- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT04586686
Combiner les interventions de préservation de la fertilité pour atténuer la perte de fertilité après un cancer du sein (Coimbra)
Combiner les interventions de préservation de la fertilité pour atténuer la perte de fertilité après
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Intervention / Traitement
Description détaillée
Tous les patients subiront une biopsie du cortex ovarien par laparoscopie, après que l'éligibilité du patient aura été établie et que son consentement aura été obtenu. Le côté de la biopsie ovarienne sera randomisé le jour de la laparoscopie soit du côté droit (groupe 1) soit du côté gauche (groupe 2). Le tissu ovarien sera cryoconservé. Une petite partie sera également évaluée par le pathologiste pour dépister la contamination maligne et la densité folliculaire. Toutes les patientes continueront ensuite avec une stimulation ovarienne contrôlée.
Dans les deux groupes, une première analyse sanguine avec bilan hormonal (E2, P, LH, FSH, hCG et AMH) sera réalisée à la première visite, indépendamment de leur cycle. À ce moment-là, une échographie transvaginale (fréquence ≥ 7 MHz) sera également effectuée pour évaluer le nombre de follicules antraux et le volume ovarien. Le nombre de follicules antraux sera évalué à l'aide d'une évaluation 2D-US en temps réel, l'utilisation standard en pratique clinique. Le volume ovarien sera mesuré à l'aide de la formule de l'ellipsoïde allongé (volume = longueur x largeur x hauteur x 0,523). Si un follicule dominant est constaté, la choriongonadotrophine (Pregnyl® 5000 UI), la choriongonadotropine Alfa (Ovitrelle® 250 µg) ou la triptoréline (Gonapeptyl® ou Décapeptyl® 0,2 mg) seront administrées à la patiente pour déclencher l'ovulation. Par la suite, la stimulation ovarienne contrôlée peut être initiée en phase lutéale.
La taille de la biopsie du cortex ovarien sera calculée comme 20 % du volume ovarien mesuré lors de l'échographie initiale. Immédiatement après la biopsie ovarienne, les mesures objectives de la biopsie seront notées en poids (gramme) et en volume (longueur x largeur x hauteur mm³) car le fragment de biopsie peut être considéré comme une boîte rectangulaire. Un facteur de correction sera utilisé par la suite dans l'analyse statistique si le volume de la biopsie ovarienne n'est pas égal à 20 %.
La procédure laparoscopique par laquelle la biopsie du cortex ovarien sera réalisée sera standardisée : la technique développée par ProFam sera utilisée et adaptée si nécessaire à la discrétion du chirurgien. Une laparoscopie à trois ou quatre ports sera utilisée. La biopsie du cortex ovarien sera réalisée à l'aide d'un ciseau courbe. La cautérisation bipolaire ou unipolaire sera évitée autant que possible. Si nécessaire pour le rapprochement ou pour des raisons hémostatiques, les bords ovariens peuvent être cousus ou l'hémostatique résorbable Surgicel® peut être utilisé.
Au cours de l'étude, il y aura un certain nombre d'analyses de sang et d'échographies pour évaluer la croissance folliculaire. Cela sera organisé à des moments précis à partir du jour 6 de la stimulation et sera effectué tous les deux jours, jusqu'au jour du déclenchement. Si nécessaire et sur décision du clinicien, une analyse sanguine et/ou une échographie complémentaire peuvent être programmées. Lors des échographies de suivi, la croissance folliculaire sera notée pour chaque ovaire séparément afin d'évaluer la différence de réaction et/ou de croissance après la biopsie ovarienne.
La stimulation ovarienne contrôlée débutera le jour de la laparoscopie. Elle peut débuter soit dans les circonstances basales, soit au début de la phase folliculaire ou lutéale. Un protocole d'antagoniste fixe de la GnRH sera utilisé. La stimulation ovarienne sera débutée avec la corifollitropine alfa 0,15 mg (Elonva®). Le sixième jour, l'antagoniste, Ganirelix (Orgalutran®), sera ajouté pour prévenir une poussée prématurée de LH. Si nécessaire, la stimulation ovarienne peut être poursuivie après sept jours en utilisant la follitropine bêta (Puregon®). Le dosage de Puregon® dépend du taux d'AMH à la première visite. Les patients avec AMH > 2 µg/L, seront initiés avec 200-225 IE Puregon® par jour. Si le niveau initial d'AMH est <2 µg/L, les patients recevront 225-300 IE Puregon® par jour. Elonva ® et Puregon ® seront administrés le soir, tandis qu'Orgalutran ® sera injecté le matin. L'agoniste déclencheur Triptorelin 0,2 mg (Gonapeptyl®) sera administré dès qu'au moins trois follicules atteignent un diamètre moyen de 18 mm ou plus large, avec des follicules intermédiaires de 14 mm ou plus large. En cas de taux de LH <2 UI/L au début de la stimulation ovarienne, une double stratégie d'ovulation sera adaptée : Triptoréline 0,2 mg et hCG 2500 UI (ou ovitrelle 250 µg) seront administrés. Le prélèvement des ovocytes sera planifié 36 heures après le déclenchement. Celle-ci sera réalisée sous la forme d'un prélèvement d'ovocytes par voie transvaginale. La vitrification des ovocytes sera réalisée après dénudation et évaluation de la maturité.
Type d'étude
Inscription (Anticipé)
Phase
- N'est pas applicable
Contacts et emplacements
Coordonnées de l'étude
- Nom: Elsie Nulens
- Numéro de téléphone: 0032 (0)24776648
- E-mail: Elsie.Nulens@uzbrussel.be
Sauvegarde des contacts de l'étude
- Nom: Michel De Vos, MD PhD
- Numéro de téléphone: 0032 (0)24776660
- E-mail: mdv@uzbrussel.be
Lieux d'étude
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Brussels, Belgique, 1090
- Pas encore de recrutement
- Universitair Ziekenhuis Brussel
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Chercheur principal:
- Michel De Vos, MD PhD
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Contact:
- Michel De Vos, MD
- Numéro de téléphone: 0032 (0)24776660
- E-mail: mdv@uzbrussel.be
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Ghent, Belgique, 9000
- Recrutement
- UZ Gent
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Contact:
- Dominic Stoop, MD PhD
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Chercheur principal:
- Dominic Stoop, MD PhD
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Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
Accepte les volontaires sains
La description
Critère d'intégration:
- Âge ≥ 18 et ≤ 35 ans
- IMC ≥ 18 et ≤ 35 kg/m²
- Diagnostic du cancer du sein
- Présence de 2 ovaires
- Formulaire de consentement éclairé signé
- Médicalement apte à l'anesthésie générale (score ASA 1-3)
- Autorisation de l'équipe d'oncologie (avec accord pour reporter la chimio/radiothérapie d'au moins 2 semaines)
- Stimulation ovarienne contrôlée à démarrage aléatoire
- AFC minimum (c'est-à-dire follicules antraux mesurant entre 2 et 9 mm): 8 follicules antraux
Critère d'exclusion:
- Âge <18 ou >35 ans
- IMC <18 ou >35 kg/m²
- Différence d'AFC entre les ovaires de plus de 7 follicules antraux
- Diagnostic du SOPK
- Antécédents de radiothérapie et/ou chimiothérapie (chimiothérapie néo-adjuvante incluse)
- Endométriose rAFS 3-4
- Allergie ou réaction à l'utilisation d'Elonva®, Puregon®, Orgalutran®, Pregnyl® Gonapeptyl®, Décapeptyl® ou létrozole dans le passé
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Objectif principal: La prévention
- Répartition: Randomisé
- Modèle interventionnel: Affectation parallèle
- Masquage: Aucun (étiquette ouverte)
Armes et Interventions
Groupe de participants / Bras |
Intervention / Traitement |
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Autre: Groupe 1 : biopsie ovarienne droite
Les patientes du groupe 1 subiront une laparoscopie pour une biopsie ovarienne de l'ovaire droit.
Elles poursuivront ensuite avec une stimulation ovarienne contrôlée, en utilisant un protocole antagoniste de la GnRH.
Celle-ci sera débutée par Corifollitropine alfa 0,15 mg le soir.
Le sixième jour, l'antagoniste, Ganirelix, sera ajouté le matin.
Si nécessaire, la stimulation peut être poursuivie après sept jours en utilisant la follitropine bêta quotidiennement le soir (dosage allant de 200 à 300 IE selon les niveaux d'AMH).
L'agoniste déclencheur Triptorelin 0,2 mg sera administré pour l'induction de l'ovulation.
En cas de taux de LH <2 UI/L au début de la stimulation ovarienne, une double stratégie d'ovulation sera adaptée : la triptoréline 0,2 mg et la choriongonadotropine 2500 UI (ou la choriongonadotropine alfa 250 µg) seront administrées.
Un prélèvement transvaginal d'ovocytes sera prévu 36 heures après le déclenchement.
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Une laparoscopie sera réalisée pour réaliser une biopsie corticale ovarienne de l'un des deux ovaires.
Environ vingt % du volume ovarien initialement mesuré lors de l'échographie de référence lors de la première visite seront prélevés pour être traités en laboratoire pour la congélation du cortex.
La procédure laparoscopique pour effectuer la biopsie du cortex ovarien sera standardisée autant que possible.
La technique développée par ProFam sera suivie et adaptée si nécessaire à la discrétion du chirurgien.
Une laparoscopie de trois à quatre ports sera utilisée.
La biopsie du cortex ovarien sera prise à l'aide d'un ciseau courbe.
La cautérisation bipolaire ou unipolaire sera évitée autant que possible.
Si nécessaire pour le rapprochement ou pour des raisons hémostatiques, les bords ovariens peuvent être cousus ou l'hémostatique résorbable Surgicel ® peut être utilisé.
Après stimulation ovarienne, un prélèvement transvaginal d'ovocytes sera réalisé sous anesthésie locale ou générale (au choix de la patiente).
Le rendement en ovocytes entre l'ovaire biopsié et non biopsié sera évalué.
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Autre: Groupe 2 : biopsie ovarienne gauche
Les patientes du groupe 2 subiront une laparoscopie pour une biopsie ovarienne de l'ovaire gauche.
Elles poursuivront ensuite avec une stimulation ovarienne contrôlée, en utilisant un protocole antagoniste de la GnRH.
Celui-ci sera débuté par Corifollitropine alfa 0,15 mg le soir.
Le sixième jour, l'antagoniste, Ganirelix, sera ajouté le matin.
Si nécessaire, la stimulation peut être poursuivie après sept jours en utilisant la follitropine bêta quotidiennement le soir (dosage allant de 200 à 300 IE selon les niveaux d'AMH).
L'agoniste déclencheur Triptorelin 0,2 mg sera administré pour l'induction de l'ovulation.
En cas de taux de LH <2 UI/L au début de la stimulation ovarienne, une double stratégie d'ovulation sera adaptée : la triptoréline 0,2 mg et la choriongonadotropine 2500 UI (ou la choriongonadotropine alfa 250 µg) seront administrées.
Un prélèvement transvaginal d'ovocytes sera prévu 36 heures après le déclenchement.
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Une laparoscopie sera réalisée pour réaliser une biopsie corticale ovarienne de l'un des deux ovaires.
Environ vingt % du volume ovarien initialement mesuré lors de l'échographie de référence lors de la première visite seront prélevés pour être traités en laboratoire pour la congélation du cortex.
La procédure laparoscopique pour effectuer la biopsie du cortex ovarien sera standardisée autant que possible.
La technique développée par ProFam sera suivie et adaptée si nécessaire à la discrétion du chirurgien.
Une laparoscopie de trois à quatre ports sera utilisée.
La biopsie du cortex ovarien sera prise à l'aide d'un ciseau courbe.
La cautérisation bipolaire ou unipolaire sera évitée autant que possible.
Si nécessaire pour le rapprochement ou pour des raisons hémostatiques, les bords ovariens peuvent être cousus ou l'hémostatique résorbable Surgicel ® peut être utilisé.
Après stimulation ovarienne, un prélèvement transvaginal d'ovocytes sera réalisé sous anesthésie locale ou générale (au choix de la patiente).
Le rendement en ovocytes entre l'ovaire biopsié et non biopsié sera évalué.
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Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Rendement d'ovocytes matures à partir d'ovaires biopsiés par rapport à des ovaires non biopsiés
Délai: Immédiatement après la procédure de prélèvement transvaginal d'ovocytes
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Évaluation du rendement en ovocytes en métaphase II entre ovaire biopsié et non biopsié
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Immédiatement après la procédure de prélèvement transvaginal d'ovocytes
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Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Taux de production folliculaire (FORT)
Délai: De la stimulation ovarienne jusqu'au jour du prélèvement des ovocytes (2-3 semaines, selon la réponse de la patiente)
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Évaluation de la proportion de follicules qui répondaient à la FSH et est calculée en divisant le nombre de follicules préovulatoires (16-20 mm) × 100 par le nombre de follicules antraux (3-8 mm)
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De la stimulation ovarienne jusqu'au jour du prélèvement des ovocytes (2-3 semaines, selon la réponse de la patiente)
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Rendement COC
Délai: Au cours de la procédure de prélèvement transvaginal d'ovocytes
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Évaluation du rendement du complexe cumulus oophorus entre ovaire biopsié et non biopsié
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Au cours de la procédure de prélèvement transvaginal d'ovocytes
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Taux de maturité
Délai: Immédiatement après la procédure de prélèvement transvaginal d'ovocytes
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Évaluation de la proportion d'ovocytes en métaphase II dans le rendement en COC entre les biopsies et l'ovaire non biopsié
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Immédiatement après la procédure de prélèvement transvaginal d'ovocytes
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Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Collaborateurs
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Michel De Vos, MD PhD, Universitair Ziekenhuis Brussel
Publications et liens utiles
Publications générales
- De Vos M, Smitz J, Woodruff TK. Fertility preservation in women with cancer. Lancet. 2014 Oct 4;384(9950):1302-10. doi: 10.1016/S0140-6736(14)60834-5. Erratum In: Lancet. 2015 Mar 7;385(9971):856.
- Garcia-Velasco JA, Domingo J, Cobo A, Martinez M, Carmona L, Pellicer A. Five years' experience using oocyte vitrification to preserve fertility for medical and nonmedical indications. Fertil Steril. 2013 Jun;99(7):1994-9. doi: 10.1016/j.fertnstert.2013.02.004. Epub 2013 Mar 1.
- Decanter C, Cloquet M, Dassonneville A, D'Orazio E, Mailliez A, Pigny P. Different patterns of ovarian recovery after cancer treatment suggest various individual ovarian susceptibilities to chemotherapy. Reprod Biomed Online. 2018 Jun;36(6):711-718. doi: 10.1016/j.rbmo.2018.02.004. Epub 2018 Mar 2.
- Cobo A, Garcia-Velasco J, Domingo J, Pellicer A, Remohi J. Elective and Onco-fertility preservation: factors related to IVF outcomes. Hum Reprod. 2018 Dec 1;33(12):2222-2231. doi: 10.1093/humrep/dey321.
- Practice Committee of the American Society for Reproductive Medicine. Electronic address: asrm@asrm.org. Fertility preservation in patients undergoing gonadotoxic therapy or gonadectomy: a committee opinion. Fertil Steril. 2019 Dec;112(6):1022-1033. doi: 10.1016/j.fertnstert.2019.09.013.
- Donnez J, Dolmans MM. Fertility Preservation in Women. N Engl J Med. 2017 Oct 26;377(17):1657-1665. doi: 10.1056/NEJMra1614676. No abstract available.
- Diaz-Garcia C, Domingo J, Garcia-Velasco JA, Herraiz S, Mirabet V, Iniesta I, Cobo A, Remohi J, Pellicer A. Oocyte vitrification versus ovarian cortex transplantation in fertility preservation for adult women undergoing gonadotoxic treatments: a prospective cohort study. Fertil Steril. 2018 Mar;109(3):478-485.e2. doi: 10.1016/j.fertnstert.2017.11.018. Epub 2018 Feb 7.
- Deb S, Kannamannadiar J, Campbell BK, Clewes JS, Raine-Fenning NJ. The interovarian variation in three-dimensional ultrasound markers of ovarian reserve in women undergoing baseline investigation for subfertility. Fertil Steril. 2011 Feb;95(2):667-72. doi: 10.1016/j.fertnstert.2010.09.031. Epub 2010 Oct 25.
- Ueland FR, Depriest PD, Desimone CP, Pavlik EJ, Lele SM, Kryscio RJ, van Nagell JR Jr. The accuracy of examination under anesthesia and transvaginal sonography in evaluating ovarian size. Gynecol Oncol. 2005 Nov;99(2):400-3. doi: 10.1016/j.ygyno.2005.06.030. Epub 2005 Aug 9.
- Amorim CA, Leonel ECR, Afifi Y, Coomarasamy A, Fishel S. Cryostorage and retransplantation of ovarian tissue as an infertility treatment. Best Pract Res Clin Endocrinol Metab. 2019 Feb;33(1):89-102. doi: 10.1016/j.beem.2018.09.002. Epub 2018 Sep 13.
- Rodgers RJ, Reid GD, Koch J, Deans R, Ledger WL, Friedlander M, Gilchrist RB, Walters KA, Abbott JA. The safety and efficacy of controlled ovarian hyperstimulation for fertility preservation in women with early breast cancer: a systematic review. Hum Reprod. 2017 May 1;32(5):1033-1045. doi: 10.1093/humrep/dex027.
- Dolmans MM, Marotta ML, Pirard C, Donnez J, Donnez O. Ovarian tissue cryopreservation followed by controlled ovarian stimulation and pick-up of mature oocytes does not impair the number or quality of retrieved oocytes. J Ovarian Res. 2014 Aug 26;7:80. doi: 10.1186/s13048-014-0080-8.
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Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Réel)
Achèvement primaire (Anticipé)
Achèvement de l'étude (Anticipé)
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Première publication (Réel)
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Dernière mise à jour publiée (Réel)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
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Mots clés
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Autres numéros d'identification d'étude
- 2019COIMBRA001
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- SÈVE
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Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine
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