Efeito da irrigação com soluções contendo antibióticos na dor pós-operatória e bactérias intracanais

O operador completará o tratamento de todos os casos em duas visitas da seguinte forma:

1. A anestesia será realizada com bloqueio do nervo alveolar inferior para pré-molares inferiores e técnica de infiltração para dentes anteriores superiores com solução anestésica local de 1,8 mL de Mepivacaína HCl a 2% com epinefrina 1:100.000.
2. As cáries e/ou restaurações coronárias serão completamente removidas com broca estéril e o dique de borracha será então aplicado.
3. O campo operatório, incluindo o dente, pinça e lençol de borracha, será limpo com peróxido de hidrogênio a 30% por 30 segundos, seguido de um cotonete estéril com NaOCl 5,25% pelo mesmo período de tempo e, em seguida, inativado com tiossulfato de sódio 5% .
4. A cavidade de acesso será preparada usando uma broca redonda estéril de carboneto tamanho 3 e uma broca Endo-Z estéril.
5. O campo operatório e a câmara pulpar serão novamente limpos e desinfetados da mesma forma mencionada acima.
6. A desobstrução dos canais radiculares será obtida usando limas manuais de aço inoxidável nº 10 ou nº 15. O comprimento de trabalho (WL) será determinado usando um localizador de ápice eletrônico e confirmado radiograficamente como sendo 1 mm mais curto que o ápice radiográfico.
7. O desbridamento e o preparo mecânico serão realizados com a lima inicial juntamente com 2 mL de solução salina estéril 0,9% e em seguida será coletada uma amostra pré-instrumentação do canal radicular.

8. A amostra pré-instrumentação (S1) será coletada da seguinte forma: uma ponta de papel estéril será colocada dentro do canal radicular para absorver o fluido no canal até um nível de aproximadamente 1 mm aquém do ápice do dente. A ponta de papel será deixada no canal por 60 segundos. Isso será repetido usando três pontos de papel estéril. As pontas de papel serão então transferidas assepticamente para tubos contendo 20 mL de caldo tioglicolato estéril.

   Análise microbiológica Para testar a presença de bactérias cultiváveis, as culturas serão inoculadas em caldo tioglicolato. Para a identificação dos principais táxons anaeróbios, as amostras do canal radicular serão semeadas em ágar sangue de carneiro a 5%, ágar sangue neomicina e ágar álcool feniletílico com disco de metronidazol (5μg, Oxoid, Basingstoke, Reino Unido). As culturas serão incubadas a 37°C por 72 horas em câmara anaeróbica. Além disso, os espécimes também serão cultivados aerobiamente em ágar sangue de carneiro a 5% e ágar MacConkey.

9. A preparação mecânica será concluída em uma técnica coroa para baixo com limas rotativas Protaper Next ajustadas em um motor endodôntico ajustado a uma velocidade de 300 rpm e torque de 2 Ncm. Os movimentos de entrada e saída serão aplicados com comprimentos de curso não superiores a 3 mm nos terços cervical, médio e apical até atingir o WL estabelecido. Todos os canais radiculares serão ampliados para o tamanho X4 (40.06). O canal será irrigado e recapitulado após o uso de cada instrumento de acordo com o grupo alocado da seguinte forma:

   Grupo 1: Irrigação alternada com 1 mL de solução contendo antibiótico seguida de 4 mL de solução de hipoclorito de sódio 2,5% entre cada instrumento de tamanho e o subsequente. A solução contendo antibiótico será preparada misturando quantidades iguais de 1,2 g de solução de Co-amoxiclav e 600 mg de solução de Clindamicina na proporção de 1:1 em volume.

   Grupo 2: Irrigação com 5 mL de solução irrigadora MTAD por 5 minutos entre cada tamanho de instrumento e o consequente.

   Grupo 3 (controle): Irrigação com 5 mL de solução irrigadora de hipoclorito de sódio 2,5% entre cada instrumento de medida e o consequente.

10. O canal radicular será completamente irrigado com o irrigante alocado usando uma seringa de plástico descartável com uma agulha de calibre 30 com ventilação lateral atingindo 1 mm aquém do WL. O canal será então seco usando pontas de papel estéreis.
11. Canais irrigados com NaOCl (grupos 1 e 3) serão lavados com 5 mL de tiossulfato de sódio a 5% para inativar o NaOCl seguido de 5 mL de solução salina estéril 0,9%. Os canais irrigados com MTAD (grupo 2) serão lavados com 5 mL de solução salina estéril a 0,9%.
12. Uma amostra pós-instrumentação (S2) será coletada conforme descrito anteriormente e, em seguida, a cavidade será selada com uma bolinha de algodão estéril e um material de preenchimento temporário.
13. O paciente será instruído a registrar seu nível de dor na NRS em 24 e 48 horas de pós-operatório e será chamado após 72 horas. O paciente receberá Ibuprofeno (400 mg) para ser tomado em caso de dor intolerável.
14. Na consulta de retorno, o canal radicular será acessado em condições estéreis e será lavado com 1mL de solução salina estéril antes de uma terceira amostra (S3) ser coletada conforme descrito anteriormente.
15. A radiografia de ajuste do cone mestre será tomada e, em seguida, o canal radicular será seco com pontas de papel estéreis e preenchido com pontas de guta percha e cimento à base de resina usando a técnica de condensação lateral a frio.
16. A cavidade de acesso será selada com um material de preenchimento temporário e a restauração final será colocada dentro de uma semana.
17. O paciente será solicitado a relatar qualquer inchaço, nesse caso, ele será encaminhado para exame clínico para avaliar a gravidade por um avaliador cego e determinar se será necessário antibióticos/drenagem sistêmicos.