- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT03979339
Faisabilité d'une nouvelle technologie pour isoler les cellules tumorales circulantes (CTC-SMMiL-E)
Faisabilité d'une nouvelle technologie pour isoler les cellules tumorales circulantes chez des patients cancéreux sélectionnés et des volontaires sains
Il s'agit d'une recherche interventionnelle prospective monosite avec une collection d'échantillons biologiques.
L'objectif principal de l'essai est d'évaluer la capacité de la "nouvelle technologie" à isoler les cellules tumorales circulantes (CTC) chez des patients cancéreux sélectionnés.
Cinq groupes seront constitués : dans un premier temps le Groupe 0 : Volontaires sains inclus pour le test de spike-in ; puis les quatre groupes, Groupe 1 : cancer du sein métastatique HER2 positif ; Groupe 2 : Cancer de l'ovaire avancé CA-125 positif ; Groupe 3 : cancer de la prostate métastatique PSA-positif résistant à la castration ; Groupe 4 : Volontaires sains inclus comme contrôle).
Dans chaque groupe, le pourcentage de cas avec des cellules tumorales circulantes identifiées sera estimé.
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Intervention / Traitement
Description détaillée
Il s'agit d'une recherche prospective interventionnelle monosite avec une collection d'échantillons biologiques ("Recherche Impliquant la Personne Humaine de type 2" selon la législation française).
Dans un premier temps, une cohorte de 20 volontaires sains (Groupe 0 : Volontaires sains inclus pour le test de spike-in) sera constituée pour le test de spike-in.
Ensuite, recrutement des trois groupes de 14 patientes chacun (Groupe 1 : Cancer du sein métastatique HER2 positif ; Groupe 2 : Cancer de l'ovaire avancé CA-125 positif ; Groupe 3 : Cancer de la prostate métastatique PSA positif résistant à la castration) et du groupe témoin de 14 volontaires sains (Groupe 4 : volontaires sains inclus comme contrôle) seront effectués en parallèle.
Dans chaque groupe, le pourcentage de cas avec des cellules tumorales circulantes identifiées sera estimé. Le succès sera défini comme suit : la nouvelle technique a isolé des cellules circulantes putatives qui ont été confirmées comme cellules tumorales par l'approche immuno-histochimique.
Les cellules tumorales circulantes (CTC) seront identifiées comme suit :
- Groupe 1 - les cellules circulantes putatives isolées par la nouvelle technique doivent être testées comme HER-2 positives à l'aide de l'hybridation in situ par fluorescence (FISH) pour être considérées comme de véritables CTC
- Groupe 2 - les cellules circulantes putatives isolées par la nouvelle technique doivent être testées comme positives au CA 125 par immuno-histochimie (IHC) pour être considérées comme de véritables CTC
- Groupe 3 - les cellules circulantes putatives isolées par la nouvelle technique doivent être testées comme PSA positives en utilisant l'IHC pour être considérées comme de vrais CTC Pour les volontaires sains inclus comme témoins, si des cellules circulantes putatives sont observées, ces volontaires sains seront testés contre les trois marqueurs (HER2, CA-125 et PSA).
L'échec sera défini comme suit : la technique n'a pas réussi à identifier les cellules tumorales circulantes, soit en raison d'un problème technique, soit parce qu'il n'y avait pas de cellule identifiée par la nouvelle technique, soit enfin parce que les cellules identifiées étaient négatives par la technique standard FISH ou IHC .
Les différentes caractéristiques de ces cellules seront décrites : taille, caractéristiques cytologiques, nombre, etc.
Les échantillons secondaires collectés seront congelés et une nouvelle technique d'isolement du CTC sera appliquée une deuxième fois pour décrire l'impact de la congélation sur la capacité d'isolement du CTC.
L'objectif principal de l'essai est d'évaluer la capacité de la "nouvelle technologie" à isoler les cellules tumorales circulantes (CTC) chez des patients cancéreux sélectionnés.
Type d'étude
Inscription (Anticipé)
Phase
- N'est pas applicable
Contacts et emplacements
Lieux d'étude
-
-
-
Lille, France, 59020
- Recrutement
- Centre Oscar Lambret
-
Contact:
- Emilie KACZMAREK, MD
- Numéro de téléphone: 03 20 29 59 59
- E-mail: e-kaczmarek@o-lambret.fr
-
Chercheur principal:
- Emilie KACZMAREK, MD
-
Sous-enquêteur:
- AUDREY MAILLIEZ, MD
-
Sous-enquêteur:
- Nicolas PENEL, MD, PhD
-
Sous-enquêteur:
- Delphine HUDRY, MD
-
-
Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
Accepte les volontaires sains
Sexes éligibles pour l'étude
La description
Critère d'intégration:
- Âge ≥ 18 ans
- Inscrit à un système de sécurité sociale
- Consentement éclairé écrit signé et approuvé par la CISR
- Appartenant à l'un des groupes suivants :
- Groupe 1 - Cancer du sein HER-2 positif, défini comme suit : cancer du sein histologiquement prouvé, HER-2 positif, avec métastases (stade IV) nécessitant un traitement de première ligne
- Groupe 2 - Cancer de l'ovaire avancé, défini comme suit : cancer de l'ovaire de stade III ou IV prouvé histologiquement nécessitant une chimiothérapie de première intention
- Groupe 3 - Cancer de la prostate métastatique, défini comme suit : cancer de la prostate histologiquement prouvé, stade IV, résistant à la castration nécessitant une chimiothérapie par docétaxel ou un traitement par hormonothérapie de 2ème génération (par ex. enzalutamide ou abiratérone)
- Groupes 0 et 4 - Volontaires sains définis comme suit : Aucun antécédent personnel de maladie maligne
Critère d'exclusion:
- Femme enceinte ou allaitante
- Patient sous tutelle ou curatelle
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Objectif principal: Autre
- Répartition: N / A
- Modèle interventionnel: Affectation à un seul groupe
- Masquage: Aucun (étiquette ouverte)
Armes et Interventions
Groupe de participants / Bras |
Intervention / Traitement |
|---|---|
|
Expérimental: prélèvement d'échantillons sanguins
Pour tous les participants quel que soit le groupe Groupes 0 et 4 : Volontaires sains Groupe 1 : Cancer du sein métastatique HER2 positif Groupe 2 : Cancer de l'ovaire avancé CA-125 positif Groupe 3 : Cancer de la prostate métastatique PSA positif résistant à la castration Les participants recevront les interventions suivantes car ils sont enrôlés dans l'étude : prélèvement sanguin de 32mL (4x8mL en tubes EDTA)
|
Un volume total de 32 ml de sang sera prélevé chez chaque sujet et séparé dans 4 tubes vacutainer EDTA de 10 ml Tubes EDTA de 8 ml chacun.
|
Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
|
Pourcentage de cas avec des cellules tumorales circulantes identifiées.
Délai: dans les 24 heures suivant l'inclusion (prélèvement sanguin)
|
Évaluer la capacité de la « nouvelle technologie » à isoler les cellules tumorales circulantes (CTC) chez des patients cancéreux sélectionnés. Dans chaque groupe, le pourcentage de cas avec des cellules tumorales circulantes identifiées sera estimé. Succès : la technique a isolé des cellules circulantes putatives qui ont été confirmées comme cellules tumorales par l'approche immuno-histochimique. Échec : la technique n'a pas réussi à identifier les cellules tumorales circulantes, soit en raison d'un problème technique, soit parce qu'il n'y avait pas de cellule identifiée par la nouvelle technique, soit enfin parce que les cellules identifiées étaient négatives par la technique standard FISH ou IHC. Pour être considérées comme de véritables CTC, les cellules circulantes putatives isolées par la nouvelle technique doivent être testées comme :
|
dans les 24 heures suivant l'inclusion (prélèvement sanguin)
|
Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
|
Description de la cellule circulante isolée
Délai: dans les 24 heures suivant l'inclusion (prélèvement sanguin)
|
Décrire les différentes caractéristiques de ces cellules : taille, caractéristiques cytologiques, nombre... Ces informations permettront de caractériser les cellules circulantes isolées. |
dans les 24 heures suivant l'inclusion (prélèvement sanguin)
|
|
Pourcentage de cas avec des cellules tumorales circulantes identifiées après stockage congelé
Délai: dans les 24 heures suivant l'inclusion (prélèvement sanguin)
|
Évaluer la capacité de la nouvelle technologie à isoler le CTC Au fur et à mesure de la collecte secondaire, les échantillons collectés seront congelés et une nouvelle technique d'isolement du CTC sera appliquée une seconde fois pour décrire l'impact du gel sur notre capacité à isoler le CTC. Dans chaque groupe, le pourcentage de cas avec des cellules tumorales circulantes identifiées sera estimé. Pour être considérées comme de véritables CTC, les cellules circulantes putatives isolées par la nouvelle technique doivent être testées comme :
|
dans les 24 heures suivant l'inclusion (prélèvement sanguin)
|
Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Emilie KACZMAREK, MD, Medical Oncology Department - Centre Oscar Lambret
Publications et liens utiles
Publications générales
- Bednarz-Knoll N, Alix-Panabieres C, Pantel K. Plasticity of disseminating cancer cells in patients with epithelial malignancies. Cancer Metastasis Rev. 2012 Dec;31(3-4):673-87. doi: 10.1007/s10555-012-9370-z.
- Allard WJ, Matera J, Miller MC, Repollet M, Connelly MC, Rao C, Tibbe AG, Uhr JW, Terstappen LW. Tumor cells circulate in the peripheral blood of all major carcinomas but not in healthy subjects or patients with nonmalignant diseases. Clin Cancer Res. 2004 Oct 15;10(20):6897-904. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-04-0378.
- Cristofanilli M, Budd GT, Ellis MJ, Stopeck A, Matera J, Miller MC, Reuben JM, Doyle GV, Allard WJ, Terstappen LW, Hayes DF. Circulating tumor cells, disease progression, and survival in metastatic breast cancer. N Engl J Med. 2004 Aug 19;351(8):781-91. doi: 10.1056/NEJMoa040766.
- Cristofanilli M, Hayes DF, Budd GT, Ellis MJ, Stopeck A, Reuben JM, Doyle GV, Matera J, Allard WJ, Miller MC, Fritsche HA, Hortobagyi GN, Terstappen LW. Circulating tumor cells: a novel prognostic factor for newly diagnosed metastatic breast cancer. J Clin Oncol. 2005 Mar 1;23(7):1420-30. doi: 10.1200/JCO.2005.08.140. Erratum In: J Clin Oncol. 2005 Jul 20;23(21):4808.
- Riethdorf S, Fritsche H, Muller V, Rau T, Schindlbeck C, Rack B, Janni W, Coith C, Beck K, Janicke F, Jackson S, Gornet T, Cristofanilli M, Pantel K. Detection of circulating tumor cells in peripheral blood of patients with metastatic breast cancer: a validation study of the CellSearch system. Clin Cancer Res. 2007 Feb 1;13(3):920-8. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-06-1695.
- Yagata H, Nakamura S, Toi M, Bando H, Ohno S, Kataoka A. Evaluation of circulating tumor cells in patients with breast cancer: multi-institutional clinical trial in Japan. Int J Clin Oncol. 2008 Jun;13(3):252-6. doi: 10.1007/s10147-007-0748-9. Epub 2008 Jun 14.
- Kurihara T, Itoi T, Sofuni A, Itokawa F, Tsuchiya T, Tsuji S, Ishii K, Ikeuchi N, Tsuchida A, Kasuya K, Kawai T, Sakai Y, Moriyasu F. Detection of circulating tumor cells in patients with pancreatic cancer: a preliminary result. J Hepatobiliary Pancreat Surg. 2008;15(2):189-95. doi: 10.1007/s00534-007-1250-5. Epub 2008 Apr 6.
- Khoja L, Backen A, Sloane R, Menasce L, Ryder D, Krebs M, Board R, Clack G, Hughes A, Blackhall F, Valle JW, Dive C. A pilot study to explore circulating tumour cells in pancreatic cancer as a novel biomarker. Br J Cancer. 2012 Jan 31;106(3):508-16. doi: 10.1038/bjc.2011.545. Epub 2011 Dec 20.
- Maheswaran S, Sequist LV, Nagrath S, Ulkus L, Brannigan B, Collura CV, Inserra E, Diederichs S, Iafrate AJ, Bell DW, Digumarthy S, Muzikansky A, Irimia D, Settleman J, Tompkins RG, Lynch TJ, Toner M, Haber DA. Detection of mutations in EGFR in circulating lung-cancer cells. N Engl J Med. 2008 Jul 24;359(4):366-77. doi: 10.1056/NEJMoa0800668. Epub 2008 Jul 2.
- Nagrath S, Sequist LV, Maheswaran S, Bell DW, Irimia D, Ulkus L, Smith MR, Kwak EL, Digumarthy S, Muzikansky A, Ryan P, Balis UJ, Tompkins RG, Haber DA, Toner M. Isolation of rare circulating tumour cells in cancer patients by microchip technology. Nature. 2007 Dec 20;450(7173):1235-9. doi: 10.1038/nature06385.
- Stott SL, Hsu CH, Tsukrov DI, Yu M, Miyamoto DT, Waltman BA, Rothenberg SM, Shah AM, Smas ME, Korir GK, Floyd FP Jr, Gilman AJ, Lord JB, Winokur D, Springer S, Irimia D, Nagrath S, Sequist LV, Lee RJ, Isselbacher KJ, Maheswaran S, Haber DA, Toner M. Isolation of circulating tumor cells using a microvortex-generating herringbone-chip. Proc Natl Acad Sci U S A. 2010 Oct 26;107(43):18392-7. doi: 10.1073/pnas.1012539107. Epub 2010 Oct 7.
- Stott SL, Lee RJ, Nagrath S, Yu M, Miyamoto DT, Ulkus L, Inserra EJ, Ulman M, Springer S, Nakamura Z, Moore AL, Tsukrov DI, Kempner ME, Dahl DM, Wu CL, Iafrate AJ, Smith MR, Tompkins RG, Sequist LV, Toner M, Haber DA, Maheswaran S. Isolation and characterization of circulating tumor cells from patients with localized and metastatic prostate cancer. Sci Transl Med. 2010 Mar 31;2(25):25ra23. doi: 10.1126/scitranslmed.3000403.
- Cen P, Ni X, Yang J, Graham DY, Li M. Circulating tumor cells in the diagnosis and management of pancreatic cancer. Biochim Biophys Acta. 2012 Dec;1826(2):350-6. doi: 10.1016/j.bbcan.2012.05.007. Epub 2012 Jun 7.
- Soeth E, Grigoleit U, Moellmann B, Roder C, Schniewind B, Kremer B, Kalthoff H, Vogel I. Detection of tumor cell dissemination in pancreatic ductal carcinoma patients by CK 20 RT-PCR indicates poor survival. J Cancer Res Clin Oncol. 2005 Oct;131(10):669-76. doi: 10.1007/s00432-005-0008-1. Epub 2005 Sep 1.
- Hoffmann K, Kerner C, Wilfert W, Mueller M, Thiery J, Hauss J, Witzigmann H. Detection of disseminated pancreatic cells by amplification of cytokeratin-19 with quantitative RT-PCR in blood, bone marrow and peritoneal lavage of pancreatic carcinoma patients. World J Gastroenterol. 2007 Jan 14;13(2):257-63. doi: 10.3748/wjg.v13.i2.257.
- de Albuquerque A, Kubisch I, Breier G, Stamminger G, Fersis N, Eichler A, Kaul S, Stolzel U. Multimarker gene analysis of circulating tumor cells in pancreatic cancer patients: a feasibility study. Oncology. 2012;82(1):3-10. doi: 10.1159/000335479. Epub 2012 Jan 20.
- Alix-Panabieres C, Pantel K. Circulating tumor cells: liquid biopsy of cancer. Clin Chem. 2013 Jan;59(1):110-8. doi: 10.1373/clinchem.2012.194258. Epub 2012 Sep 26.
- Pantel K, Speicher MR. The biology of circulating tumor cells. Oncogene. 2016 Mar 10;35(10):1216-24. doi: 10.1038/onc.2015.192. Epub 2015 Jun 8.
- Smerage JB, Barlow WE, Hortobagyi GN, Winer EP, Leyland-Jones B, Srkalovic G, Tejwani S, Schott AF, O'Rourke MA, Lew DL, Doyle GV, Gralow JR, Livingston RB, Hayes DF. Circulating tumor cells and response to chemotherapy in metastatic breast cancer: SWOG S0500. J Clin Oncol. 2014 Nov 1;32(31):3483-9. doi: 10.1200/JCO.2014.56.2561. Epub 2014 Jun 2.
- Wan L, Pantel K, Kang Y. Tumor metastasis: moving new biological insights into the clinic. Nat Med. 2013 Nov;19(11):1450-64. doi: 10.1038/nm.3391.
- Gorges TM, Kuske A, Rock K, Mauermann O, Muller V, Peine S, Verpoort K, Novosadova V, Kubista M, Riethdorf S, Pantel K. Accession of Tumor Heterogeneity by Multiplex Transcriptome Profiling of Single Circulating Tumor Cells. Clin Chem. 2016 Nov;62(11):1504-1515. doi: 10.1373/clinchem.2016.260299. Epub 2016 Sep 14.
- Zhang Z, Shiratsuchi H, Palanisamy N, Nagrath S, Ramnath N. Expanded Circulating Tumor Cells from a Patient with ALK-Positive Lung Cancer Present with EML4-ALK Rearrangement Along with Resistance Mutation and Enable Drug Sensitivity Testing: A Case Study. J Thorac Oncol. 2017 Feb;12(2):397-402. doi: 10.1016/j.jtho.2016.07.027. Epub 2016 Aug 6.
- Jordan NV, Bardia A, Wittner BS, Benes C, Ligorio M, Zheng Y, Yu M, Sundaresan TK, Licausi JA, Desai R, O'Keefe RM, Ebright RY, Boukhali M, Sil S, Onozato ML, Iafrate AJ, Kapur R, Sgroi D, Ting DT, Toner M, Ramaswamy S, Haas W, Maheswaran S, Haber DA. HER2 expression identifies dynamic functional states within circulating breast cancer cells. Nature. 2016 Sep 1;537(7618):102-106. doi: 10.1038/nature19328. Epub 2016 Aug 24.
- van de Stolpe A, Pantel K, Sleijfer S, Terstappen LW, den Toonder JM. Circulating tumor cell isolation and diagnostics: toward routine clinical use. Cancer Res. 2011 Sep 15;71(18):5955-60. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-11-1254. Epub 2011 Sep 6.
- Gorges TM, Tinhofer I, Drosch M, Rose L, Zollner TM, Krahn T, von Ahsen O. Circulating tumour cells escape from EpCAM-based detection due to epithelial-to-mesenchymal transition. BMC Cancer. 2012 May 16;12:178. doi: 10.1186/1471-2407-12-178.
- Vila A, Abal M, Muinelo-Romay L, Rodriguez-Abreu C, Rivas J, Lopez-Lopez R, Costa C. EGFR-Based Immunoisolation as a Recovery Target for Low-EpCAM CTC Subpopulation. PLoS One. 2016 Oct 6;11(10):e0163705. doi: 10.1371/journal.pone.0163705. eCollection 2016.
- Mostert B, Kraan J, Bolt-de Vries J, van der Spoel P, Sieuwerts AM, Schutte M, Timmermans AM, Foekens R, Martens JW, Gratama JW, Foekens JA, Sleijfer S. Detection of circulating tumor cells in breast cancer may improve through enrichment with anti-CD146. Breast Cancer Res Treat. 2011 May;127(1):33-41. doi: 10.1007/s10549-010-0879-y. Epub 2010 Apr 9.
- Alunni-Fabbroni M, Sandri MT. Circulating tumour cells in clinical practice: Methods of detection and possible characterization. Methods. 2010 Apr;50(4):289-97. doi: 10.1016/j.ymeth.2010.01.027. Epub 2010 Jan 29.
- Lowes LE, Allan AL. Recent advances in the molecular characterization of circulating tumor cells. Cancers (Basel). 2014 Mar 13;6(1):595-624. doi: 10.3390/cancers6010595.
- Vona G, Sabile A, Louha M, Sitruk V, Romana S, Schutze K, Capron F, Franco D, Pazzagli M, Vekemans M, Lacour B, Brechot C, Paterlini-Brechot P. Isolation by size of epithelial tumor cells : a new method for the immunomorphological and molecular characterization of circulatingtumor cells. Am J Pathol. 2000 Jan;156(1):57-63. doi: 10.1016/S0002-9440(10)64706-2.
- Farace F, Massard C, Vimond N, Drusch F, Jacques N, Billiot F, Laplanche A, Chauchereau A, Lacroix L, Planchard D, Le Moulec S, Andre F, Fizazi K, Soria JC, Vielh P. A direct comparison of CellSearch and ISET for circulating tumour-cell detection in patients with metastatic carcinomas. Br J Cancer. 2011 Sep 6;105(6):847-53. doi: 10.1038/bjc.2011.294. Epub 2011 Aug 9.
- Zheng S, Lin HK, Lu B, Williams A, Datar R, Cote RJ, Tai YC. 3D microfilter device for viable circulating tumor cell (CTC) enrichment from blood. Biomed Microdevices. 2011 Feb;13(1):203-13. doi: 10.1007/s10544-010-9485-3.
- Karabacak NM, Spuhler PS, Fachin F, Lim EJ, Pai V, Ozkumur E, Martel JM, Kojic N, Smith K, Chen PI, Yang J, Hwang H, Morgan B, Trautwein J, Barber TA, Stott SL, Maheswaran S, Kapur R, Haber DA, Toner M. Microfluidic, marker-free isolation of circulating tumor cells from blood samples. Nat Protoc. 2014 Mar;9(3):694-710. doi: 10.1038/nprot.2014.044. Epub 2014 Feb 27.
- Ozkumur E, Shah AM, Ciciliano JC, Emmink BL, Miyamoto DT, Brachtel E, Yu M, Chen PI, Morgan B, Trautwein J, Kimura A, Sengupta S, Stott SL, Karabacak NM, Barber TA, Walsh JR, Smith K, Spuhler PS, Sullivan JP, Lee RJ, Ting DT, Luo X, Shaw AT, Bardia A, Sequist LV, Louis DN, Maheswaran S, Kapur R, Haber DA, Toner M. Inertial focusing for tumor antigen-dependent and -independent sorting of rare circulating tumor cells. Sci Transl Med. 2013 Apr 3;5(179):179ra47. doi: 10.1126/scitranslmed.3005616.
- Jaeger BAS, Neugebauer J, Andergassen U, Melcher C, Schochter F, Mouarrawy D, Ziemendorff G, Clemens M, V Abel E, Heinrich G, Schueller K, Schneeweiss A, Fasching P, Beckmann MW, Scholz C, Friedl TWP, Friese K, Pantel K, Fehm T, Janni W, Rack B. The HER2 phenotype of circulating tumor cells in HER2-positive early breast cancer: A translational research project of a prospective randomized phase III trial. PLoS One. 2017 Jun 6;12(6):e0173593. doi: 10.1371/journal.pone.0173593. eCollection 2017.
- Zhang S, Li L, Wang T, Bian L, Hu H, Xu C, Liu B, Liu Y, Cristofanilli M, Jiang Z. Real-time HER2 status detected on circulating tumor cells predicts different outcomes of anti-HER2 therapy in histologically HER2-positive metastatic breast cancer patients. BMC Cancer. 2016 Jul 25;16:526. doi: 10.1186/s12885-016-2578-5.
- Agelaki S, Kalykaki A, Markomanolaki H, Papadaki MA, Kallergi G, Hatzidaki D, Kalbakis K, Mavroudis D, Georgoulias V. Efficacy of Lapatinib in Therapy-Resistant HER2-Positive Circulating Tumor Cells in Metastatic Breast Cancer. PLoS One. 2015 Jun 17;10(6):e0123683. doi: 10.1371/journal.pone.0123683. eCollection 2015.
Liens utiles
- Predictive value of circulating tumor cells (CTCs) captured by microfluidic device in patients with epithelial ovarian cancer
- Circulating tumor cells: potential markers of minimal residual disease in ovarian cancer? a study of the OVCAD consortium
- The added value of circulating tumor cells examination in ovarian cancer staging
- Vimentin and Ki67 expression in circulating tumour cells derived from castrate-resistant prostate cancer
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Réel)
Achèvement primaire (Anticipé)
Achèvement de l'étude (Anticipé)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Réel)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (Réel)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
Plus d'information
Termes liés à cette étude
Termes MeSH pertinents supplémentaires
Autres numéros d'identification d'étude
- CTC-SMMiL-E-1901
- 2019-A01187-50 (Autre identifiant: ANSM)
Plan pour les données individuelles des participants (IPD)
Prévoyez-vous de partager les données individuelles des participants (DPI) ?
Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude
Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine
Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine
produit fabriqué et exporté des États-Unis.
Ces informations ont été extraites directement du site Web clinicaltrials.gov sans aucune modification. Si vous avez des demandes de modification, de suppression ou de mise à jour des détails de votre étude, veuillez contacter register@clinicaltrials.gov. Dès qu'un changement est mis en œuvre sur clinicaltrials.gov, il sera également mis à jour automatiquement sur notre site Web .