Effet de l'irrigation avec des solutions contenant des antibiotiques sur la douleur postopératoire et les bactéries intracanalaires

L'opérateur terminera le traitement de tous les cas en deux visites comme suit :

1. L'anesthésie sera réalisée à l'aide d'un bloc nerveux alvéolaire inférieur pour les prémolaires mandibulaires et d'une technique d'infiltration pour les dents antérieures maxillaires avec une solution anesthésique locale de 1,8 ml de chlorhydrate de mépivacaïne à 2 % avec de l'épinéphrine à 1:100 000.
2. Les caries et/ou les restaurations coronales seront complètement éliminées avec une fraise stérile et une digue en caoutchouc sera ensuite appliquée.
3. Le champ opératoire, y compris la dent, la pince et la feuille de digue en caoutchouc, sera nettoyé avec du peroxyde d'hydrogène à 30 % pendant 30 secondes, suivi d'un coton-tige stérile avec du NaOCl à 5,25 % pendant la même période, puis inactivé avec du thiosulfate de sodium à 5 %. .
4. La cavité d'accès sera préparée à l'aide d'une fraise ronde en carbure stérile de taille 3 et d'une fraise Endo-Z stérile.
5. Le champ opératoire et la chambre pulpaire seront à nouveau nettoyés et désinfectés de la même manière mentionnée ci-dessus.
6. La perméabilité des canaux radiculaires sera obtenue à l'aide de limes K manuelles en acier inoxydable de taille #10 ou #15. La longueur de travail (WL) sera déterminée à l'aide d'un localisateur d'apex électronique, puis confirmée par radiographie comme étant 1 mm plus courte que l'apex radiographique.
7. Le débridement et la préparation mécanique seront effectués avec la lime initiale accompagnée de 2 mL de solution saline stérile à 0,9 %, puis un échantillon de pré-instrumentation sera prélevé du canal radiculaire.

8. L'échantillon de pré-instrumentation (S1) sera prélevé comme suit : une pointe de papier stérile sera placée à l'intérieur du canal radiculaire pour absorber le liquide dans le canal jusqu'à un niveau d'environ 1 mm avant l'apex de la dent. La pointe de papier sera laissée dans le canal pendant 60 secondes. Ceci sera répété en utilisant trois pointes de papier stériles. Les pointes de papier seront ensuite transférées aseptiquement dans des tubes contenant 20 ml de bouillon au thioglycolate stérile.

   Analyse microbiologique Pour tester la présence de bactéries cultivables, les cultures seront ensemencées en bouillon au thioglycolate. Pour l'identification des principaux taxons anaérobies, les échantillons de canal radiculaire seront étalés sur une gélose au sang de mouton à 5 %, une gélose au sang de néomycine et une gélose à l'alcool phényléthylique avec un disque de métronidazole (5 μg, Oxoid, Basingstoke, Royaume-Uni). Les cultures seront incubées à 37°C pendant 72 heures dans une chambre anaérobie. De plus, les échantillons seront également cultivés en aérobiose sur de la gélose au sang de mouton à 5 % et de la gélose de MacConkey.

9. La préparation mécanique sera complétée en technique couronne en bas avec des limes rotatives Protaper Next fixées sur un moteur endodontique réglé à une vitesse de 300 tr/min et un couple de 2 Ncm. Des mouvements d'entrée et de sortie seront appliqués avec des longueurs de course ne dépassant pas 3 mm dans les tiers cervical, moyen et apical jusqu'à atteindre la WL établie. Tous les canaux radiculaires seront élargis à la taille X4 (40.06). Le canal sera irrigué et récapitulé après l'utilisation de chaque instrument selon le groupe attribué comme suit :

   Groupe 1 : irrigation alternée avec 1 ml de solution contenant un antibiotique suivi de 4 ml de solution d'hypochlorite de sodium à 2,5 % entre chaque taille d'instrument et la suivante. La solution contenant l'antibiotique sera préparée en mélangeant des quantités égales de 1,2 g de solution de co-amoxiclav et de 600 mg de solution de clindamycine dans un rapport de 1:1 en volume.

   Groupe 2 : Irrigation avec 5 mL de solution d'irrigation MTAD pendant 5 minutes entre chaque taille d'instrument et la suivante.

   Groupe 3 (témoin) : Irrigation avec 5 ml de solution d'irrigation d'hypochlorite de sodium à 2,5 % entre chaque taille d'instrument et la suivante.

10. Le canal radiculaire sera soigneusement irrigué avec l'irrigant alloué à l'aide d'une seringue jetable en plastique avec une aiguille à évent latéral de calibre 30 atteignant 1 mm de moins que la WL. Le canal sera ensuite séché à l'aide de pointes de papier stériles.
11. Les canaux irrigués avec du NaOCl (groupes 1 et 3) seront rincés avec 5 mL de thiosulfate de sodium à 5 % pour inactiver le NaOCl suivi de 5 mL de solution saline stérile à 0,9 %. Les canaux irrigués avec MTAD (groupe 2) seront rincés avec 5 mL de solution saline stérile à 0,9 %.
12. Un échantillon post-instrumentation (S2) sera prélevé comme décrit précédemment, puis la cavité sera scellée avec une boulette de coton stérile et un matériau de remplissage temporaire.
13. Le patient sera invité à enregistrer son niveau de douleur sur le NRS à 24 et 48 heures après l'opération et sera rappelé après 72 heures. Le patient se verra prescrire de l'ibuprofène (400 mg) à prendre en cas de douleur intolérable.
14. Lors du rendez-vous de rappel, le canal radiculaire sera accessible dans des conditions stériles et sera rincé avec 1 ml de solution saline stérile avant qu'un troisième échantillon (S3) ne soit prélevé comme décrit précédemment.
15. Une radiographie d'ajustement au cône principal sera prise, puis le canal radiculaire sera séché à l'aide de pointes de papier stériles et rempli de pointes de gutta percha et d'un scellant à base de résine en utilisant la technique de condensation latérale à froid.
16. La cavité d'accès sera scellée avec un matériau d'obturation temporaire et la restauration finale sera placée dans un délai d'une semaine.
17. Le patient sera invité à signaler tout gonflement, dans ce cas, il sera désigné pour un examen clinique afin d'évaluer la gravité par un évaluateur en aveugle et de déterminer si des antibiotiques/drainages systémiques seront nécessaires.