy endoprotezy umieszczono w sterylnym plastikowym pojemniku i dostarczono do laboratorium. W laboratorium do pojemnika dodano roztwór soli fizjologicznej i poddano obróbce w urządzeniu ultradźwiękowym według autorskiej metody. Po ultradźwiękach 0,5 ml powstałej cieczy nałożono na ośrodek stały.

Zhomogenizowane próbki tkanek umieszczono w bulionie z pożywką tioglikolową. Hodowle inkubowano w temperaturze 37°C przez okres do 14 dni, następnie hodowano na podłożach stałych: pierwszego dnia na agarach Columbia, Chocolate i Schedler; w 5 dniu - na agarze czekoladowym i Schedlera, a 10 dnia - tylko na agarze Schedlera. Dla mikroorganizmów tlenowych, beztlenowych i kapnofilnych stworzono warunki inkubacji za pomocą pakietów gazotwórczych.

Identyfikację wyizolowanych drobnoustrojów oraz wrażliwości na antybiotyki przeprowadzono przy użyciu analizatora automatycznego (Vitec2 Compact; Bio Merieux, Francja) i analizatora półautomatycznego (Multiscan FC; Thermo Fisher, USA) z wykorzystaniem zestawów (Erba Lachema, Czechy), test systemy („Systemy diagnostyczne”, Rosja).

Wrażliwość na leki przeciwbakteryjne badano metodą dyfuzyjną krążkową i zestawami analizatorów. Ocenę wrażliwości na antybiotyki przeprowadzono zgodnie z kryteriami EUCAST 2018 (badania w latach 2018-2019), EUCAST 2021 (badania w latach 2021-2022).