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- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT05042830
Contribution de la production d'IgE nasales à la stimulation des IgE systémiques spécifiques à l'allergène lors du contact nasal avec l'allergène
Contribution de la production locale d'IgE nasales à la stimulation de la production systémique d'IgE spécifiques à l'allergène lors du contact nasal avec un allergène - une étude pilote exploratoire
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Intervention / Traitement
Description détaillée
Le nez représente un important et premier site de contact avec les allergènes, à la fois parce qu'il est l'organe le plus fréquemment touché par les symptômes allergiques et aussi parce qu'il joue un rôle important dans la régulation de la production d'IgE et de l'inflammation allergique. La muqueuse nasale agit comme une barrière contre les allergènes intrusifs. Cette fonction barrière peut être perturbée par divers facteurs tels que la fumée de cigarette, une infection à rhinovirus ou à l'interféron-γ. L'exposition à ces facteurs peut entraîner une augmentation de la pénétration des allergènes. Le contact avec des allergènes nasaux chez des sujets sensibilisés entraîne une inflammation nasale allergique et des symptômes. Les chercheurs de cette étude ont précédemment démontré que les niveaux d'IgE spécifiques à l'allergène chez les individus sensibilisés sont fortement stimulés lors du contact nasal avec l'allergène pendant la saison allergène pertinente ou dans des modèles de provocation intranasale bien contrôlés. Cette augmentation des taux d'IgE induite par les allergènes entraîne par conséquent une sensibilité accrue des patients allergiques en termes d'activation des mastocytes et des basophiles médiés par les IgE ainsi que de la présentation de l'antigène facilitée par les IgE via le récepteur d'affinité élevée (FcεRI) ou faible (CD23) pour les IgE. par les cellules présentatrices d'antigène, aux cellules T. Dans ce contexte, les chercheurs ont récemment montré que non seulement les niveaux d'IgE spécifiques à l'allergène eux-mêmes, mais également la capacité de réticulation des complexes formés entre l'IgE et l'allergène dictent l'étendue de l'activation des lymphocytes T médiée par CD23.
L'observation selon laquelle le contact nasal avec un allergène déclenche une augmentation des niveaux d'IgE systémiques spécifiques à l'allergène indique la présence de cellules productrices d'IgE+ localement dans la muqueuse nasale qui peuvent être stimulées lors d'un contact avec un allergène. Cette hypothèse est étayée par les observations suivantes : (A) il existe une preuve que des lymphocytes B et des plasmocytes producteurs d'IgE sont présents dans la muqueuse nasale, mais rien n'a encore été prouvé. (B) Lors d'une provocation ex vivo de biopsies de la muqueuse nasale de patients allergiques, une synthèse locale non seulement de la lignée germinale ε, mais également des transcrits du cercle ε en tant que produits de la synthèse d'IgE matures a été observée. Cependant, la mesure dans laquelle cette production nasale locale d'IgE contribue à la stimulation systémique observée d'IgE et la cinétique sous-jacente de la production d'IgE sont jusqu'à présent inconnues et constituent un objectif important de cette proposition.
De plus, bien qu'une production locale d'IgE ait été observée, la présence des cellules productrices d'IgE elles-mêmes dans la muqueuse nasale n'a jusqu'à présent pas été confirmée. Une raison importante à cela est la difficulté d'identifier sans ambiguïté ces cellules par cytométrie en flux ou microscopie à fluorescence. Dans le passé, plusieurs protocoles de cytométrie en flux étape par étape ont été développés dans le but d'exclure les cellules non pertinentes avant le déclenchement pour les cellules IgE+ B. Cependant, il faut garder à l'esprit que tous les anticorps anti-IgE actuellement utilisés reconnaissent non seulement les IgE de surface présentes sous la forme du récepteur des lymphocytes B mais également liées au CD23. En conséquence, la plupart des études actuelles surestiment la présence de récepteurs de cellules IgE B (BCR) porteurs de cellules B. Cela n'a été démontré que récemment dans une étude de Jimenez-Saiz et al. où les auteurs ont découvert que seulement environ 0,0015% des cellules B portent un BCR IgE. Ici, les auteurs ont utilisé une approche de réaction en chaîne par polymérase (PCR) nichée dans une seule cellule pour valider la nature du BCR après le tri cellulaire basé sur la cytométrie en flux pour les cellules IgE + B en utilisant des protocoles précédemment rapportés. La surestimation est très probablement due à la détection de cellules IgE+ B porteuses d'IgE liées au CD23. Une option pour améliorer la détection par cytométrie en flux pourrait être d'exclure les cellules CD23 positives, mais cela pourrait également conduire à l'exclusion des cellules productrices d'IgE exprimant CD23. Ainsi, la seule alternative pour surmonter cet obstacle est d'utiliser un anticorps anti-IgE qui peut faire la distinction entre les IgE liées au récepteur et les IgE ancrées à la membrane. A cet égard, un anticorps anti-IgE remplissant ces exigences s'est récemment révélé capable d'identifier avec succès les cellules productrices d'IgE. Ainsi, les chercheurs emploieront cette nouvelle stratégie pour identifier les cellules productrices d'IgE aussi bien dans la muqueuse nasale que dans le sang des sujets allergiques.
Dans ce projet, les chercheurs visent à élucider les sites et les caractéristiques de la production d'IgE spécifiques à l'allergène dans une étude à deux bras couvrant un sujet allergique au pollen de bouleau subissant une provocation nasale contrôlée au pollen de bouleau en dehors de la saison (octobre). Dans ce but, les cellules productrices d'IgE dans le sang seront déterminées par cytométrie en flux et les cellules productrices d'IgE dans la muqueuse nasale seront révélées dans des biopsies nasales en utilisant la microscopie confocale. Comprendre les caractéristiques et les emplacements des cellules productrices d'IgE est essentiel pour le développement de futures nouvelles approches thérapeutiques.
Type d'étude
Inscription (Estimé)
Phase
- N'est pas applicable
Contacts et emplacements
Coordonnées de l'étude
- Nom: Sven Schneider, MD
- Numéro de téléphone: +4314040034380
- E-mail: sven.schneider@meduniwien.ac.at
Sauvegarde des contacts de l'étude
- Nom: Julia Eckl-Dorna, MD, PhD
- Numéro de téléphone: +4314040034380
- E-mail: julia.eckl-dorna@meduniwien.ac.at
Lieux d'étude
-
-
-
Vienna, L'Autriche, 1090
- Recrutement
- Medical University of Vienna
-
Chercheur principal:
- Sven Schneider, MD
-
Contact:
- Julia Eckl-Dorna, MD, PhD
- Numéro de téléphone: 34380 +43140400
- E-mail: julia.eckl-dorna@meduniwien.ac.at
-
Contact:
- Sven Schneider, MD
- Numéro de téléphone: 34380 +43140400
- E-mail: sven.schneider@meduniwien.ac.at
-
Sous-enquêteur:
- Julia Eckl-Dorna, MD, PhD
-
Sous-enquêteur:
- Mohammed Zghaebi, MSc
-
Sous-enquêteur:
- Nicholas Campion, MD
-
Sous-enquêteur:
- Rudolf Valenta, MD
-
Sous-enquêteur:
- Sabine Flicker, PhD
-
Sous-enquêteur:
- Verena Niederberger, MD
-
Sous-enquêteur:
- Tina Bartosik, MD
-
Sous-enquêteur:
- Katharina Gangl, MD
-
-
Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
Accepte les volontaires sains
La description
Critère d'intégration:
Sujets sensibilisés au pollen de bouleau
- rhinite allergique modérée à sévère à l'allergène du pollen de bouleau depuis au moins deux saisons selon leurs antécédents médicaux
- Sensibilisation à Bet v 1 (IgE spécifiques à Bet v 1 : 3,5 kU/L ou plus tel que spécifié par UniCAP-FEIA)
- Régulation à la hausse de CD203c ou de CD63 lors d'une provocation avec Bet v 1 dans des tests d'activation des basophiles par cytométrie en flux (≥ 20 % de régulation à la hausse de CD63 ou de CD203c lors de la stimulation de Bet v 1 par rapport à des témoins non stimulés, telle que mesurée par cytométrie en flux)
- Volonté de suivre le protocole.
- Consentement éclairé écrit
- Assurance maladie standard
- Les sujets doivent être disponibles pendant toute la période d'étude
Critère d'exclusion:
- Preuve de maladies aiguës, chroniques, malignes ou générales - évaluées en demandant au patient (par ex. Avez-vous souffert ou souffrez-vous actuellement d'une maladie maligne ou généralisée ? Avez-vous souffert ou souffrez-vous actuellement d'une maladie chronique? Avez-vous eu une maladie aiguë au cours des deux dernières semaines ?).
- Une histoire de l'anaphylaxie.
- Utilisation de modificateurs de leucotriènes.
- Utilisation d'antihistaminiques à action prolongée.
- Utilisation chronique ou intermittente de corticostéroïdes oraux, inhalés, intramusculaires, intraveineux et topiques puissants.
- Polypes nasaux, antécédents de sinusite chronique ou déviation importante de la cloison nasale
- Rhinite secondaire à d'autres causes.
- Contre-indications aux tests cutanés, par exemple, irritation cutanée dans la zone de test et urticaire factice.
- Maladies cardiovasculaires ou thérapie anti-hypertensive et bêta-bloquants.
- Toute perturbation du système de coagulation par des médicaments ou des troubles de la coagulation connus
- Thérapie prophylactique à l'aspirine
- Utilisation chronique de médicaments supplémentaires qui affecteraient l'évaluation et les résultats de l'étude (par exemple, les antidépresseurs tricycliques qui bloquent les récepteurs H1 et H2)
- Femelles gestantes ou allaitantes.
- Handicap réel qui influencerait la capacité du sujet à participer à l'étude.
- Antécédents de maladie mentale, de déficience intellectuelle, d'abus de drogue ou d'alcool
- Asthme actif nécessitant un traitement
- Immunothérapie allergénique au pollen de bouleau
- Voyage organisé à l'extérieur de la région d'étude pour une partie substantielle de la période d'étude.
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Objectif principal: Science basique
- Répartition: Randomisé
- Modèle interventionnel: Affectation parallèle
- Masquage: Tripler
Armes et Interventions
Groupe de participants / Bras |
Intervention / Traitement |
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Comparateur actif: Groupe actif
Sujets allergiques au bouleau recevant une provocation à l'extrait de pollen de bouleau
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Des échantillons de sang seront prélevés par ponction de la veine antécubitale pour l'isolement des cellules mononucléaires du sang périphérique (PBMC), la mesure des cytokines et l'analyse par cytométrie en flux
Des biopsies nasales seront prélevées à partir de la frange inférieure du cornet inférieur, à environ 1 à 2 cm du bord incurvé antérieur pour le séquençage de l'ARN et la coloration par microscopie confocale
Une collecte d'échantillons nasaux sera effectuée.
La nasosorption FXi/PU (contenant une matrice absorbante synthétique (SAM)) sera obtenue.
Une curette nasale de 10 cm sera utilisée (Rhino-Probe, Arlington Scientific, USA).
La curette est amenée à reposer contre la partie médio-inférieure du cornet inférieur sous visualisation directe.
La curette est frottée contre la surface muqueuse, en allant vers l'extérieur.
Pour assurer une acquisition réussie de l'échantillon, ce mouvement sera répété 2 à 3 fois
L'extrait de pollen de bouleau (Allergopharma, Vienne, Autriche) sera fraîchement dilué dans une solution stérile de chlorure de sodium à 0,9% et administré au moyen d'une pompe doseuse.
L'allergène sera administré à raison de 15 μl par bouffée dans les deux narines.
Un spray nasal d'azélastine ou de la desloratadine 5 mg sera administré si le patient souffre de symptômes nasaux ou oculaires après le test.
Une quantité équivalente de solution saline sans allergènes sera donnée au groupe témoin.
Afin d'évaluer le profil de sensibilisation du patient lors de la visite de dépistage, un test cutané régulier sera effectué avec un extrait de pollen de bouleau commercial et un panel d'allergènes utilisés dans le diagnostic de routine dans la clinique d'allergie de l'oreille, du nez et de la gorge (ORL) département. Test cutané titré : Le test cutané titré (SPT) à l'extrait de pollen de bouleau est effectué en utilisant des dilutions croissantes jusqu'à 1:100 000. En conséquence, il est possible de déterminer la concentration la plus faible qui entraîne une réaction cutanée.
La fonctionnalité et la commodité du PNIF offrent une rare opportunité d'obtenir rapidement des mesures objectives du débit inspiratoire de pointe nasal.
Il a également été validé lors d'autres tests allergènes nasaux comme outil d'étude
Chez les patientes, un test de grossesse urinaire régulier exclura une grossesse.
Le test sera effectué lors de la visite de dépistage avant le premier test cutané puis une fois par mois par la suite.
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Comparateur placebo: Groupe de contrôle
Sujets allergiques au bouleau recevant une solution saline
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Des échantillons de sang seront prélevés par ponction de la veine antécubitale pour l'isolement des cellules mononucléaires du sang périphérique (PBMC), la mesure des cytokines et l'analyse par cytométrie en flux
Des biopsies nasales seront prélevées à partir de la frange inférieure du cornet inférieur, à environ 1 à 2 cm du bord incurvé antérieur pour le séquençage de l'ARN et la coloration par microscopie confocale
Une collecte d'échantillons nasaux sera effectuée.
La nasosorption FXi/PU (contenant une matrice absorbante synthétique (SAM)) sera obtenue.
Une curette nasale de 10 cm sera utilisée (Rhino-Probe, Arlington Scientific, USA).
La curette est amenée à reposer contre la partie médio-inférieure du cornet inférieur sous visualisation directe.
La curette est frottée contre la surface muqueuse, en allant vers l'extérieur.
Pour assurer une acquisition réussie de l'échantillon, ce mouvement sera répété 2 à 3 fois
L'extrait de pollen de bouleau (Allergopharma, Vienne, Autriche) sera fraîchement dilué dans une solution stérile de chlorure de sodium à 0,9% et administré au moyen d'une pompe doseuse.
L'allergène sera administré à raison de 15 μl par bouffée dans les deux narines.
Un spray nasal d'azélastine ou de la desloratadine 5 mg sera administré si le patient souffre de symptômes nasaux ou oculaires après le test.
Une quantité équivalente de solution saline sans allergènes sera donnée au groupe témoin.
Afin d'évaluer le profil de sensibilisation du patient lors de la visite de dépistage, un test cutané régulier sera effectué avec un extrait de pollen de bouleau commercial et un panel d'allergènes utilisés dans le diagnostic de routine dans la clinique d'allergie de l'oreille, du nez et de la gorge (ORL) département. Test cutané titré : Le test cutané titré (SPT) à l'extrait de pollen de bouleau est effectué en utilisant des dilutions croissantes jusqu'à 1:100 000. En conséquence, il est possible de déterminer la concentration la plus faible qui entraîne une réaction cutanée.
La fonctionnalité et la commodité du PNIF offrent une rare opportunité d'obtenir rapidement des mesures objectives du débit inspiratoire de pointe nasal.
Il a également été validé lors d'autres tests allergènes nasaux comme outil d'étude
Chez les patientes, un test de grossesse urinaire régulier exclura une grossesse.
Le test sera effectué lors de la visite de dépistage avant le premier test cutané puis une fois par mois par la suite.
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Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
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Quantification des cellules productrices d'IgE
Délai: 3 années
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Quantification du nombre de cellules productrices d'IgE dans les biopsies sanguines et nasales (Nombre de cellules productrices d'IgE des cellules totales) par cytométrie en flux et microscopie
|
3 années
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Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Sven Schneider, MD, Medical University of Vienna
Publications et liens utiles
Publications générales
- Boelke G, Berger U, Bergmann KC, Bindslev-Jensen C, Bousquet J, Gildemeister J, Jutel M, Pfaar O, Sehlinger T, Zuberbier T. Peak nasal inspiratory flow as outcome for provocation studies in allergen exposure chambers: a GA2LEN study. Clin Transl Allergy. 2017 Sep 17;7:33. doi: 10.1186/s13601-017-0169-4. eCollection 2017.
- Gangl K, Reininger R, Bernhard D, Campana R, Pree I, Reisinger J, Kneidinger M, Kundi M, Dolznig H, Thurnher D, Valent P, Chen KW, Vrtala S, Spitzauer S, Valenta R, Niederberger V. Cigarette smoke facilitates allergen penetration across respiratory epithelium. Allergy. 2009 Mar;64(3):398-405. doi: 10.1111/j.1398-9995.2008.01861.x. Epub 2008 Dec 16.
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- Selb R, Eckl-Dorna J, Twaroch TE, Lupinek C, Teufelberger A, Hofer G, Focke-Tejkl M, Gepp B, Linhart B, Breiteneder H, Ellinger A, Keller W, Roux KH, Valenta R, Niederberger V. Critical and direct involvement of the CD23 stalk region in IgE binding. J Allergy Clin Immunol. 2017 Jan;139(1):281-289.e5. doi: 10.1016/j.jaci.2016.04.015. Epub 2016 May 7.
- Eckl-Dorna J, Villazala-Merino S, Campion NJ, Byazrova M, Filatov A, Kudlay D, Karsonova A, Riabova K, Khaitov M, Karaulov A, Niederberger-Leppin V, Valenta R. Tracing IgE-Producing Cells in Allergic Patients. Cells. 2019 Aug 28;8(9):994. doi: 10.3390/cells8090994.
- Brightbill HD, Jeet S, Lin Z, Yan D, Zhou M, Tan M, Nguyen A, Yeh S, Delarosa D, Leong SR, Wong T, Chen Y, Ultsch M, Luis E, Ramani SR, Jackman J, Gonzalez L, Dennis MS, Chuntharapai A, DeForge L, Meng YG, Xu M, Eigenbrot C, Lee WP, Refino CJ, Balazs M, Wu LC. Antibodies specific for a segment of human membrane IgE deplete IgE-producing B cells in humanized mice. J Clin Invest. 2010 Jun;120(6):2218-29. doi: 10.1172/JCI40141. Epub 2010 May 10.
- Harris JM, Maciuca R, Bradley MS, Cabanski CR, Scheerens H, Lim J, Cai F, Kishnani M, Liao XC, Samineni D, Zhu R, Cochran C, Soong W, Diaz JD, Perin P, Tsukayama M, Dimov D, Agache I, Kelsen SG. A randomized trial of the efficacy and safety of quilizumab in adults with inadequately controlled allergic asthma. Respir Res. 2016 Mar 18;17:29. doi: 10.1186/s12931-016-0347-2.
- Focke M, Marth K, Valenta R. Molecular composition and biological activity of commercial birch pollen allergen extracts. Eur J Clin Invest. 2009 May;39(5):429-36. doi: 10.1111/j.1365-2362.2009.02109.x.
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Réel)
Achèvement primaire (Estimé)
Achèvement de l'étude (Estimé)
Dates d'inscription aux études
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Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Réel)
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Dernière mise à jour publiée (Réel)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
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