- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT03225794
Transmission du virus mousseux simien à l'homme
Aspects épidémiologiques et moléculaires de la transmission interspécifique des virus mousseux des singes aux humains : un modèle des premiers stades de l'émergence virale.
Environ les trois quarts des agents viraux apparus récemment chez l'homme sont considérés comme provenant d'autres animaux. Ces virus ont souvent évolué et se sont propagés dans la population humaine par divers mécanismes après le contact initial qui a entraîné une transmission interspécifique. Cependant, la connaissance des stades initiaux de l'émergence des virus et des maladies associées est encore limitée dans de nombreux cas. La surveillance microbiologique des populations à risque de transmission permettrait de mieux comprendre l'initiation et les premiers stades du processus d'émergence.
Les primates non humains (PNH) partagent de nombreuses caractéristiques génétiques, physiologiques et microbiologiques avec les humains et sont des sources potentielles de nombreux agents infectieux. Ceci a été démontré pour plusieurs rétrovirus simiens. On pense que les VIH-1 et 2 proviennent respectivement des virus du chimpanzé et du mangabey, trouvés en Afrique centrale et occidentale. La distribution actuelle des différents sous-types moléculaires du rétrovirus oncogène HTLV-1 en Afrique est principalement le résultat de nombreux cas de transmission interspécifique de STLV-1 à partir d'espèces PNH dans un passé lointain.
Les virus mousseux appartiennent à la famille des Retrovidae et au genre Spumavirus. Ce sont des rétrovirus exogènes complexes et sont très courants chez de nombreuses espèces animales, notamment les primates, les chats, les bovins et les chevaux, chez lesquels ils provoquent des infections persistantes.
Le premier objectif des travaux est d'étudier les aspects épidémiologiques et moléculaires de la transmission des virus spumeux du singe à l'homme dans les populations à risque, comme les habitants (notamment les chasseurs) des villages des forêts denses du sud Cameroun. C'est un domaine dans lequel les PNH sont encore très répandus, avec une grande diversité d'espèces. Les chercheurs ont déjà montré que la prévalence des virus spumeux est très élevée chez ces singes et grands singes (gorilles et chimpanzés). Les contacts entre ces singes et les villageois sont très fréquents, principalement lors de la chasse. Le deuxième objectif du projet est d'étudier les caractéristiques cliniques et biologiques des personnes infectées et d'enquêter sur la transmission intrafamiliale à partir de cas index infectés.
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Intervention / Traitement
Description détaillée
CONTEXTE Une grande proportion, environ 75 %, des agents viraux qui sont apparus récemment chez l'homme proviennent d'autres animaux. Suite au contact initial entraînant une transmission interspécifique, ces virus ont souvent évolué et se sont propagés dans la population humaine ; divers mécanismes sont impliqués, mais la compréhension des étapes initiales de l'émergence des virus et des maladies associées est encore limitée dans de nombreux cas.
La surveillance microbiologique des populations à risque de transmission est nécessaire pour identifier et documenter l'initiation et les premiers stades du processus d'émergence.
Les primates non humains (NPH), qui partagent de nombreuses similitudes génétiques, physiologiques et microbiologiques avec les humains, sont une source potentielle de nombreux agents infectieux.
Cela a été clairement démontré pour plusieurs rétrovirus simiens : les VIH-1 et 2 seraient issus respectivement des virus du chimpanzé et du mangabey, en Afrique centrale et occidentale. La distribution des différents sous-types moléculaires du rétrovirus oncogène HTLV-1 en Afrique est principalement le résultat du schéma de transmission interspécifique du STLV-1 à partir de diverses espèces de PNH dans un passé lointain.
Les virus mousseux appartiennent à la famille des rétrovidae et au genre spumavirus. Ce sont des rétrovirus exogènes complexes et sont très courants chez de nombreuses espèces animales, notamment les primates, les chats, les bovins et les chevaux, chez lesquels ils provoquent des infections persistantes.
Les virus mousseux sont généralement non pathogènes, même chez les animaux infectés expérimentalement. Ils ne semblent pas causer de maladie chez les quelques humains qui ont été accidentellement infectés et suivis cliniquement et biologiquement à long terme (moins de 15 personnes ont été suivies à ce jour et elles étaient initialement en bonne santé, de sorte qu'il existe un biais de sélection). L'absence de pathogénicité in vivo contraste avec les forts effets cytopathogènes des virus spumeux in vitro où ils provoquent des syncytia dans les cultures cellulaires.
Contrairement aux lentivirus (VIH-SIV), les virus spumeux sont extrêmement stables génétiquement in vivo. L'analyse phylogénétique a mis en évidence une variabilité génétique, selon les espèces animales infectées. Ceci indique une longue coévolution de ces rétrovirus avec leurs hôtes naturels. Switzer et al. ont montré que les virus spumeux ont co-évolué avec les primates de l'ancien monde pendant au moins 30 millions d'années (Switzer et al. 2005). Ces données peuvent expliquer l'apparente absence de pathogénicité in vivo malgré une infection chronique.
Les caractéristiques moléculaires des virus spumeux ont été largement étudiées in vitro, mais on connaît actuellement peu de choses sur les caractéristiques de ces virus in vivo, et en particulier sur les déterminants épidémiologiques de l'infection. En effet, les modes de contamination et les caractéristiques de la primo-infection chez l'homme en conditions naturelles sont encore mal connues.
Les rares données épidémiologiques publiées concernent majoritairement des populations de PNH captifs : la séroprévalence des virus spumeux peut atteindre 75 % ou plus chez les adultes de ces populations. Plusieurs études ont montré que la salive des animaux infectés a des titres élevés de virus, évocateurs du mode de transmission. La muqueuse de l'oropharynx est un site important de réplication chez les singes verts et un article récent rapporte des niveaux élevés d'ARN viral dans la salive et des échantillons oropharyngés de macaques. Ces observations suggèrent que les morsures ou le contact avec la muqueuse buccale et la salive peuvent être des mécanismes de transmission, au moins dans certains cas. D'autres études dans des colonies de babouins en captivité suggèrent que la transmission peut être sexuelle et/ou de la mère à l'enfant par contact salivaire répété.
Une infection humaine par des virus spumeux a été signalée : 1 à 4 % des personnes professionnellement exposées aux PSN (comme les vétérinaires et le personnel qui travaille dans les animaleries, les zoos et les laboratoires de primatologie) en Amérique du Nord et, plus rarement, en Europe peuvent être infecté.
Un groupe américain a mis en évidence une infection par des virus spumeux, provenant de gorilles et de mandrills, chez certains chasseurs vivant au Cameroun (Wolfe et al. 2004). Quelques cas d'infection ont été mis en évidence chez des personnes en Asie du Sud-Est en contact avec des singes (en particulier des macaques) : personnes travaillant dans des temples, notamment en Indonésie, ou impliquées dans la chasse ou d'autres activités les mettant en contact étroit avec des singes. Des modèles mathématiques ont estimé qu'environ 6 visiteurs sur 1 000 dans les temples de Bali, en Indonésie, où il y a de nombreux macaques, ont été infectés par un virus spumeux simien (Engel et al. 2006).
La collaboration de longue date entre les chercheurs, le Centre Pasteur du Cameroun, l'IRD et l'Université de Yaoundé I, utilisant des techniques sérologiques et moléculaires (PCR), a mis en évidence des virus spumeux dans les populations sauvages de gorilles, chimpanzés, mandrills et drills. au Cameroun. Les populations adultes de PNH de ces régions sont fortement infectées par des virus spumeux, avec un virus spécifique pour chaque espèce (Calattini et al. 2004 , Calattini et al. 2006b).
Conformément à l'étude américaine citée plus haut, les chercheurs ont mis en évidence l'infection des chasseurs par les virus spumeux retrouvés chez les gorilles, les chimpanzés et les mandrills après avoir été en contact avec ces primates (Calattini et al. 2007).
L'unité EPVO de l'Institut Pasteur travaille en étroite collaboration avec le Centre Pasteur du Cameroun et l'IRD depuis plus de 15 ans sur de nombreuses études épidémiologiques dans le domaine des rétrovirus humains HTLV-1 (Mahieux et al. 2000b, Mauclere et al 1997), HTLV-2 (Gessain et al. 1995, Mauclere et al. 1995), les rétrovirus simiens STLV-1 et STLV-3 (Mahieux et al. 2000a, Meertens et al. 2002, Meertens et al. 2001, Meertens et al. 2003, Nerrienet et al. 2004, Nerrienet et al. 2001) et HTLV-3 (Calattini et al. 2009, Calattini et al. 2006a, Calattini et al. 2005).
Les populations humaines étudiées se trouvent principalement dans le sud du Cameroun. Les enquêteurs continueront à se concentrer sur plusieurs populations du sud du Cameroun pour recueillir de plus amples informations sur les facteurs de risque d'acquisition de rétrovirus spumeux suite à un contact avec des PSN.
Ces populations vivent à proximité ou dans des zones de forêt tropicale dense. Ils sont particulièrement menacés, en raison de la forte biodiversité des PSN dans ces régions. Le plus grand risque provient d'un contact relativement fréquent avec les PNH lors de la chasse, qui est destinée à la fois à la consommation et à la vente de viande de brousse.
OBJECTIFS Le projet présenté ici comprend quatre phases. Ces phases peuvent être réalisées simultanément.
Objectif principal (phases 1 et 2) L'objectif de ce travail est de réaliser une enquête sérologique et moléculaire pour évaluer la prévalence de l'infection par le virus de la mousse chez les personnes à risque de contact avec des singes et de caractériser les facteurs de risque de transmission interspécifique.
Ce projet correspond au suivi microbiologique et, en particulier, à l'étude des premiers stades de l'émergence virale.
Objectifs secondaires (phases 3 et 4)
- Enquêter sur la possible transmission intrafamiliale de virus spumeux à partir de cas index, qui ont tous contracté le virus en se faisant piquer par un grand singe.
- Enquêter sur les éventuelles anomalies biologiques (en particulier immuno-virologiques) et cliniques chez les personnes infectées par une étude cas-témoin. Cela nécessitera un minimum de 30 cas index et de 30 à 60 témoins, si possible.
ORGANISATION DE L'ETUDE L'intérêt et l'importance de ce travail sur l'émergence virale seront présentés aux autorités locales tant administratives que coutumières (chef de village). Les enquêteurs travailleront dans trois régions du sud du Cameroun : la région côtière (Bipindi/Lolodorf/Campo), une région plus centrale (Djoum/Oveng/Mintom/Akonolinga/Somolamo), et à l'Est dans la région d'Abong-Mang, Lomié et Messok.
Dans ces zones forestières, les enquêteurs travaillent dans les villages bantous (Ngoumba, Fang, Mvae, Zimé, etc.) et auprès des deux populations différentes de Pygmées, les Bakolas à l'Ouest et les Bakas à l'Est.
Les informations sont fournies à chaque individu et le consentement écrit de tous les participants est recueilli par les médecins.
Dans la phase 1 du projet, l'étude est proposée à tous les adultes. Il n'y a pas de sélection. Un examen physique et une prise de sang dans un tube EDTA de 5/10 ml sont effectués.
Dans la phase 2, les enquêteurs rechercheront spécifiquement des adultes qui ont été en contact avec un PSN au cours de leur vie. Ces contacts peuvent inclure des morsures, des égratignures ou d'autres blessures pendant la chasse ou des rencontres occasionnelles avec des PSN. Un examen et une prise de sang dans un tube EDTA de 5/10 ml sont réalisés. Les données épidémiologiques sur les facteurs de risque sont recueillies au moyen d'un court questionnaire.
En phase 3, les enquêteurs effectueront une deuxième visite pour étendre l'enquête à la famille nucléaire des personnes infectées (conjoint et enfants). Un examen et une prise de sang dans un tube EDTA de 5/10 ml sont réalisés (Tableau 1).
Au cours de la Phase 4, des examens cliniques et biologiques complémentaires seront réalisés sur les personnes infectées au Centre Pasteur du Cameroun à Yaoundé (Phase 4). Au cours de cette visite, la salive est recueillie. Les échantillons oraux seront prélevés en frottant l'intérieur de la joue avec un écouvillon, puis en rinçant la bouche et en recueillant le liquide de rinçage dans une bouteille stérile. Du sang sera prélevé pour d'autres études. L'hébergement à Yaoundé, le transport et les repas des sujets seront pris en charge par l'EPVO.
L'étude familiale de détection d'une éventuelle transmission du virus, et l'étude clinique et biologique cas-témoins, seront réalisées lors de la deuxième phase, si suffisamment de personnes infectées sont détectées lors de la première enquête séro-épidémiologique et virologique.
L'unité EPVO de l'Institut Pasteur est entièrement responsable de l'organisation et de l'exécution du travail de terrain avec le soutien logistique de l'IRD (location d'un véhicule avec chauffeur) et du CPC (accueil au laboratoire de virologie). Le Pr Antoine Gessain coordonne le projet à Paris et au Cameroun, et le Dr Edouard Betsem organise les travaux au Cameroun.
Les échantillons sont aliquotés. Deux aliquotes de plasma et une préparation de buffy coat de sang périphérique sont congelés au Centre Pasteur au Cameroun. Dans certains cas, des cellules mononucléaires du sang périphérique seront obtenues sur Ficoll puis cultivées.
Ces prélèvements sont ensuite acheminés à l'Institut Pasteur de Paris par voie aérienne, selon les normes de transport en vigueur.
De retour à Paris, des tests biologiques et des analyses statistiques sont réalisés par les membres de l'unité EPVO.
Type d'étude
Inscription (Estimé)
Contacts et emplacements
Coordonnées de l'étude
- Nom: Antoine GESSAIN, MD
- Numéro de téléphone: +33 1 45 68 89 37
- E-mail: antoine.gessain@pasteur.fr
Sauvegarde des contacts de l'étude
- Nom: Florence BUSEYNE, PhD
- Numéro de téléphone: + 33 1 45 68 88 99
- E-mail: florence.buseyne@pasteur.fr
Lieux d'étude
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-
-
Yaoundé, Cameroun
- Recrutement
- Centre Pasteur du CAmeroun
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Contact:
- Chanceline Bilounga Ndongo, MD
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Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
Accepte les volontaires sains
Méthode d'échantillonnage
Population étudiée
L'enquête a été et sera menée dans des villages du sud du Cameroun et la population cible évoluera au cours des quatre phases de l'étude comme suit :
- Initialement, tous les adultes rencontrés (Phase 1).
- Dans la deuxième phase, les personnes ayant été en contact physique avec des singes (morsures, griffures, blessures, etc.) principalement lors de la chasse et du nettoyage de la viande de brousse
- Enfin, après le dépistage : focus sur les personnes infectées et inclusion de leur famille proche (principalement conjoints et enfants) pour étudier une éventuelle transmission intrafamiliale (Phase 3).
- Pour les personnes infectées, un examen clinique, biologique et immunologique annuel, pendant 3 ans (Phase 4). Une personne non infectée appariée pour l'âge, le sexe, le groupe ethnique et la localité sera recrutée comme témoin pour chaque cas.
La description
Critère d'intégration:
- Vivre dans une zone rurale du Cameroun
- Avoir > 5 ans
- Avoir reçu des informations sur l'étude et avoir fourni un consentement écrit pour soi et les enfants, le cas échéant (pour toutes les phases)
Critère d'exclusion:
- Ayant refusé de donner son consentement
- Avoir moins de 5 ans
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Modèles d'observation: Cohorte
- Perspectives temporelles: Transversale
Cohortes et interventions
Groupe / Cohorte |
Intervention / Traitement |
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Les contrôles
Adultes vivant en zone rurale au Cameroun, non infectés par des virus spumeux simiens
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Des échantillons de plasma sont testés pour la présence d'anticorps dirigés contre les virus spumeux par western blot (WB).
La lignée cellulaire BHK-21 infectée par un virus spumeux de chimpanzé est utilisée comme source d'antigène viral.
Les échantillons sont considérés comme positifs s'il existe une réactivité nette contre le doublet GAG (70 à 74 kD).
L'ADN de poids moléculaire élevé sera extrait, à partir de couches leucocytaires, de cultures cellulaires ou des deux, pour des études de biologie moléculaire.
La présence et la qualité de l'ADN seront vérifiées par amplification d'un fragment du gène de la bêta-globine.
Deux régions de l'ADN génomique du virus mousseux seront amplifiées par PCR nichée, à l'aide d'amplimères génériques, donnant naissance à des fragments du gène de l'intégrase (425 pb) et du LTR (109 pb).
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Infection par le virus Simian Foamy
Adultes vivant en zone rurale au Cameroun, infectés par des virus spumeux simiens
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Des échantillons de plasma sont testés pour la présence d'anticorps dirigés contre les virus spumeux par western blot (WB).
La lignée cellulaire BHK-21 infectée par un virus spumeux de chimpanzé est utilisée comme source d'antigène viral.
Les échantillons sont considérés comme positifs s'il existe une réactivité nette contre le doublet GAG (70 à 74 kD).
L'ADN de poids moléculaire élevé sera extrait, à partir de couches leucocytaires, de cultures cellulaires ou des deux, pour des études de biologie moléculaire.
La présence et la qualité de l'ADN seront vérifiées par amplification d'un fragment du gène de la bêta-globine.
Deux régions de l'ADN génomique du virus mousseux seront amplifiées par PCR nichée, à l'aide d'amplimères génériques, donnant naissance à des fragments du gène de l'intégrase (425 pb) et du LTR (109 pb).
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Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Infection par le virus de la mousse simienne par détermination de la présence d'anticorps spécifiques dans le plasma
Délai: 3 années
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Détermination de la présence d'anticorps spécifiques dans le plasma par Western blot positif pour le virus spumeux
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3 années
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Infection par le virus de la mousse simienne par détermination de la présence d'ADN viral dans les cellules sanguines
Délai: 3 années
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Détermination de la présence d'ADN viral dans les cellules sanguines par un test PCR positif utilisant des amplimères génériques, donnant naissance à des fragments du gène de l'intégrase (425 pb) et du LTR (109 pb).
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3 années
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Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Antoine GESSAIN, MD, Institut Pasteur
Publications et liens utiles
Publications générales
- Calattini S, Betsem E, Bassot S, Chevalier SA, Mahieux R, Froment A, Gessain A. New strain of human T lymphotropic virus (HTLV) type 3 in a Pygmy from Cameroon with peculiar HTLV serologic results. J Infect Dis. 2009 Feb 15;199(4):561-4. doi: 10.1086/596206.
- Calattini S, Betsem EB, Froment A, Mauclere P, Tortevoye P, Schmitt C, Njouom R, Saib A, Gessain A. Simian foamy virus transmission from apes to humans, rural Cameroon. Emerg Infect Dis. 2007 Sep;13(9):1314-20. doi: 10.3201/eid1309.061162.
- Calattini S, Chevalier SA, Duprez R, Afonso P, Froment A, Gessain A, Mahieux R. Human T-cell lymphotropic virus type 3: complete nucleotide sequence and characterization of the human tax3 protein. J Virol. 2006 Oct;80(19):9876-88. doi: 10.1128/JVI.00799-06.
- Calattini S, Chevalier SA, Duprez R, Bassot S, Froment A, Mahieux R, Gessain A. Discovery of a new human T-cell lymphotropic virus (HTLV-3) in Central Africa. Retrovirology. 2005 May 9;2:30. doi: 10.1186/1742-4690-2-30.
- Calattini S, Nerrienet E, Mauclere P, Georges-Courbot MC, Saib A, Gessain A. Natural simian foamy virus infection in wild-caught gorillas, mandrills and drills from Cameroon and Gabon. J Gen Virol. 2004 Nov;85(Pt 11):3313-3317. doi: 10.1099/vir.0.80241-0.
- Calattini S, Wanert F, Thierry B, Schmitt C, Bassot S, Saib A, Herrenschmidt N, Gessain A. Modes of transmission and genetic diversity of foamy viruses in a Macaca tonkeana colony. Retrovirology. 2006 Apr 11;3:23. doi: 10.1186/1742-4690-3-23.
- Engel G, Hungerford LL, Jones-Engel L, Travis D, Eberle R, Fuentes A, Grant R, Kyes R, Schillaci M. Risk assessment: A model for predicting cross-species transmission of simian foamy virus from macaques (M. fascicularis) to humans at a monkey temple in Bali, Indonesia. Am J Primatol. 2006 Sep;68(9):934-48. doi: 10.1002/ajp.20299.
- Gessain A, Mauclere P, Froment A, Biglione M, Le Hesran JY, Tekaia F, Millan J, de The G. Isolation and molecular characterization of a human T-cell lymphotropic virus type II (HTLV-II), subtype B, from a healthy Pygmy living in a remote area of Cameroon: an ancient origin for HTLV-II in Africa. Proc Natl Acad Sci U S A. 1995 Apr 25;92(9):4041-5. doi: 10.1073/pnas.92.9.4041.
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- Mahieux R, Horal P, Mauclere P, Mercereau-Puijalon O, Guillotte M, Meertens L, Murphy E, Gessain A. Human T-cell lymphotropic virus type 1 gag indeterminate western blot patterns in Central Africa: relationship to Plasmodium falciparum infection. J Clin Microbiol. 2000 Nov;38(11):4049-57. doi: 10.1128/JCM.38.11.4049-4057.2000.
- Mauclere P, Le Hesran JY, Mahieux R, Salla R, Mfoupouendoun J, Abada ET, Millan J, de The G, Gessain A. Demographic, ethnic, and geographic differences between human T cell lymphotropic virus (HTLV) type I-seropositive carriers and persons with HTLV-I Gag-indeterminate Western blots in Central Africa. J Infect Dis. 1997 Aug;176(2):505-9. doi: 10.1086/514071.
- Mauclere P, Mahieux R, Garcia-Calleja JM, Salla R, Tekaia F, Millan J, De The G, Gessain A. A new HTLV type II subtype A isolate in an HIV type 1-infected prostitute from Cameroon, Central Africa. AIDS Res Hum Retroviruses. 1995 Aug;11(8):989-93. doi: 10.1089/aid.1995.11.989.
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- Meertens L, Rigoulet J, Mauclere P, Van Beveren M, Chen GM, Diop O, Dubreuil G, Georges-Goubot MC, Berthier JL, Lewis J, Gessain A. Molecular and phylogenetic analyses of 16 novel simian T cell leukemia virus type 1 from Africa: close relationship of STLV-1 from Allenopithecus nigroviridis to HTLV-1 subtype B strains. Virology. 2001 Sep 1;287(2):275-85. doi: 10.1006/viro.2001.1018.
- Meertens L, Shanmugam V, Gessain A, Beer BE, Tooze Z, Heneine W, Switzer WM. A novel, divergent simian T-cell lymphotropic virus type 3 in a wild-caught red-capped mangabey (Cercocebus torquatus torquatus) from Nigeria. J Gen Virol. 2003 Oct;84(Pt 10):2723-2727. doi: 10.1099/vir.0.19253-0.
- Nerrienet E, Meertens L, Kfutwah A, Foupouapouognigni Y, Ayouba A, Gessain A. Simian T cell leukaemia virus type I subtype B in a wild-caught gorilla (Gorilla gorilla gorilla) and chimpanzee (Pan troglodytes vellerosus) from Cameroon. J Gen Virol. 2004 Jan;85(Pt 1):25-29. doi: 10.1099/vir.0.19314-0.
- Nerrienet E, Meertens L, Kfutwah A, Foupouapouognigni Y, Gessain A. Molecular epidemiology of simian T-lymphotropic virus (STLV) in wild-caught monkeys and apes from Cameroon: a new STLV-1, related to human T-lymphotropic virus subtype F, in a Cercocebus agilis. J Gen Virol. 2001 Dec;82(Pt 12):2973-2977. doi: 10.1099/0022-1317-82-12-2973.
- Switzer WM, Salemi M, Shanmugam V, Gao F, Cong ME, Kuiken C, Bhullar V, Beer BE, Vallet D, Gautier-Hion A, Tooze Z, Villinger F, Holmes EC, Heneine W. Ancient co-speciation of simian foamy viruses and primates. Nature. 2005 Mar 17;434(7031):376-80. doi: 10.1038/nature03341.
- Wolfe ND, Switzer WM, Carr JK, Bhullar VB, Shanmugam V, Tamoufe U, Prosser AT, Torimiro JN, Wright A, Mpoudi-Ngole E, McCutchan FE, Birx DL, Folks TM, Burke DS, Heneine W. Naturally acquired simian retrovirus infections in central African hunters. Lancet. 2004 Mar 20;363(9413):932-7. doi: 10.1016/S0140-6736(04)15787-5.
- Couteaudier M, Montange T, Njouom R, Bilounga-Ndongo C, Gessain A, Buseyne F. Plasma antibodies from humans infected with zoonotic simian foamy virus do not inhibit cell-to-cell transmission of the virus despite binding to the surface of infected cells. PLoS Pathog. 2022 May 23;18(5):e1010470. doi: 10.1371/journal.ppat.1010470. eCollection 2022 May.
- Buseyne F, Betsem E, Montange T, Njouom R, Bilounga Ndongo C, Hermine O, Gessain A. Clinical Signs and Blood Test Results Among Humans Infected With Zoonotic Simian Foamy Virus: A Case-Control Study. J Infect Dis. 2018 Jun 5;218(1):144-151. doi: 10.1093/infdis/jiy181.
- Dynesen LT, Fernandez I, Coquin Y, Delaplace M, Montange T, Njouom R, Bilounga-Ndongo C, Rey FA, Gessain A, Backovic M, Buseyne F. Neutralization of zoonotic retroviruses by human antibodies: Genotype-specific epitopes within the receptor-binding domain from simian foamy virus. PLoS Pathog. 2023 Apr 24;19(4):e1011339. doi: 10.1371/journal.ppat.1011339. eCollection 2023 Apr.
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