- ICH GCP
- Registro degli studi clinici negli Stati Uniti
- Sperimentazione clinica NCT05042830
Contributo della produzione di IgE nasali all'incremento delle IgE sistemiche allergene-specifiche al contatto con gli allergeni nasali
Contributo della produzione locale di IgE nasali all'aumento della produzione sistemica di IgE allergene-specifiche al contatto con allergeni nasali: uno studio pilota esplorativo
Panoramica dello studio
Stato
Condizioni
Intervento / Trattamento
Descrizione dettagliata
Il naso rappresenta un'importante e prima sede di contatto con gli allergeni, sia perché è l'organo più frequentemente colpito dai sintomi allergici, sia perché svolge un ruolo importante nella regolazione della produzione di IgE e dell'infiammazione allergica. La mucosa nasale funge da barriera contro gli allergeni intrusivi. Questa funzione di barriera può essere perturbata da vari fattori come il fumo di sigaretta, l'infezione da rinovirus o l'interferone-γ. L'esposizione a questi fattori può portare ad una maggiore penetrazione degli allergeni. Il contatto con allergeni nasali in soggetti sensibilizzati porta a infiammazione e sintomi nasali allergici. I ricercatori di questo studio hanno precedentemente dimostrato che i livelli di IgE allergene-specifici in individui sensibilizzati sono fortemente aumentati al contatto con allergeni nasali durante la stagione degli allergeni rilevanti o in modelli di stimolazione con allergeni intranasali ben controllati. Questo aumento dei livelli di IgE indotto da allergeni porta di conseguenza ad una maggiore sensibilità dei pazienti allergici in termini di attivazione dei mastociti IgE-mediata e dei basofili, nonché alla presentazione dell'antigene IgE-facilitata attraverso il recettore ad affinità alta (FcεRI) o bassa (CD23) per le IgE dalle cellule presentanti l'antigene, alle cellule T. In questo contesto, i ricercatori hanno recentemente dimostrato che non solo i livelli di IgE allergene-specifici, ma anche la capacità di reticolazione dei complessi formati tra IgE e allergene determinano l'entità dell'attivazione delle cellule T mediata da CD23.
L'osservazione che il contatto con l'allergene nasale innesca l'aumento dei livelli sistemici di IgE allergene-specifiche indica la presenza di cellule produttrici di IgE+ localmente nella mucosa nasale che possono essere stimolate al contatto con l'allergene. Questa ipotesi è supportata dalle seguenti osservazioni: (A) esiste un'evidenza che le cellule B e le plasmacellule produttrici di IgE siano presenti nella mucosa nasale, ma nulla è stato ancora dimostrato. ( B ) Dopo la sfida ex vivo di biopsie dalla mucosa nasale di pazienti allergici, è stata osservata la sintesi locale non solo della linea germinale ε, ma anche delle trascrizioni del cerchio ε come prodotti della sintesi di IgE mature. Tuttavia, in che misura questa produzione nasale locale di IgE contribuisca al boost sistemico osservato di IgE e la cinetica sottostante della produzione di IgE sono finora sconosciute e sono uno scopo importante di questa proposta.
Inoltre, sebbene sia stata osservata la produzione locale di IgE, la presenza delle stesse cellule produttrici di IgE nella mucosa nasale non è stata finora confermata. Una ragione importante di ciò è la difficoltà di identificare in modo inequivocabile quelle cellule mediante citometria a flusso o microscopia a fluorescenza. In passato sono stati sviluppati diversi protocolli di citometria a flusso passo dopo passo con l'obiettivo di escludere le cellule non rilevanti prima del gating per le cellule B IgE+. Tuttavia, è necessario tenere presente che tutti gli anticorpi anti-IgE attualmente utilizzati riconoscono non solo le IgE di superficie presenti sotto forma del recettore delle cellule B, ma anche quelle legate al CD23. Di conseguenza, la maggior parte degli studi attuali sovrastima la presenza del recettore delle cellule B IgE (BCR) che porta cellule B. Ciò è stato dimostrato solo di recente in uno studio di Jimenez-Saiz et al. dove gli autori hanno scoperto che solo lo 0,0015% circa delle cellule B porta un IgE BCR. Qui gli autori hanno utilizzato un approccio di reazione a catena della polimerasi nidificata a singola cellula (PCR) per convalidare la natura del BCR dopo l'ordinamento cellulare basato sulla citometria a flusso per le cellule IgE + B utilizzando protocolli precedentemente riportati. La sovrastima è molto probabilmente dovuta al rilevamento di cellule B IgE+ contenenti IgE legate al CD23. Un'opzione per migliorare il rilevamento citometrico a flusso potrebbe essere l'esclusione delle cellule CD23 positive, ma ciò potrebbe anche portare all'esclusione delle cellule che producono IgE che esprimono CD23. Pertanto, l'unica alternativa per superare questo ostacolo è utilizzare un anticorpo anti-IgE in grado di distinguere tra IgE legate al recettore e ancorate alla membrana. A questo proposito, è stato recentemente dimostrato che un anticorpo anti-IgE che soddisfa questi requisiti identifica con successo le cellule che producono IgE. Pertanto, i ricercatori impiegheranno questa nuova strategia per identificare le cellule produttrici di IgE sia nella mucosa nasale che nel sangue di soggetti allergici.
In questo progetto, i ricercatori mirano a chiarire i siti e le caratteristiche della produzione di IgE allergene-specifiche in uno studio a due bracci che abbraccia soggetti allergici al polline di betulla sottoposti a sfida nasale controllata al polline di betulla al di fuori della stagione (ottobre). A tale scopo, le cellule produttrici di IgE nel sangue saranno determinate mediante citometria a flusso e le cellule produttrici di IgE nella mucosa nasale saranno rivelate in biopsie nasali mediante microscopia confocale. Comprendere le caratteristiche e le posizioni delle cellule produttrici di IgE è fondamentale per lo sviluppo di futuri nuovi approcci terapeutici.
Tipo di studio
Iscrizione (Stimato)
Fase
- Non applicabile
Contatti e Sedi
Contatto studio
- Nome: Sven Schneider, MD
- Numero di telefono: +4314040034380
- Email: sven.schneider@meduniwien.ac.at
Backup dei contatti dello studio
- Nome: Julia Eckl-Dorna, MD, PhD
- Numero di telefono: +4314040034380
- Email: julia.eckl-dorna@meduniwien.ac.at
Luoghi di studio
-
-
-
Vienna, Austria, 1090
- Reclutamento
- Medical University of Vienna
-
Investigatore principale:
- Sven Schneider, MD
-
Contatto:
- Julia Eckl-Dorna, MD, PhD
- Numero di telefono: 34380 +43140400
- Email: julia.eckl-dorna@meduniwien.ac.at
-
Contatto:
- Sven Schneider, MD
- Numero di telefono: 34380 +43140400
- Email: sven.schneider@meduniwien.ac.at
-
Sub-investigatore:
- Julia Eckl-Dorna, MD, PhD
-
Sub-investigatore:
- Mohammed Zghaebi, MSc
-
Sub-investigatore:
- Nicholas Campion, MD
-
Sub-investigatore:
- Rudolf Valenta, MD
-
Sub-investigatore:
- Sabine Flicker, PhD
-
Sub-investigatore:
- Verena Niederberger, MD
-
Sub-investigatore:
- Tina Bartosik, MD
-
Sub-investigatore:
- Katharina Gangl, MD
-
-
Criteri di partecipazione
Criteri di ammissibilità
Età idonea allo studio
Accetta volontari sani
Descrizione
Criterio di inclusione:
Soggetti sensibilizzati al polline di betulla
- Rinite allergica da moderata a grave all'allergene del polline di betulla per almeno due stagioni in base alla loro storia medica
- Sensibilizzazione a Bet v 1 (IgE specifiche Bet v 1: 3,5 kU/L o superiore come specificato da UniCAP-FEIA)
- Sovraregolazione di CD203c o CD63 alla stimolazione con Bet v 1 nei test di attivazione dei basofili citofluorimetrici (≥20% di sovraregolazione di CD63 o CD203c alla stimolazione di Bet v 1 rispetto ai controlli non stimolati misurati mediante citometria a flusso)
- Disponibilità a seguire il protocollo.
- Consenso informato scritto
- Assicurazione sanitaria standard
- I soggetti dovrebbero essere disponibili durante l'intero periodo di studio
Criteri di esclusione:
- Evidenza di malattie acute, croniche, maligne o generali, valutate chiedendo al paziente (ad es. Ha sofferto o soffre attualmente di qualche malattia maligna o generalizzata? Hai sofferto o stai attualmente soffrendo di qualche malattia cronica? Ha avuto qualche malattia acuta nelle ultime due settimane?).
- Una storia di anafilassi.
- Utilizzo di modificatori dei leucotrieni.
- Utilizzo di antistaminici a lunga durata d'azione.
- Uso cronico o intermittente di corticosteroidi topici orali, inalatori, intramuscolari, endovenosi e potenti.
- Polipi nasali, anamnesi di sinusite cronica o notevole deviazione del setto nasale
- Rinite secondaria ad altre cause.
- Controindicazioni al prick test cutaneo, ad esempio irritazione cutanea nell'area del test e orticaria factitia.
- Malattie cardiovascolari o terapia antiipertensiva e beta-bloccanti.
- Qualsiasi interruzione del sistema di coagulazione attraverso farmaci o disturbi noti della coagulazione
- Terapia profilattica con aspirina
- Uso cronico di farmaci aggiuntivi che potrebbero influenzare la valutazione e i risultati dello studio (ad esempio, antidepressivi triciclici che bloccano i recettori H1 e H2)
- Donne incinte o che allattano.
- Disabilità effettiva che influenzerebbe la capacità del soggetto di partecipare allo studio.
- Storia di malattia mentale, ritardo mentale, abuso di droghe o alcol
- Asma attivo che richiede trattamento
- Immunoterapia con allergeni del polline di betulla
- Viaggi organizzati al di fuori della regione di studio per una parte sostanziale del periodo di studio.
Piano di studio
Come è strutturato lo studio?
Dettagli di progettazione
- Scopo principale: Scienza basilare
- Assegnazione: Randomizzato
- Modello interventistico: Assegnazione parallela
- Mascheramento: Triplicare
Armi e interventi
Gruppo di partecipanti / Arm |
Intervento / Trattamento |
|---|---|
|
Comparatore attivo: Gruppo attivo
Soggetti allergici alla betulla sottoposti a test con estratto di polline di betulla
|
I campioni di sangue verranno prelevati mediante puntura della vena antecubitale per l'isolamento delle cellule mononucleate del sangue periferico (PBMC), la misurazione delle citochine e l'analisi della citometria a flusso
Le biopsie nasali saranno prelevate dalla frangia inferiore del turbinato inferiore, a circa 1-2 cm dal bordo curvo anteriore per il sequenziamento dell'RNA e la colorazione al microscopio confocale
Verrà condotta la raccolta di campioni nasali.
Verrà ottenuto il nasosorbimento FXi/PU (contenente una matrice sintetica assorbente (SAM)).
Verrà utilizzata una curette nasale da 10 cm (Rhino-Probe, Arlington Scientific, USA).
La curette viene portata a giacere contro la porzione medio-inferiore del turbinato inferiore sotto visualizzazione diretta.
La curette viene strofinata contro la superficie della mucosa, andando verso l'esterno.
Per garantire il successo dell'acquisizione del campione, questo movimento verrà ripetuto 2-3 volte
L'estratto di polline di betulla (Allergopharma, Vienna, Austria) sarà diluito fresco in una soluzione sterile di cloruro di sodio allo 0,9% e somministrato mediante una pompa dosatrice.
L'allergene verrà somministrato fornendo 15 μl per soffio a entrambe le narici.
Azelastine spray nasale o desloratadina 5 mg verranno somministrati se il paziente soffre di sintomi nasali o oculari dopo la provocazione.
Una quantità equivalente di soluzione salina senza allergeni verrà somministrata al gruppo di controllo.
Al fine di valutare il profilo di sensibilizzazione del paziente durante la visita di screening, verrà condotto un normale prick test cutaneo con estratto di polline di betulla commerciale e un pannello di allergeni utilizzati nella diagnosi di routine nella clinica allergica dell'orecchio, del naso e della gola (ORL) Dipartimento. Skin prick test titolato: il prick test cutaneo titolato (SPT) all'estratto di polline di betulla viene condotto utilizzando diluizioni crescenti fino a 1:100 000. Di conseguenza, è possibile determinare la concentrazione più bassa che provoca una reazione cutanea.
La funzionalità e la praticità del PNIF rappresentano una rara opportunità per ottenere rapidamente misurazioni obiettive del flusso inspiratorio del picco nasale.
È stato anche convalidato durante altri test con allergeni nasali come strumento di studio
Nelle pazienti di sesso femminile, un regolare test di gravidanza sulle urine escluderà la gravidanza.
Il test verrà condotto durante la visita di screening prima del primo test della puntura cutanea e successivamente una volta al mese.
|
|
Comparatore placebo: Gruppo di controllo
Soggetti allergici alla betulla che ricevono soluzione salina
|
I campioni di sangue verranno prelevati mediante puntura della vena antecubitale per l'isolamento delle cellule mononucleate del sangue periferico (PBMC), la misurazione delle citochine e l'analisi della citometria a flusso
Le biopsie nasali saranno prelevate dalla frangia inferiore del turbinato inferiore, a circa 1-2 cm dal bordo curvo anteriore per il sequenziamento dell'RNA e la colorazione al microscopio confocale
Verrà condotta la raccolta di campioni nasali.
Verrà ottenuto il nasosorbimento FXi/PU (contenente una matrice sintetica assorbente (SAM)).
Verrà utilizzata una curette nasale da 10 cm (Rhino-Probe, Arlington Scientific, USA).
La curette viene portata a giacere contro la porzione medio-inferiore del turbinato inferiore sotto visualizzazione diretta.
La curette viene strofinata contro la superficie della mucosa, andando verso l'esterno.
Per garantire il successo dell'acquisizione del campione, questo movimento verrà ripetuto 2-3 volte
L'estratto di polline di betulla (Allergopharma, Vienna, Austria) sarà diluito fresco in una soluzione sterile di cloruro di sodio allo 0,9% e somministrato mediante una pompa dosatrice.
L'allergene verrà somministrato fornendo 15 μl per soffio a entrambe le narici.
Azelastine spray nasale o desloratadina 5 mg verranno somministrati se il paziente soffre di sintomi nasali o oculari dopo la provocazione.
Una quantità equivalente di soluzione salina senza allergeni verrà somministrata al gruppo di controllo.
Al fine di valutare il profilo di sensibilizzazione del paziente durante la visita di screening, verrà condotto un normale prick test cutaneo con estratto di polline di betulla commerciale e un pannello di allergeni utilizzati nella diagnosi di routine nella clinica allergica dell'orecchio, del naso e della gola (ORL) Dipartimento. Skin prick test titolato: il prick test cutaneo titolato (SPT) all'estratto di polline di betulla viene condotto utilizzando diluizioni crescenti fino a 1:100 000. Di conseguenza, è possibile determinare la concentrazione più bassa che provoca una reazione cutanea.
La funzionalità e la praticità del PNIF rappresentano una rara opportunità per ottenere rapidamente misurazioni obiettive del flusso inspiratorio del picco nasale.
È stato anche convalidato durante altri test con allergeni nasali come strumento di studio
Nelle pazienti di sesso femminile, un regolare test di gravidanza sulle urine escluderà la gravidanza.
Il test verrà condotto durante la visita di screening prima del primo test della puntura cutanea e successivamente una volta al mese.
|
Cosa sta misurando lo studio?
Misure di risultato primarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
|
Quantificazione delle cellule produttrici di IgE
Lasso di tempo: 3 anni
|
Quantificazione del numero di cellule produttrici di IgE nel sangue e nelle biopsie nasali (numero di cellule produttrici di IgE rispetto alle cellule totali) mediante citometria a flusso e microscopia
|
3 anni
|
Collaboratori e investigatori
Sponsor
Investigatori
- Investigatore principale: Sven Schneider, MD, Medical University of Vienna
Pubblicazioni e link utili
Pubblicazioni generali
- Boelke G, Berger U, Bergmann KC, Bindslev-Jensen C, Bousquet J, Gildemeister J, Jutel M, Pfaar O, Sehlinger T, Zuberbier T. Peak nasal inspiratory flow as outcome for provocation studies in allergen exposure chambers: a GA2LEN study. Clin Transl Allergy. 2017 Sep 17;7:33. doi: 10.1186/s13601-017-0169-4. eCollection 2017.
- Gangl K, Reininger R, Bernhard D, Campana R, Pree I, Reisinger J, Kneidinger M, Kundi M, Dolznig H, Thurnher D, Valent P, Chen KW, Vrtala S, Spitzauer S, Valenta R, Niederberger V. Cigarette smoke facilitates allergen penetration across respiratory epithelium. Allergy. 2009 Mar;64(3):398-405. doi: 10.1111/j.1398-9995.2008.01861.x. Epub 2008 Dec 16.
- Gangl K, Waltl EE, Vetr H, Cabauatan CR, Niespodziana K, Valenta R, Niederberger V. Infection with Rhinovirus Facilitates Allergen Penetration Across a Respiratory Epithelial Cell Layer. Int Arch Allergy Immunol. 2015;166(4):291-6. doi: 10.1159/000430441. Epub 2015 May 13.
- Reisinger J, Triendl A, Kuchler E, Bohle B, Krauth MT, Rauter I, Valent P, Koenig F, Valenta R, Niederberger V. IFN-gamma-enhanced allergen penetration across respiratory epithelium augments allergic inflammation. J Allergy Clin Immunol. 2005 May;115(5):973-81. doi: 10.1016/j.jaci.2005.01.021.
- Niederberger V, Ring J, Rakoski J, Jager S, Spitzauer S, Valent P, Horak F, Kundi M, Valenta R. Antigens drive memory IgE responses in human allergy via the nasal mucosa. Int Arch Allergy Immunol. 2007;142(2):133-44. doi: 10.1159/000096439. Epub 2006 Oct 19.
- Egger C, Lupinek C, Ristl R, Lemell P, Horak F, Zieglmayer P, Spitzauer S, Valenta R, Niederberger V. Effects of nasal corticosteroids on boosts of systemic allergen-specific IgE production induced by nasal allergen exposure. PLoS One. 2015 Feb 23;10(2):e0114991. doi: 10.1371/journal.pone.0114991. eCollection 2015.
- Eckl-Dorna J, Froschl R, Lupinek C, Kiss R, Gattinger P, Marth K, Campana R, Mittermann I, Blatt K, Valent P, Selb R, Mayer A, Gangl K, Steiner I, Gamper J, Perkmann T, Zieglmayer P, Gevaert P, Valenta R, Niederberger V. Intranasal administration of allergen increases specific IgE whereas intranasal omalizumab does not increase serum IgE levels-A pilot study. Allergy. 2018 May;73(5):1003-1012. doi: 10.1111/all.13343. Epub 2017 Dec 12.
- Valenta R, Karaulov A, Niederberger V, Gattinger P, van Hage M, Flicker S, Linhart B, Campana R, Focke-Tejkl M, Curin M, Eckl-Dorna J, Lupinek C, Resch-Marat Y, Vrtala S, Mittermann I, Garib V, Khaitov M, Valent P, Pickl WF. Molecular Aspects of Allergens and Allergy. Adv Immunol. 2018;138:195-256. doi: 10.1016/bs.ai.2018.03.002. Epub 2018 Apr 26.
- Eckl-Dorna J, Villazala-Merino S, Linhart B, Karaulov AV, Zhernov Y, Khaitov M, Niederberger-Leppin V, Valenta R. Allergen-Specific Antibodies Regulate Secondary Allergen-Specific Immune Responses. Front Immunol. 2019 Jan 17;9:3131. doi: 10.3389/fimmu.2018.03131. eCollection 2018.
- Villazala-Merino S, Rodriguez-Dominguez A, Stanek V, Campion NJ, Gattinger P, Hofer G, Froeschl R, Fae I, Lupinek C, Vrtala S, Breiteneder H, Keller W, Perkmann T, Nakamura R, Pickl WF, Valenta R, Eckl-Dorna J, Niederberger V. Allergen-specific IgE levels and the ability of IgE-allergen complexes to cross-link determine the extent of CD23-mediated T-cell activation. J Allergy Clin Immunol. 2020 Mar;145(3):958-967.e5. doi: 10.1016/j.jaci.2019.11.019. Epub 2019 Nov 24.
- KleinJan A, Vinke JG, Severijnen LW, Fokkens WJ. Local production and detection of (specific) IgE in nasal B-cells and plasma cells of allergic rhinitis patients. Eur Respir J. 2000 Mar;15(3):491-7. doi: 10.1034/j.1399-3003.2000.15.11.x.
- Cameron L, Hamid Q, Wright E, Nakamura Y, Christodoulopoulos P, Muro S, Frenkiel S, Lavigne F, Durham S, Gould H. Local synthesis of epsilon germline gene transcripts, IL-4, and IL-13 in allergic nasal mucosa after ex vivo allergen exposure. J Allergy Clin Immunol. 2000 Jul;106(1 Pt 1):46-52. doi: 10.1067/mai.2000.107398.
- Durham SR, Gould HJ, Thienes CP, Jacobson MR, Masuyama K, Rak S, Lowhagen O, Schotman E, Cameron L, Hamid QA. Expression of epsilon germ-line gene transcripts and mRNA for the epsilon heavy chain of IgE in nasal B cells and the effects of topical corticosteroid. Eur J Immunol. 1997 Nov;27(11):2899-906. doi: 10.1002/eji.1830271123.
- Takhar P, Smurthwaite L, Coker HA, Fear DJ, Banfield GK, Carr VA, Durham SR, Gould HJ. Allergen drives class switching to IgE in the nasal mucosa in allergic rhinitis. J Immunol. 2005 Apr 15;174(8):5024-32. doi: 10.4049/jimmunol.174.8.5024.
- Cameron L, Gounni AS, Frenkiel S, Lavigne F, Vercelli D, Hamid Q. S epsilon S mu and S epsilon S gamma switch circles in human nasal mucosa following ex vivo allergen challenge: evidence for direct as well as sequential class switch recombination. J Immunol. 2003 Oct 1;171(7):3816-22. doi: 10.4049/jimmunol.171.7.3816.
- Eckl-Dorna J, Niederberger V. What is the source of serum allergen-specific IgE? Curr Allergy Asthma Rep. 2013 Jun;13(3):281-7. doi: 10.1007/s11882-013-0348-x.
- Heeringa JJ, Rijvers L, Arends NJ, Driessen GJ, Pasmans SG, van Dongen JJM, de Jongste JC, van Zelm MC. IgE-expressing memory B cells and plasmablasts are increased in blood of children with asthma, food allergy, and atopic dermatitis. Allergy. 2018 Jun;73(6):1331-1336. doi: 10.1111/all.13421. Epub 2018 Mar 30.
- Oliveria JP, Salter BM, MacLean J, Kotwal S, Smith A, Harris JM, Scheerens H, Sehmi R, Gauvreau GM. Increased IgE+ B Cells in Sputum, but Not Blood, Bone Marrow, or Tonsils, after Inhaled Allergen Challenge in Subjects with Asthma. Am J Respir Crit Care Med. 2017 Jul 1;196(1):107-109. doi: 10.1164/rccm.201611-2274LE. No abstract available.
- Jimenez-Saiz R, Ellenbogen Y, Bruton K, Spill P, Sommer DD, Lima H, Waserman S, Patil SU, Shreffler WG, Jordana M. Human BCR analysis of single-sorted, putative IgE+ memory B cells in food allergy. J Allergy Clin Immunol. 2019 Jul;144(1):336-339.e6. doi: 10.1016/j.jaci.2019.04.001. Epub 2019 Apr 5.
- Selb R, Eckl-Dorna J, Twaroch TE, Lupinek C, Teufelberger A, Hofer G, Focke-Tejkl M, Gepp B, Linhart B, Breiteneder H, Ellinger A, Keller W, Roux KH, Valenta R, Niederberger V. Critical and direct involvement of the CD23 stalk region in IgE binding. J Allergy Clin Immunol. 2017 Jan;139(1):281-289.e5. doi: 10.1016/j.jaci.2016.04.015. Epub 2016 May 7.
- Eckl-Dorna J, Villazala-Merino S, Campion NJ, Byazrova M, Filatov A, Kudlay D, Karsonova A, Riabova K, Khaitov M, Karaulov A, Niederberger-Leppin V, Valenta R. Tracing IgE-Producing Cells in Allergic Patients. Cells. 2019 Aug 28;8(9):994. doi: 10.3390/cells8090994.
- Brightbill HD, Jeet S, Lin Z, Yan D, Zhou M, Tan M, Nguyen A, Yeh S, Delarosa D, Leong SR, Wong T, Chen Y, Ultsch M, Luis E, Ramani SR, Jackman J, Gonzalez L, Dennis MS, Chuntharapai A, DeForge L, Meng YG, Xu M, Eigenbrot C, Lee WP, Refino CJ, Balazs M, Wu LC. Antibodies specific for a segment of human membrane IgE deplete IgE-producing B cells in humanized mice. J Clin Invest. 2010 Jun;120(6):2218-29. doi: 10.1172/JCI40141. Epub 2010 May 10.
- Harris JM, Maciuca R, Bradley MS, Cabanski CR, Scheerens H, Lim J, Cai F, Kishnani M, Liao XC, Samineni D, Zhu R, Cochran C, Soong W, Diaz JD, Perin P, Tsukayama M, Dimov D, Agache I, Kelsen SG. A randomized trial of the efficacy and safety of quilizumab in adults with inadequately controlled allergic asthma. Respir Res. 2016 Mar 18;17:29. doi: 10.1186/s12931-016-0347-2.
- Focke M, Marth K, Valenta R. Molecular composition and biological activity of commercial birch pollen allergen extracts. Eur J Clin Invest. 2009 May;39(5):429-36. doi: 10.1111/j.1365-2362.2009.02109.x.
Studiare le date dei record
Studia le date principali
Inizio studio (Effettivo)
Completamento primario (Stimato)
Completamento dello studio (Stimato)
Date di iscrizione allo studio
Primo inviato
Primo inviato che soddisfa i criteri di controllo qualità
Primo Inserito (Effettivo)
Aggiornamenti dei record di studio
Ultimo aggiornamento pubblicato (Effettivo)
Ultimo aggiornamento inviato che soddisfa i criteri QC
Ultimo verificato
Maggiori informazioni
Termini relativi a questo studio
Parole chiave
Altri numeri di identificazione dello studio
- IgE21
Piano per i dati dei singoli partecipanti (IPD)
Hai intenzione di condividere i dati dei singoli partecipanti (IPD)?
Informazioni su farmaci e dispositivi, documenti di studio
Studia un prodotto farmaceutico regolamentato dalla FDA degli Stati Uniti
Studia un dispositivo regolamentato dalla FDA degli Stati Uniti
prodotto fabbricato ed esportato dagli Stati Uniti
Queste informazioni sono state recuperate direttamente dal sito web clinicaltrials.gov senza alcuna modifica. In caso di richieste di modifica, rimozione o aggiornamento dei dettagli dello studio, contattare register@clinicaltrials.gov. Non appena verrà implementata una modifica su clinicaltrials.gov, questa verrà aggiornata automaticamente anche sul nostro sito web .
Prove cliniche su Allergia
-
Ebbing LautenbachUniversity of UtahReclutamentoNeoplasie ematologiche | Beta Lactam AllergyStati Uniti
Prove cliniche su Prelievo di sangue
-
CHU de ReimsReclutamentoSindrome da antifosfolipidiFrancia
-
Centre Hospitalier Universitaire de NiceReclutamentoMalattia di AlzheimerFrancia
-
Haydarpasa Numune Training and Research HospitalCompletatoDisturbo della coagulazioneTacchino
-
University Hospital, RouenReclutamentoEpatite B | Epatite C | AIDSFrancia
-
MicroPhage, Inc.CompletatoSepsi | Batteriemia | Infezione | Infezione da stafilococcoStati Uniti
-
Dario KohlbrennerCompletato
-
University Hospital TuebingenReclutamentoPredisposizione genetica alla malattia | Malattie RareGermania
-
University of UtahAlbert Einstein College of Medicine; University of California, San Francisco; National... e altri collaboratoriCompletato
-
TCI Co., Ltd.Completato
-
Cerus CorporationTerminatoMalattia acuta da virus EbolaStati Uniti