Effetto dell'irrigazione con soluzioni contenenti antibiotici sul dolore postoperatorio e sui batteri intracanali

L'operatore completerà il trattamento di tutti i casi in due visite come segue:

1. L'anestesia sarà ottenuta utilizzando il blocco del nervo alveolare inferiore per i denti premolari mandibolari e la tecnica di infiltrazione per i denti anteriori mascellari con una soluzione anestetica locale di 1,8 mL di 2% Mepivacaina HCl con 1:100.000 epinefrina.
2. Le carie e/o i restauri coronali verranno rimossi completamente con frese sterili e verrà quindi applicata la diga di gomma.
3. Il campo operatorio, compreso il dente, il morsetto e il foglio della diga di gomma verrà pulito con perossido di idrogeno al 30% per 30 secondi, seguito da un tampone di cotone sterile con NaOCl al 5,25% per lo stesso periodo di tempo e quindi inattivato con tiosolfato di sodio al 5%. .
4. La cavità di accesso verrà preparata utilizzando una fresa rotonda sterile al carburo misura 3 e una fresa Endo-Z sterile.
5. Il campo operatorio e la camera pulpare saranno nuovamente puliti e disinfettati con le stesse modalità sopra menzionate.
6. La pervietà dei canali radicolari sarà ottenuta utilizzando lime K manuali in acciaio inossidabile di misura n. 10 o n. 15. La lunghezza di lavoro (WL) sarà determinata utilizzando un localizzatore apicale elettronico, quindi confermata radiograficamente come 1 mm più corta dell'apice radiografico.
7. Lo sbrigliamento e la preparazione meccanica verranno eseguiti con il file iniziale insieme a 2 mL di soluzione salina sterile allo 0,9% e quindi verrà raccolto un campione pre-strumentazione dal canale radicolare.

8. Il campione pre-strumentazione (S1) verrà raccolto come segue: una punta di carta sterile verrà posizionata all'interno del canale radicolare per assorbire il fluido nel canale fino a un livello di circa 1 mm al di sotto dell'apice del dente. La punta della carta verrà lasciata nel canale per 60 secondi. Questo verrà ripetuto utilizzando tre punti di carta sterile. I punti di carta verranno quindi trasferiti asetticamente in provette contenenti 20 mL di brodo tioglicolato sterile.

   Analisi microbiologiche Per testare la presenza di batteri coltivabili, le colture saranno inoculate in brodo tioglicolato. Per l'identificazione dei principali taxa anaerobi, i campioni canalari saranno piastrati su agar sangue di montone al 5%, agar sangue neomicina e agar alcol feniletilico con metronidazolo (5μg, Oxoid, Basingstoke, UK). Le colture saranno incubate a 37°C per 72 ore in una camera anaerobica. Inoltre, i campioni saranno anche coltivati ​​in aerobiosi su agar sangue di montone al 5% e agar MacConkey.

9. La preparazione meccanica sarà completata con una tecnica crown down con lime rotanti Protaper Next montate su un motore endodontico regolato a una velocità di 300 giri/min e un torque di 2 Ncm. I movimenti dentro e fuori verranno applicati con lunghezze di corsa non superiori a 3 mm nei terzi cervicale, medio e apicale fino al raggiungimento del WL stabilito. Tutti i canali radicolari saranno ingranditi alla misura X4 (40.06). Il canale sarà irrigato e ricapitolato dopo l'uso di ogni strumento secondo il gruppo assegnato come segue:

   Gruppo 1: irrigazione alternata con 1 mL di soluzione contenente antibiotico seguita da 4 mL di soluzione di ipoclorito di sodio al 2,5% tra ogni strumento di misura e quello successivo. La soluzione contenente l'antibiotico verrà preparata miscelando quantità uguali di 1,2 g di soluzione di Co-amoxiclav e 600 mg di soluzione di Clindamicina in un rapporto di 1:1 in volume.

   Gruppo 2: Irrigazione con 5 mL di soluzione irrigante MTAD per 5 minuti tra ogni misura dello strumento e quella successiva.

   Gruppo 3 (controllo): Irrigazione con 5 mL di soluzione irrigante di ipoclorito di sodio al 2,5% tra ogni strumento di misura e quello successivo.

10. Il canale radicolare verrà accuratamente irrigato con l'irrigante assegnato utilizzando una siringa monouso in plastica con un ago calibro 30 con sfiato laterale che raggiunge 1 mm al di sotto del WL. Il canale verrà quindi asciugato utilizzando punte di carta sterili.
11. I canali irrigati con NaOCl (gruppi 1 e 3) saranno lavati con 5 mL di tiosolfato di sodio al 5% per inattivare l'NaOCl seguito da 5 mL di soluzione fisiologica sterile allo 0,9%. I canali irrigati con MTAD (gruppo 2) saranno lavati con 5 mL di soluzione salina sterile allo 0,9%.
12. Verrà prelevato un campione post-strumentazione (S2) come precedentemente descritto e quindi la cavità verrà sigillata con un batuffolo di cotone sterile e un materiale di riempimento provvisorio.
13. Il paziente verrà istruito a registrare il proprio livello di dolore su NRS a 24 e 48 ore dopo l'intervento e verrà richiamato dopo 72 ore. Al paziente verrà prescritto Ibuprofene (400 mg) da assumere in caso di dolore intollerabile.
14. Nell'appuntamento di richiamo, si accederà al canale radicolare in condizioni sterili e verrà lavato con 1 ml di soluzione salina sterile prima che venga prelevato un terzo campione (S3) come descritto in precedenza.
15. Verrà eseguita una radiografia master cone fit e quindi il canale radicolare verrà asciugato utilizzando punte di carta sterili e riempito con punte di guttaperca e sigillante a base di resina utilizzando la tecnica della condensazione laterale fredda.
16. La cavità di accesso verrà sigillata con un materiale di riempimento provvisorio e il restauro definitivo verrà posizionato entro una settimana.
17. Al paziente verrà chiesto di segnalare qualsiasi gonfiore, in tal caso, sarà nominato per un esame clinico per valutare la gravità da un valutatore in cieco e per determinare se saranno necessari antibiotici/drenaggio sistemici.