- ICH GCP
- Registro de ensayos clínicos de EE. UU.
- Ensayo clínico NCT04586686
Combinación de intervenciones de preservación de la fertilidad para mitigar la pérdida de fertilidad después del cáncer de mama (Coimbra)
Combinación de intervenciones de preservación de la fertilidad para mitigar la pérdida de fertilidad después
Descripción general del estudio
Estado
Condiciones
Intervención / Tratamiento
Descripción detallada
Todas las pacientes se someterán a una biopsia de la corteza ovárica por laparoscopia, después de que se haya establecido la elegibilidad de la paciente y se haya obtenido el consentimiento de la misma. El lado de la biopsia de ovario se aleatorizará el día de la laparoscopia, ya sea del lado derecho (grupo 1) o del lado izquierdo (grupo 2). El tejido ovárico será criopreservado. El patólogo también evaluará una pequeña parte para detectar contaminación maligna y densidad de folículos. Todas las pacientes luego continuarán con una estimulación ovárica controlada.
En ambos grupos se realizará una primera analítica de sangre con valoración hormonal (E2, P, LH, FSH, hCG y AMH) en la primera visita, independientemente de su ciclo. En ese momento también se realizará una ecografía transvaginal (frecuencia ≥ 7 MHz) para evaluar el recuento de folículos antrales y el volumen ovárico. El recuento de folículos antrales se evaluará mediante la evaluación 2D-US en tiempo real, el uso estándar en la práctica clínica. El volumen ovárico se medirá utilizando la fórmula del elipsoide prolato (volumen = largo x ancho x alto x 0,523). Si se observa un folículo dominante, se administrará a la paciente coriongonadotropina (Pregnyl ® 5000 UI), coriongonadotropina alfa (Ovitrelle ® 250 µg) o triptorelina (Gonapeptyl ® o Decapeptyl ® 0,2 mg) para desencadenar la ovulación. Posteriormente, la estimulación ovárica controlada puede iniciarse en la fase lútea.
El tamaño de la biopsia de la corteza ovárica se calculará como el 20 % del volumen ovárico medido en la ecografía inicial. Inmediatamente después de la biopsia de ovario, se anotarán las medidas objetivas de la biopsia en peso (gramos) y volumen (largo x ancho x alto mm³) porque el fragmento de biopsia puede considerarse una caja rectangular. Posteriormente se utilizará un factor de corrección en el análisis estadístico si el volumen de la biopsia ovárica no es igual al 20%.
Se estandarizará el procedimiento laparoscópico mediante el cual se realizará la biopsia de la corteza ovárica: Se utilizará la técnica desarrollada por ProFam y se adaptará si es necesario a criterio del cirujano. Se utilizará una laparoscopia de tres o cuatro puertos. La biopsia de la corteza ovárica se realizará con una tijera curva. Se evitará en lo posible la cauterización bipolar o unipolar. Si es necesario para la aproximación o por razones hemostáticas, se pueden suturar los bordes ováricos o se puede usar el hemostato absorbible Surgicel®.
Durante el curso del estudio, habrá una serie de análisis de sangre y ecografías para evaluar el crecimiento folicular. Esto se organizará en puntos de tiempo específicos a partir del día 6 de la estimulación y se realizará cada dos días, hasta el día de la activación. Si es necesario y según la decisión del médico, se puede programar un análisis de sangre y/o una ecografía complementarios. En las ecografías de seguimiento se observará el crecimiento folicular de cada ovario por separado para evaluar la diferencia en la reacción y/o el crecimiento después de la biopsia de ovario.
La estimulación ovárica controlada comenzará el día de la laparoscopia. Puede comenzar en circunstancias basales o en la fase folicular o lútea temprana. Se utilizará un protocolo de antagonista de GnRH fijo. Se iniciará estimulación ovárica con Corifolitropina alfa 0,15 mg (Elonva®). En el sexto día, se agregará el antagonista, Ganirelix (Orgalutran®), para evitar un aumento prematuro de LH. Si es necesario, la estimulación ovárica se puede continuar después de siete días usando folitropina beta (Puregon®). La dosis de Puregon® depende del nivel de AMH en la primera visita. Los pacientes con AMH > 2 µg/L, comenzarán con 200-225 UI de Puregon® al día. Si el nivel inicial de AMH es <2 µg/L, los pacientes recibirán 225-300 UI de Puregon® al día. Elonva ® y Puregon ® se administrarán por la noche, mientras que Orgalutran ® se inyectará por la mañana. El disparador agonista Triptorelina 0.2 mg (Gonapeptyl®) se administrará tan pronto como al menos tres folículos alcancen un diámetro medio de 18 mm o más, con folículos intermedios de 14 mm o más. En caso de niveles de LH < 2 UI/L al inicio de la estimulación ovárica, se adaptará una estrategia de ovulación dual: se administrarán 0,2 mg de triptorelina y 2500 UI de hCG (u ovitrelle 250 µg). La recuperación de ovocitos se planificará 36 horas después de la activación. Esto se realizará como una extracción de ovocitos transvaginal. La vitrificación de ovocitos se realizará tras la denudación y valoración de la madurez.
Tipo de estudio
Inscripción (Anticipado)
Fase
- No aplica
Contactos y Ubicaciones
Estudio Contacto
- Nombre: Elsie Nulens
- Número de teléfono: 0032 (0)24776648
- Correo electrónico: Elsie.Nulens@uzbrussel.be
Copia de seguridad de contactos de estudio
- Nombre: Michel De Vos, MD PhD
- Número de teléfono: 0032 (0)24776660
- Correo electrónico: mdv@uzbrussel.be
Ubicaciones de estudio
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-
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Brussels, Bélgica, 1090
- Aún no reclutando
- Universitair Ziekenhuis Brussel
-
Investigador principal:
- Michel De Vos, MD PhD
-
Contacto:
- Michel De Vos, MD
- Número de teléfono: 0032 (0)24776660
- Correo electrónico: mdv@uzbrussel.be
-
Ghent, Bélgica, 9000
- Reclutamiento
- UZ Gent
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Contacto:
- Dominic Stoop, MD PhD
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Investigador principal:
- Dominic Stoop, MD PhD
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Criterios de participación
Criterio de elegibilidad
Edades elegibles para estudiar
Acepta Voluntarios Saludables
Descripción
Criterios de inclusión:
- Edad ≥ 18 y ≤ 35 años
- IMC ≥ 18 y ≤ 35 kg/m²
- Diagnóstico de cáncer de mama
- Presencia de 2 ovarios
- Formulario de consentimiento informado firmado
- Médicamente apto para anestesia general (puntuación ASA 1-3)
- Permiso del equipo de oncología (con el acuerdo de posponer la quimioterapia/radioterapia durante al menos 2 semanas)
- Estimulación ovárica controlada de inicio aleatorio
- AFC mínimo (es decir, folículos antrales que miden entre 2 y 9 mm): 8 folículos antrales
Criterio de exclusión:
- Edad <18 o >35 años
- IMC <18 o >35 kg/m²
- Diferencia en AFC entre los ovarios de más de 7 folículos antrales
- Diagnóstico de SOP
- Radioterapia y/o quimioterapia previa (quimioterapia neoadyuvante incluida)
- Endometriosis rAFS 3-4
- Alergia o reacción al uso de Elonva®, Puregon®, Orgalutran®, Pregnyl® Gonapeptyl®, Decapeptyl® o letrozol en el pasado
Plan de estudios
¿Cómo está diseñado el estudio?
Detalles de diseño
- Propósito principal: Prevención
- Asignación: Aleatorizado
- Modelo Intervencionista: Asignación paralela
- Enmascaramiento: Ninguno (etiqueta abierta)
Armas e Intervenciones
Grupo de participantes/brazo |
Intervención / Tratamiento |
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Otro: Grupo 1: biopsia de ovario derecho
Las pacientes del grupo 1 se someterán a una laparoscopia para una biopsia de ovario del ovario derecho.
Luego continuarán con una estimulación ovárica controlada, utilizando un protocolo de antagonistas de GnRH.
Se comenzará con corifolitropina alfa 0,15 mg por la noche.
En el sexto día, el antagonista, Ganirelix, se agregará por la mañana.
Si es necesario, la estimulación se puede continuar después de siete días usando folitropina beta diariamente por la noche (dosis que oscilan entre 200 y 300 IE según los niveles de AMH).
Agonista desencadenante Triptorelina 0,2 mg se administrará para la inducción de la ovulación.
En caso de niveles de LH < 2 UI/L al inicio de la estimulación ovárica, se adaptará una estrategia de ovulación dual: se administrarán 0,2 mg de triptorelina y 2500 UI de coriongonadotropina (o coriongonadotropina alfa 250 µg).
Se planificará una extracción transvaginal de ovocitos 36 horas después de la activación.
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Se realizará una laparoscopia para lograr una biopsia cortical ovárica de uno de ambos ovarios.
Se extraerá aproximadamente el 20 % del volumen ovárico medido inicialmente en la ecografía de referencia en la primera visita para procesarlo en el laboratorio y congelar la corteza.
El procedimiento laparoscópico para tomar la biopsia de la corteza ovárica se estandarizará tanto como sea posible.
Se seguirá la técnica desarrollada por ProFam y se adaptará si es necesario a discreción del cirujano.
Se utilizará una laparoscopia de tres o cuatro puertos.
La biopsia de la corteza ovárica se tomará con una tijera curva.
Se evitará en lo posible la cauterización bipolar o unipolar.
Si es necesario para la aproximación o por razones hemostáticas, se pueden suturar los bordes ováricos o se puede utilizar el Hemostato Absorbible Surgicel®.
Después de la estimulación ovárica, se realizará una extracción transvaginal de ovocitos bajo anestesia local o general (a elección de la paciente).
Se evaluará el rendimiento de ovocitos entre el ovario biopsiado y el no biopsiado.
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Otro: Grupo 2: biopsia de ovario izquierdo
Las pacientes del grupo 2 se someterán a una laparoscopia para una biopsia de ovario del ovario izquierdo.
Luego continuarán con una estimulación ovárica controlada, utilizando un protocolo de antagonistas de GnRH.
Se comenzará con corifolitropina alfa 0,15 mg por la noche.
En el sexto día, el antagonista, Ganirelix, se agregará por la mañana.
Si es necesario, la estimulación se puede continuar después de siete días usando folitropina beta diariamente por la noche (dosis que oscilan entre 200 y 300 IE según los niveles de AMH).
Agonista desencadenante Triptorelina 0,2 mg se administrará para la inducción de la ovulación.
En caso de niveles de LH < 2 UI/L al inicio de la estimulación ovárica, se adaptará una estrategia de ovulación dual: se administrarán 0,2 mg de triptorelina y 2500 UI de coriongonadotropina (o coriongonadotropina alfa 250 µg).
Se planificará una extracción transvaginal de ovocitos 36 horas después de la activación.
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Se realizará una laparoscopia para lograr una biopsia cortical ovárica de uno de ambos ovarios.
Se extraerá aproximadamente el 20 % del volumen ovárico medido inicialmente en la ecografía de referencia en la primera visita para procesarlo en el laboratorio y congelar la corteza.
El procedimiento laparoscópico para tomar la biopsia de la corteza ovárica se estandarizará tanto como sea posible.
Se seguirá la técnica desarrollada por ProFam y se adaptará si es necesario a discreción del cirujano.
Se utilizará una laparoscopia de tres o cuatro puertos.
La biopsia de la corteza ovárica se tomará con una tijera curva.
Se evitará en lo posible la cauterización bipolar o unipolar.
Si es necesario para la aproximación o por razones hemostáticas, se pueden suturar los bordes ováricos o se puede utilizar el Hemostato Absorbible Surgicel®.
Después de la estimulación ovárica, se realizará una extracción transvaginal de ovocitos bajo anestesia local o general (a elección de la paciente).
Se evaluará el rendimiento de ovocitos entre el ovario biopsiado y el no biopsiado.
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¿Qué mide el estudio?
Medidas de resultado primarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
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Rendimiento de ovocitos maduros de ovario biopsiado versus no biopsiado
Periodo de tiempo: Inmediatamente después del procedimiento de extracción transvaginal de ovocitos
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Evaluación del rendimiento de ovocitos en metafase II entre ovario biopsiado y no biopsiado
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Inmediatamente después del procedimiento de extracción transvaginal de ovocitos
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Medidas de resultado secundarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
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Tasa de producción de folículos (FORT)
Periodo de tiempo: Desde la estimulación ovárica hasta el día de la extracción de ovocitos (2-3 semanas, según respuesta de la paciente)
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Evaluación de la proporción de folículos que respondieron a la FSH y se calcula dividiendo el número de folículos preovulatorios (16-20 mm) × 100 por el recuento de folículos antrales (3-8 mm)
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Desde la estimulación ovárica hasta el día de la extracción de ovocitos (2-3 semanas, según respuesta de la paciente)
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Rendimiento COC
Periodo de tiempo: Durante el procedimiento de extracción transvaginal de ovocitos
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Evaluación del rendimiento del complejo cumulus oophorus entre ovario biopsiado y no biopsiado
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Durante el procedimiento de extracción transvaginal de ovocitos
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Tasa de maduración
Periodo de tiempo: Inmediatamente después del procedimiento de extracción transvaginal de ovocitos
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Evaluación de la proporción de ovocitos en metafase II dentro del rendimiento de COC entre biopsias y ovario no biopsiado
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Inmediatamente después del procedimiento de extracción transvaginal de ovocitos
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Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Colaboradores
Investigadores
- Investigador principal: Michel De Vos, MD PhD, Universitair Ziekenhuis Brussel
Publicaciones y enlaces útiles
Publicaciones Generales
- De Vos M, Smitz J, Woodruff TK. Fertility preservation in women with cancer. Lancet. 2014 Oct 4;384(9950):1302-10. doi: 10.1016/S0140-6736(14)60834-5. Erratum In: Lancet. 2015 Mar 7;385(9971):856.
- Garcia-Velasco JA, Domingo J, Cobo A, Martinez M, Carmona L, Pellicer A. Five years' experience using oocyte vitrification to preserve fertility for medical and nonmedical indications. Fertil Steril. 2013 Jun;99(7):1994-9. doi: 10.1016/j.fertnstert.2013.02.004. Epub 2013 Mar 1.
- Decanter C, Cloquet M, Dassonneville A, D'Orazio E, Mailliez A, Pigny P. Different patterns of ovarian recovery after cancer treatment suggest various individual ovarian susceptibilities to chemotherapy. Reprod Biomed Online. 2018 Jun;36(6):711-718. doi: 10.1016/j.rbmo.2018.02.004. Epub 2018 Mar 2.
- Cobo A, Garcia-Velasco J, Domingo J, Pellicer A, Remohi J. Elective and Onco-fertility preservation: factors related to IVF outcomes. Hum Reprod. 2018 Dec 1;33(12):2222-2231. doi: 10.1093/humrep/dey321.
- Practice Committee of the American Society for Reproductive Medicine. Electronic address: asrm@asrm.org. Fertility preservation in patients undergoing gonadotoxic therapy or gonadectomy: a committee opinion. Fertil Steril. 2019 Dec;112(6):1022-1033. doi: 10.1016/j.fertnstert.2019.09.013.
- Donnez J, Dolmans MM. Fertility Preservation in Women. N Engl J Med. 2017 Oct 26;377(17):1657-1665. doi: 10.1056/NEJMra1614676. No abstract available.
- Diaz-Garcia C, Domingo J, Garcia-Velasco JA, Herraiz S, Mirabet V, Iniesta I, Cobo A, Remohi J, Pellicer A. Oocyte vitrification versus ovarian cortex transplantation in fertility preservation for adult women undergoing gonadotoxic treatments: a prospective cohort study. Fertil Steril. 2018 Mar;109(3):478-485.e2. doi: 10.1016/j.fertnstert.2017.11.018. Epub 2018 Feb 7.
- Deb S, Kannamannadiar J, Campbell BK, Clewes JS, Raine-Fenning NJ. The interovarian variation in three-dimensional ultrasound markers of ovarian reserve in women undergoing baseline investigation for subfertility. Fertil Steril. 2011 Feb;95(2):667-72. doi: 10.1016/j.fertnstert.2010.09.031. Epub 2010 Oct 25.
- Ueland FR, Depriest PD, Desimone CP, Pavlik EJ, Lele SM, Kryscio RJ, van Nagell JR Jr. The accuracy of examination under anesthesia and transvaginal sonography in evaluating ovarian size. Gynecol Oncol. 2005 Nov;99(2):400-3. doi: 10.1016/j.ygyno.2005.06.030. Epub 2005 Aug 9.
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- Rodgers RJ, Reid GD, Koch J, Deans R, Ledger WL, Friedlander M, Gilchrist RB, Walters KA, Abbott JA. The safety and efficacy of controlled ovarian hyperstimulation for fertility preservation in women with early breast cancer: a systematic review. Hum Reprod. 2017 May 1;32(5):1033-1045. doi: 10.1093/humrep/dex027.
- Dolmans MM, Marotta ML, Pirard C, Donnez J, Donnez O. Ovarian tissue cryopreservation followed by controlled ovarian stimulation and pick-up of mature oocytes does not impair the number or quality of retrieved oocytes. J Ovarian Res. 2014 Aug 26;7:80. doi: 10.1186/s13048-014-0080-8.
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- 2019COIMBRA001
Plan de datos de participantes individuales (IPD)
¿Planea compartir datos de participantes individuales (IPD)?
Descripción del plan IPD
Marco de tiempo para compartir IPD
Criterios de acceso compartido de IPD
Tipo de información de apoyo para compartir IPD
- PROTOCOLO DE ESTUDIO
- SAVIA
- CIF
- RSC
Información sobre medicamentos y dispositivos, documentos del estudio
Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.
Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.
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