- ICH GCP
- Registro de ensayos clínicos de EE. UU.
- Ensayo clínico NCT05042830
Contribución de la producción de IgE nasal al aumento de IgE sistémica específica de alérgenos tras el contacto con alérgenos nasales
Contribución de la producción local de IgE nasal al impulso de la producción sistémica de IgE específica para alérgenos tras el contacto con alérgenos nasales: un estudio piloto exploratorio
Descripción general del estudio
Estado
Condiciones
Intervención / Tratamiento
- Procedimiento: Muestra de sangre
- Procedimiento: Biopsias nasales
- Biológico: Recolección de muestras nasales
- Procedimiento: Muestreo de ARN de mucosa
- Procedimiento: Desafío intranasal
- Procedimiento: Prueba de punción cutánea
- Procedimiento: Flujo inspiratorio nasal máximo (PNIF)
- Biológico: Prueba de embarazo
Descripción detallada
La nariz representa un importante y primer sitio de contacto con alérgenos, tanto porque es el órgano más frecuentemente afectado por los síntomas alérgicos como porque juega un papel importante en la regulación de la producción de IgE y la inflamación alérgica. La mucosa nasal actúa como una barrera contra los alérgenos intrusos. Esta función de barrera puede verse perturbada por diversos factores, como el humo del cigarrillo, la infección por rinovirus o el interferón-γ. La exposición a estos factores puede conducir a una mayor penetración de alérgenos. El contacto con alérgenos nasales en sujetos sensibilizados conduce a síntomas e inflamación nasal alérgica. Los investigadores de este estudio han demostrado previamente que los niveles de IgE específica para alérgenos en individuos sensibilizados aumentan fuertemente con el contacto nasal con alérgenos durante la temporada de alérgenos relevante o en modelos de exposición intranasal con alérgenos bien controlados. Este aumento inducido por alérgenos en los niveles de IgE, en consecuencia, conduce a una mayor sensibilidad de los pacientes alérgicos en términos de activación de mastocitos y basófilos mediada por IgE, así como la presentación de antígeno facilitada por IgE a través del receptor de afinidad alta (FcεRI) o baja (CD23) para IgE. por las células presentadoras de antígeno, a las células T. En este contexto, los investigadores han demostrado recientemente que no solo los niveles de IgE específicos del alérgeno, sino también la capacidad de entrecruzamiento de los complejos formados entre la IgE y el alérgeno dictan el grado de activación de las células T mediada por CD23.
La observación de que el contacto nasal con el alérgeno desencadena el aumento de los niveles sistémicos de IgE específica del alérgeno indica la presencia de células productoras de IgE+ localmente en la mucosa nasal que pueden estimularse con el contacto con el alérgeno. Esta hipótesis está respaldada por las siguientes observaciones: (A) existe evidencia de que las células B productoras de IgE y las células plasmáticas están presentes en la mucosa nasal, pero aún no se ha probado nada. (B) Tras la exposición ex vivo de biopsias de la mucosa nasal de pacientes alérgicos, se observó la síntesis local no solo de la línea germinal ε, sino también de transcritos del círculo ε como productos de la síntesis de IgE madura. Sin embargo, hasta el momento se desconoce en qué medida esta producción nasal local de IgE contribuye al aumento sistémico observado de IgE y la cinética subyacente de la producción de IgE y son un objetivo importante de esta propuesta.
Además, aunque se ha observado la producción local de IgE, hasta el momento no se ha confirmado la presencia de las propias células productoras de IgE en la mucosa nasal. Una razón importante de esto es la dificultad de identificar sin ambigüedades esas células mediante citometría de flujo o microscopía de fluorescencia. En el pasado, se desarrollaron varios protocolos de citometría de flujo paso a paso con el objetivo de excluir células no relevantes antes de seleccionar las células B IgE+. Sin embargo, debe tenerse en cuenta que todos los anticuerpos anti-IgE utilizados actualmente reconocen no solo la IgE de superficie presente en forma de receptor de células B, sino también unida a CD23. Como consecuencia, la mayoría de los estudios actuales sobrestiman la presencia de células B portadoras del receptor de células B IgE (BCR). Esto se ha demostrado recientemente en un estudio realizado por Jimenez-Saiz et al. donde los autores encontraron que solo alrededor del 0,0015% de las células B tienen un BCR de IgE. Aquí, los autores emplearon un enfoque de reacción en cadena de la polimerasa anidada (PCR) de una sola célula para validar la naturaleza de la BCR después de la clasificación de células basada en citometría de flujo para células B IgE+ utilizando protocolos informados anteriormente. Lo más probable es que la sobreestimación se deba a la detección de células B IgE+ que portan IgE unida a CD23. Una opción para mejorar la detección por citometría de flujo podría ser excluir las células positivas para CD23, pero esto también podría conducir a la exclusión de las células productoras de IgE que expresan CD23. Por lo tanto, la única alternativa para superar este obstáculo es utilizar un anticuerpo anti-IgE que pueda distinguir entre la IgE unida al receptor y la anclada a la membrana. A este respecto, recientemente se ha demostrado que un anticuerpo anti-IgE que cumple estos requisitos identifica con éxito células productoras de IgE. Así, los investigadores emplearán esta novedosa estrategia para identificar células productoras de IgE tanto en la mucosa nasal como en la sangre de sujetos alérgicos.
En este proyecto, los investigadores tienen como objetivo dilucidar los sitios y las características de la producción de IgE específica para alérgenos en un estudio de dos brazos que abarca sujetos alérgicos al polen de abedul que se someten a un desafío nasal controlado con polen de abedul fuera de la temporada (octubre). Para ello, se determinarán las células productoras de IgE en sangre mediante citometría de flujo y las células productoras de IgE en la mucosa nasal se identificarán en biopsias nasales mediante microscopía confocal. Comprender las características y ubicaciones de las células productoras de IgE es fundamental para el desarrollo de nuevos enfoques terapéuticos en el futuro.
Tipo de estudio
Inscripción (Estimado)
Fase
- No aplica
Contactos y Ubicaciones
Estudio Contacto
- Nombre: Sven Schneider, MD
- Número de teléfono: +4314040034380
- Correo electrónico: sven.schneider@meduniwien.ac.at
Copia de seguridad de contactos de estudio
- Nombre: Julia Eckl-Dorna, MD, PhD
- Número de teléfono: +4314040034380
- Correo electrónico: julia.eckl-dorna@meduniwien.ac.at
Ubicaciones de estudio
-
-
-
Vienna, Austria, 1090
- Reclutamiento
- Medical University of Vienna
-
Investigador principal:
- Sven Schneider, MD
-
Contacto:
- Julia Eckl-Dorna, MD, PhD
- Número de teléfono: 34380 +43140400
- Correo electrónico: julia.eckl-dorna@meduniwien.ac.at
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Contacto:
- Sven Schneider, MD
- Número de teléfono: 34380 +43140400
- Correo electrónico: sven.schneider@meduniwien.ac.at
-
Sub-Investigador:
- Julia Eckl-Dorna, MD, PhD
-
Sub-Investigador:
- Mohammed Zghaebi, MSc
-
Sub-Investigador:
- Nicholas Campion, MD
-
Sub-Investigador:
- Rudolf Valenta, MD
-
Sub-Investigador:
- Sabine Flicker, PhD
-
Sub-Investigador:
- Verena Niederberger, MD
-
Sub-Investigador:
- Tina Bartosik, MD
-
Sub-Investigador:
- Katharina Gangl, MD
-
-
Criterios de participación
Criterio de elegibilidad
Edades elegibles para estudiar
Acepta Voluntarios Saludables
Descripción
Criterios de inclusión:
Sujetos sensibilizados con polen de abedul
- Rinitis alérgica moderada a severa al alérgeno de polen de abedul durante al menos dos temporadas según su historial médico
- Sensibilización a Bet v 1 (IgE específica de Bet v 1: 3,5 kU/L o superior según lo especificado por UniCAP-FEIA)
- Aumento de CD203c o CD63 tras el desafío con Bet v 1 en las pruebas de activación de basófilos de citometría de flujo (≥20 % de aumento de CD63 o CD203c tras la estimulación de Bet v 1 en comparación con los controles no estimulados medidos por citometría de flujo)
- Disposición a seguir el protocolo.
- Consentimiento informado por escrito
- Seguro de salud estándar
- Los sujetos deben estar disponibles durante todo el período de estudio.
Criterio de exclusión:
- Evidencia de enfermedades agudas, crónicas, malignas o generales: evaluadas preguntando al paciente (p. ¿Padeció o padece actualmente alguna enfermedad maligna o generalizada? ¿Padeció o padece actualmente alguna enfermedad crónica? ¿Tuvo alguna enfermedad aguda en las últimas dos semanas?).
- Una historia de anafilaxia.
- Utilización de modificadores de leucotrienos.
- Utilización de antihistamínicos de acción prolongada.
- Uso crónico o intermitente de corticosteroides orales, inhalados, intramusculares, intravenosos y tópicos potentes.
- Pólipos nasales, antecedentes de sinusitis crónica o desviación considerable del tabique nasal
- Rinitis secundaria a otras causas.
- Contraindicaciones para las pruebas de punción cutánea, por ejemplo, irritación de la piel en el área de prueba y urticaria facticia.
- Enfermedades cardiovasculares o terapia antihipertensiva y betabloqueantes.
- Cualquier interrupción del sistema de coagulación a través de medicamentos o trastornos de coagulación conocidos.
- Terapia profiláctica con aspirina
- Uso crónico de medicamentos adicionales que afectarían la evaluación y los resultados del estudio (p. ej., antidepresivos tricíclicos que bloquean los receptores H1 y H2)
- Hembras gestantes o lactantes.
- Discapacidad real que influiría en la capacidad del sujeto para participar en el estudio.
- Antecedentes de enfermedad mental, deficiencia intelectual, abuso de drogas o alcohol
- Asma activa que requiere tratamiento
- Inmunoterapia con alérgenos de polen de abedul
- Viajes organizados fuera de la región de estudio durante una parte sustancial del período de estudio.
Plan de estudios
¿Cómo está diseñado el estudio?
Detalles de diseño
- Propósito principal: Ciencia básica
- Asignación: Aleatorizado
- Modelo Intervencionista: Asignación paralela
- Enmascaramiento: Triple
Armas e Intervenciones
Grupo de participantes/brazo |
Intervención / Tratamiento |
|---|---|
|
Comparador activo: Grupo activo
Sujetos alérgicos al abedul que reciben exposición a extracto de polen de abedul
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Se tomarán muestras de sangre por punción de la vena antecubital para el aislamiento de células mononucleares de sangre periférica (PBMC), medición de citocinas y análisis de citometría de flujo.
Se tomarán biopsias nasales del borde inferior del cornete inferior, aproximadamente a 1-2 cm del borde curvo anterior para secuenciación de ARN y tinción con microscopía confocal.
Se realizará la recolección de muestras nasales.
Se obtendrá Nasosorción FXi/PU (que contiene una matriz absorbente sintética (SAM)).
Se utilizará una cureta nasal de 10 cm (Rhino-Probe, Arlington Scientific, EE. UU.).
La legra se coloca contra la porción medioinferior del cornete inferior bajo visualización directa.
La cureta se frota contra la superficie mucosa, yendo hacia el exterior.
Para asegurar una adquisición exitosa de la muestra, este movimiento se repetirá 2 o 3 veces.
El extracto de polen de abedul (Allergopharma, Viena, Austria) se diluirá recientemente en una solución estéril de cloruro de sodio al 0,9 por ciento y se administrará mediante una bomba dosificadora.
El alérgeno se administrará suministrando 15 μl por inhalación en ambas fosas nasales.
Se administrará un aerosol nasal de azelastina o desloratadina de 5 mg si el paciente sufre síntomas nasales u oculares después del desafío.
Se administrará una cantidad equivalente de solución salina sin alérgenos al grupo de control.
Para evaluar el perfil de sensibilización del paciente en la visita de selección, se realizará una prueba cutánea periódica con extracto de polen de abedul comercial y un panel de alérgenos utilizados en el diagnóstico de rutina en la clínica de alergia de oído, nariz y garganta (ENT) departamento. Prueba de punción cutánea titulada: La prueba de punción cutánea titulada (SPT) para extracto de polen de abedul se realiza usando diluciones crecientes hasta 1:100 000. Como resultado, es posible determinar la concentración más baja que provoca una reacción en la piel.
La funcionalidad y conveniencia del PNIF presenta una rara oportunidad para obtener rápidamente mediciones objetivas del flujo inspiratorio máximo nasal.
También se validó durante otro desafío con alérgenos nasales como herramienta de estudio.
En pacientes mujeres, una prueba de embarazo en orina regular descartará el embarazo.
La prueba se realizará en la visita de selección antes de la primera prueba cutánea y luego una vez al mes.
|
|
Comparador de placebos: Grupo de control
Sujetos alérgicos al abedul que reciben solución salina.
|
Se tomarán muestras de sangre por punción de la vena antecubital para el aislamiento de células mononucleares de sangre periférica (PBMC), medición de citocinas y análisis de citometría de flujo.
Se tomarán biopsias nasales del borde inferior del cornete inferior, aproximadamente a 1-2 cm del borde curvo anterior para secuenciación de ARN y tinción con microscopía confocal.
Se realizará la recolección de muestras nasales.
Se obtendrá Nasosorción FXi/PU (que contiene una matriz absorbente sintética (SAM)).
Se utilizará una cureta nasal de 10 cm (Rhino-Probe, Arlington Scientific, EE. UU.).
La legra se coloca contra la porción medioinferior del cornete inferior bajo visualización directa.
La cureta se frota contra la superficie mucosa, yendo hacia el exterior.
Para asegurar una adquisición exitosa de la muestra, este movimiento se repetirá 2 o 3 veces.
El extracto de polen de abedul (Allergopharma, Viena, Austria) se diluirá recientemente en una solución estéril de cloruro de sodio al 0,9 por ciento y se administrará mediante una bomba dosificadora.
El alérgeno se administrará suministrando 15 μl por inhalación en ambas fosas nasales.
Se administrará un aerosol nasal de azelastina o desloratadina de 5 mg si el paciente sufre síntomas nasales u oculares después del desafío.
Se administrará una cantidad equivalente de solución salina sin alérgenos al grupo de control.
Para evaluar el perfil de sensibilización del paciente en la visita de selección, se realizará una prueba cutánea periódica con extracto de polen de abedul comercial y un panel de alérgenos utilizados en el diagnóstico de rutina en la clínica de alergia de oído, nariz y garganta (ENT) departamento. Prueba de punción cutánea titulada: La prueba de punción cutánea titulada (SPT) para extracto de polen de abedul se realiza usando diluciones crecientes hasta 1:100 000. Como resultado, es posible determinar la concentración más baja que provoca una reacción en la piel.
La funcionalidad y conveniencia del PNIF presenta una rara oportunidad para obtener rápidamente mediciones objetivas del flujo inspiratorio máximo nasal.
También se validó durante otro desafío con alérgenos nasales como herramienta de estudio.
En pacientes mujeres, una prueba de embarazo en orina regular descartará el embarazo.
La prueba se realizará en la visita de selección antes de la primera prueba cutánea y luego una vez al mes.
|
¿Qué mide el estudio?
Medidas de resultado primarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
|---|---|---|
|
Cuantificación de células productoras de IgE
Periodo de tiempo: 3 años
|
Cuantificación del número de células productoras de IgE en sangre y biopsias nasales (Número de células productoras de IgE del total de células) mediante citometría de flujo y microscopía
|
3 años
|
Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Investigadores
- Investigador principal: Sven Schneider, MD, Medical University of Vienna
Publicaciones y enlaces útiles
Publicaciones Generales
- Boelke G, Berger U, Bergmann KC, Bindslev-Jensen C, Bousquet J, Gildemeister J, Jutel M, Pfaar O, Sehlinger T, Zuberbier T. Peak nasal inspiratory flow as outcome for provocation studies in allergen exposure chambers: a GA2LEN study. Clin Transl Allergy. 2017 Sep 17;7:33. doi: 10.1186/s13601-017-0169-4. eCollection 2017.
- Gangl K, Reininger R, Bernhard D, Campana R, Pree I, Reisinger J, Kneidinger M, Kundi M, Dolznig H, Thurnher D, Valent P, Chen KW, Vrtala S, Spitzauer S, Valenta R, Niederberger V. Cigarette smoke facilitates allergen penetration across respiratory epithelium. Allergy. 2009 Mar;64(3):398-405. doi: 10.1111/j.1398-9995.2008.01861.x. Epub 2008 Dec 16.
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- Brightbill HD, Jeet S, Lin Z, Yan D, Zhou M, Tan M, Nguyen A, Yeh S, Delarosa D, Leong SR, Wong T, Chen Y, Ultsch M, Luis E, Ramani SR, Jackman J, Gonzalez L, Dennis MS, Chuntharapai A, DeForge L, Meng YG, Xu M, Eigenbrot C, Lee WP, Refino CJ, Balazs M, Wu LC. Antibodies specific for a segment of human membrane IgE deplete IgE-producing B cells in humanized mice. J Clin Invest. 2010 Jun;120(6):2218-29. doi: 10.1172/JCI40141. Epub 2010 May 10.
- Harris JM, Maciuca R, Bradley MS, Cabanski CR, Scheerens H, Lim J, Cai F, Kishnani M, Liao XC, Samineni D, Zhu R, Cochran C, Soong W, Diaz JD, Perin P, Tsukayama M, Dimov D, Agache I, Kelsen SG. A randomized trial of the efficacy and safety of quilizumab in adults with inadequately controlled allergic asthma. Respir Res. 2016 Mar 18;17:29. doi: 10.1186/s12931-016-0347-2.
- Focke M, Marth K, Valenta R. Molecular composition and biological activity of commercial birch pollen allergen extracts. Eur J Clin Invest. 2009 May;39(5):429-36. doi: 10.1111/j.1365-2362.2009.02109.x.
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- IgE21
Plan de datos de participantes individuales (IPD)
¿Planea compartir datos de participantes individuales (IPD)?
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Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.
Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.
producto fabricado y exportado desde los EE. UU.
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