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Hétérogénéité des cellules dendritiques dans le cancer du côlon et du poumon non à petites cellules (TUM-DC)

29 décembre 2023 mis à jour par: University of Milano Bicocca

Hétérogénéité des cellules dendritiques et d'autres cellules d'origine myéloïde et lymphoïde dans le cancer du côlon et du poumon non à petites cellules

Étude prospective à l'aide d'échantillons biologiques. Les centres concernés sont les unités de chirurgie thoracique et de chirurgie 1 de l'hôpital San Gerardo de Monza.

Aperçu de l'étude

Description détaillée

CONTEXTE L'activation des réponses immunitaires adaptatives dépend des cellules dendritiques (CD) et des macrophages, cellules myéloïdes du système immunitaire inné spécialisées dans la présentation antigénique et dans l'activation des lymphocytes T. Cette particularité des cellules myéloïdes est fondamentale non seulement lors de maladies infectieuses mais également dans le cadre du cancer, car les phagocytes captent les antigènes associés aux cellules cancéreuses et les présentent aux cellules T au sein du microenvironnement tumoral ou dans les ganglions lymphatiques drainant la tumeur pour obtenir des réponses antitumorales. .

En particulier, une corrélation positive a été observée entre le contenu tumoral global des DC et la survie des patients cancéreux avec différentes tumeurs, ainsi qu'une meilleure réactivité aux thérapies basées sur l'utilisation d'inhibiteurs de point de contrôle immunitaire (ICB).

La présence de différents sous-types de cellules dendritiques a récemment été mise en évidence, ainsi qu'une adaptation spécifique de chaque sous-type à l'environnement tumoral.

Il s'agit d'un point critique puisque l'hétérogénéité fonctionnelle des DC, des macrophages et des lymphocytes T dans le microenvironnement tumoral est probablement l'un des facteurs responsables du succès ou de l'échec des immunothérapies anticancéreuses. Les thérapies à base d'ICB ont révolutionné le traitement des patients atteints de cancers, tels que le mélanome et le cancer du poumon, mais ne sont actuellement bénéfiques qu'à une minorité de patients. Améliorer la compréhension du microenvironnement immunitaire tumoral est la clé pour prédire les réponses cliniques aux thérapies existantes et éventuellement le développement de nouvelles immunothérapies.

JUSTIFICATION Les cellules myéloïdes, telles que les cellules dendritiques et les macrophages, infiltrent de nombreux types de tumeurs et peuvent exercer une fonction antitumorale en activant les cellules T et NK, ou elles peuvent exercer une activité pro-tumorale en produisant des cytokines anti-inflammatoires et des molécules inhibitrices. La présence au sein de la tumeur de plusieurs sous-types de DC conventionnels a été associée à un meilleur pronostic alors qu'une fonction pro-tumorale a été proposée pour les DC non conventionnelles telles que CD14 + CD1c + DC. La présence de macrophages a été associée à une action protumorale.

Les chercheurs émettent l'hypothèse que l'hétérogénéité fonctionnelle des cellules myéloïdes et des lymphocytes T au sein du microenvironnement tumoral est l'un des facteurs responsables du succès ou de l'échec des réponses immunitaires antitumorales. La définition haute résolution des sous-types de cellules myéloïdes et des lymphocytes T associés à la tumeur, leur phénotype, leur distribution au sein de la tumeur, ainsi que leurs caractéristiques fonctionnelles aideront à comprendre la complexité du microenvironnement tumoral.

CONCEPTION DE L'ÉTUDE Lors de la collecte, chaque échantillon sera identifié et étiqueté avec un identifiant unique. Le pathologiste échantillonnera le matériel et sélectionnera le tissu qui peut être utilisé pour l'expérience après avoir pris tout ce qui est nécessaire à des fins de diagnostic. L'échantillon de recherche sera placé dans des tubes à essai et conservé sur de la glace. Il sera ensuite envoyé au laboratoire de l'Université de Milano-Bicocca. La tumeur sera découpée en morceaux et des suspensions monocellulaires seront préparées avec le kit de dissociation de tumeur humaine et le dissociateur gentleMACS™ (Miltenyi Biotech) selon le protocole standard. Les suspensions cellulaires seront ensuite isolées par centrifugation en gradient de densité.

Les enquêteurs analyseront environ 60 patients pour des études d'immunofluorescence et 4 patients pour des analyses transcriptomiques unicellulaires (single cell RNA-seq). L'analyse d'une seule cellule effectuée par 4 patients s'est déjà révélée suffisante pour identifier différents sous-types de cellules immunitaires. Les cellules immunitaires seront traitées pour obtenir une suspension cellulaire enrichie en cellules myéloïdes. Cela permettra une analyse précise des sous-types de DC, de macrophages et de lymphocytes T CD4 + et d'identifier même des populations très rares qui pourraient être perdues dans des échantillons non sélectionnés en raison de la dilution. La stratégie de pré-tri sera basée sur l'expression de CD45 et du CMH de classe II et sur l'absence d'expression de CD3, CD19, CD56, Ly6G pour exclure T, B, NK et les neutrophiles.

Les matières résiduelles ne seront pas stockées. On suppose que les patients seront inscrits et analysés sur une période de 5 ans.

Il y a 5 tâches différentes :

Tâche 1 : Préparation et séquençage de la bibliothèque d'ARN-seq à cellule unique ; Tâche 2 : Analyse bioinformatique de l'ARN-seq d'une seule cellule ; Tâche 3 : Analyse par cytométrie en flux des sous-types de DC présents dans le microenvironnement tumoral ; Tâche 4 : Distributions spatiales des sous-types de DC dans le microenvironnement tumoral Tâche 5 : Évaluation de l'association entre les sous-types de cellules myéloïdes présentes dans le microenvironnement tumoral et la survie ;

L'étude se terminera par l'analyse bioinformatique des données et leur validation par des analyses de cytométrie en flux

Type d'étude

Observationnel

Inscription (Estimé)

64

Contacts et emplacements

Cette section fournit les coordonnées de ceux qui mènent l'étude et des informations sur le lieu où cette étude est menée.

Coordonnées de l'étude

Sauvegarde des contacts de l'étude

Lieux d'étude

      • Monza, Italie
        • Pas encore de recrutement
        • ASST Monza-C. CHIRURGIA GENERALE E D'URGENZA I
        • Contact:
          • Luca Nespoli
      • Monza, Italie
        • Recrutement
        • ASST Monza-Ospedale San Gerardo, S.C. Chirurgia Toracica
        • Contact:
          • Francesca Granucci
        • Contact:
          • Marco Scarci

Critères de participation

Les chercheurs recherchent des personnes qui correspondent à une certaine description, appelée critères d'éligibilité. Certains exemples de ces critères sont l'état de santé général d'une personne ou des traitements antérieurs.

Critère d'éligibilité

Âges éligibles pour étudier

18 ans et plus (Adulte, Adulte plus âgé)

Accepte les volontaires sains

Non

Méthode d'échantillonnage

Échantillon non probabiliste

Population étudiée

Patients atteints d'un CBNPC (tumeur primaire, tissu sain adjacent, sang) ou d'un cancer du côlon (tumeur primaire, tissu adjacent normal, sang)

La description

Critère d'intégration:

  • hommes et femmes âgés de ≥ 18 ans ;
  • diagnostic clinique confirmé par des examens courants pour établir la présence d'un cancer du côlon ou du poumon ;
  • lésions > 1 cm ;
  • capacité juridique de donner un consentement éclairé conformément aux BPC ICH / UE et aux réglementations nationales / locales.

Critère d'exclusion:

  • grossesse;
  • grossesse présumée;
  • défauts de coagulation connus ;
  • abus d'alcool ou de drogue

Plan d'étude

Cette section fournit des détails sur le plan d'étude, y compris la façon dont l'étude est conçue et ce que l'étude mesure.

Comment l'étude est-elle conçue ?

Détails de conception

  • Modèles d'observation: Cohorte
  • Perspectives temporelles: Éventuel

Cohortes et interventions

Groupe / Cohorte
Intervention / Traitement
Patients atteints de NSCLC ou de cancer du côlon

Les sujets sont des hommes ou des femmes âgés de plus de 18 ans atteints d'un cancer du côlon ou du poumon ; Les lésions mesurent plus de 1 cm. Ils sont également en mesure de donner un consentement éclairé.

Le pathologiste échantillonnera le matériel et sélectionnera le tissu qui peut être utilisé pour l'expérience après avoir pris tout ce qui est nécessaire à des fins de diagnostic. L'échantillon de recherche sera placé dans des tubes à essai et conservé sur de la glace.

Il sera ensuite envoyé au laboratoire de l'Université de Milano-Bicocca où il analysera environ 60 patients pour des études d'immunofluorescence et 4 patients pour des analyses transcriptomiques unicellulaires.

  1. Collecte d'échantillons : purification de cellules myéloïdes + séquençage de cellules individuelles
  2. Analyse primaire : données de séquençage QC + alignement des lectures + quantification UMI
  3. Analyse bioinformatique : Contrôle de qualité (Nombre de gènes, teneur en UMI, % de gènes mitochondriaux, % de gènes de riboprotéines, Filtrage des cellules de mauvaise qualité) + Normalisation et mise à l'échelle (Normalisation, Supprimer les sources de variation indésirables, détection HVG) + Marqueurs de clustering PCA (PCA et PC sélection, Clustering, t-SNE, Expression différentielle pour l'identification des marqueurs)
  4. Validation : analyse FACS + immunohistochimie

Que mesure l'étude ?

Principaux critères de jugement

Mesure des résultats
Description de la mesure
Délai
Analyse bioinformatique de cellule unique RNA-seq
Délai: Jusqu'à la fin de l'étude (environ 5 ans).
Pour l'analyse des données d'ARN-seq unicellulaire, nous exploiterons les méthodologies les plus récentes fournies par 10x Genomics et les scripts R/Python personnalisés pour effectuer l'identification et la caractérisation des sous-ensembles de cellules.
Jusqu'à la fin de l'étude (environ 5 ans).
Préparation et séquençage d'une bibliothèque d'ARN-seq à cellule unique.
Délai: Jusqu'à la fin de l'étude (environ 5 ans).
10 000 cellules pour chaque échantillon seront chargées sur un instrument appelé Chromium 10X (génomique 10x).
Jusqu'à la fin de l'étude (environ 5 ans).

Mesures de résultats secondaires

Mesure des résultats
Description de la mesure
Délai
Distributions spatiales des sous-types de DC dans le microenvironnement tumoral
Délai: Jusqu'à la fin de l'étude (environ 5 ans).

Le test de Shapiro-Wilks sera utilisé pour vérifier si les variables continues suivent une distribution normale.

Les comparaisons entre les groupes seront effectuées à l'aide de tests t ou d'une analyse de variance (ANOVA) lorsque plus de deux groupes sont comparés.

En cas de rejet de l'hypothèse nulle pour les tests ANOVA, des comparaisons par paires seront effectuées en utilisant la méthode de Tukey pour vérifier l'erreur α en présence de plusieurs comparaisons non orthogonales. Si les variables ne sont pas normalement distribuées, les tests non paramétriques correspondants (Wilcoxon Mann Whitney et test de Kruskal-Wallis) seront appliqués.

Compte tenu du grand nombre de tests effectués, la méthode du taux de fausses découvertes positives (pFDR) sera appliquée pour prendre en compte le problème de multiplicité.

Jusqu'à la fin de l'étude (environ 5 ans).
Corrélation entre les sous-types de cellules myéloïdes présentes dans le microenvironnement tumoral et la survie
Délai: Jusqu'à la fin de l'étude (environ 5 ans).
Un modèle de Cox multivarié pour la survie globale et un pour la survie sans maladie, incluant dans chaque modèle tous les gènes utilisant conjointement la méthode « minimum absolue de retrait et d'opérateur de sélection » (LASSO) pour sélectionner les gènes réels associés à la survie et estimer le rapport de risque ( HR) et l'IC à 95 % correspondant.
Jusqu'à la fin de l'étude (environ 5 ans).

Collaborateurs et enquêteurs

C'est ici que vous trouverez les personnes et les organisations impliquées dans cette étude.

Publications et liens utiles

La personne responsable de la saisie des informations sur l'étude fournit volontairement ces publications. Il peut s'agir de tout ce qui concerne l'étude.

Dates d'enregistrement des études

Ces dates suivent la progression des dossiers d'étude et des soumissions de résultats sommaires à ClinicalTrials.gov. Les dossiers d'étude et les résultats rapportés sont examinés par la Bibliothèque nationale de médecine (NLM) pour s'assurer qu'ils répondent à des normes de contrôle de qualité spécifiques avant d'être publiés sur le site Web public.

Dates principales de l'étude

Début de l'étude (Réel)

9 février 2021

Achèvement primaire (Estimé)

9 février 2026

Achèvement de l'étude (Estimé)

9 février 2026

Dates d'inscription aux études

Première soumission

17 février 2021

Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité

4 mars 2021

Première publication (Réel)

9 mars 2021

Mises à jour des dossiers d'étude

Dernière mise à jour publiée (Estimé)

1 janvier 2024

Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité

29 décembre 2023

Dernière vérification

1 décembre 2023

Plus d'information

Termes liés à cette étude

Plan pour les données individuelles des participants (IPD)

Prévoyez-vous de partager les données individuelles des participants (DPI) ?

NON

Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude

Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine

Non

Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine

Non

Ces informations ont été extraites directement du site Web clinicaltrials.gov sans aucune modification. Si vous avez des demandes de modification, de suppression ou de mise à jour des détails de votre étude, veuillez contacter register@clinicaltrials.gov. Dès qu'un changement est mis en œuvre sur clinicaltrials.gov, il sera également mis à jour automatiquement sur notre site Web .

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