- ICH GCP
- Registro de ensaios clínicos dos EUA
- Ensaio Clínico NCT05042830
Contribuição da Produção de IgE Nasal para o Aumento de IgE Sistêmica Alérgeno-específica no Contato com o Alérgeno Nasal
Contribuição da produção de IgE nasal local para o aumento da produção de IgE específica de alérgenos sistêmicos mediante contato com alérgenos nasais - um estudo piloto exploratório
Visão geral do estudo
Status
Condições
Intervenção / Tratamento
Descrição detalhada
O nariz representa um importante e primeiro local de contato do alérgeno, tanto por ser o órgão mais frequentemente afetado pelos sintomas alérgicos, quanto por desempenhar um papel importante na regulação da produção de IgE e inflamação alérgica. A mucosa nasal atua como uma barreira contra os alérgenos intrusos. Essa função de barreira pode ser perturbada por vários fatores, como fumaça de cigarro, infecção por rinovírus ou interferon-γ. A exposição a esses fatores pode levar ao aumento da penetração do alérgeno. O contato com o alérgeno nasal em indivíduos sensibilizados leva a sintomas e inflamação nasal alérgica. Os investigadores deste estudo demonstraram anteriormente que os níveis de IgE específica do alérgeno em indivíduos sensibilizados são fortemente aumentados após o contato nasal do alérgeno durante a estação do alérgeno relevante ou em modelos de provocação de alérgeno intranasal bem controlados. Este aumento induzido por alérgenos nos níveis de IgE, consequentemente, leva a um aumento da sensibilidade de pacientes alérgicos em termos de ativação de mastócitos e basófilos mediada por IgE, bem como apresentação de antígeno facilitada por IgE por meio do receptor de afinidade alta (FcεRI) ou baixa (CD23) para IgE por células apresentadoras de antígeno, para células T. Neste contexto, os investigadores demonstraram recentemente que não apenas os próprios níveis de IgE específica do alergénio, mas também a capacidade de reticulação dos complexos formados entre a IgE e o alergénio ditam a extensão da ativação das células T mediada por CD23.
A observação de que o contato nasal com o alérgeno desencadeia o aumento dos níveis sistêmicos de IgE específica para o alérgeno indica a presença de células produtoras de IgE+ localmente na mucosa nasal, que podem ser estimuladas pelo contato com o alérgeno. Essa hipótese é corroborada pelas seguintes observações: (A) há evidências de que células B e plasmócitos produtoras de IgE estão presentes na mucosa nasal, mas nada foi comprovado ainda. (B) Após desafio ex vivo de biópsias da mucosa nasal de pacientes alérgicos, foi observada a síntese local não apenas da linha germinativa ε, mas também dos transcritos circulares ε como produtos da síntese de IgE madura. No entanto, até que ponto essa produção nasal local de IgE contribui para o aumento sistêmico observado de IgE e a cinética subjacente da produção de IgE é até agora desconhecida e é um objetivo importante desta proposta.
Além disso, embora a produção local de IgE tenha sido observada, a presença das próprias células produtoras de IgE na mucosa nasal não foi confirmada até agora. Uma razão importante para isso é a dificuldade de identificar inequivocamente essas células por citometria de fluxo ou microscopia de fluorescência. No passado, vários protocolos de citometria de fluxo passo a passo foram desenvolvidos com o objetivo de excluir células não relevantes antes do gating para células B IgE+. No entanto, deve-se ter em mente que todos os anticorpos anti-IgE usados atualmente reconhecem não apenas a IgE de superfície presente na forma do receptor da célula B, mas também ligada ao CD23. Como consequência, a maioria dos estudos atuais superestima a presença de células B portadoras de receptor de células B de IgE (BCR). Isso só recentemente foi demonstrado em um estudo de Jimenez-Saiz et al. onde os autores descobriram que apenas cerca de 0,0015% das células B carregam um IgE BCR. Aqui, os autores empregaram uma abordagem de reação em cadeia da polimerase (PCR) aninhada de célula única para validar a natureza do BCR após a classificação de células baseada em citometria de fluxo para células IgE+ B usando protocolos relatados anteriormente. A superestimação é mais provável devido à detecção de células B IgE+ portadoras de IgE ligada a CD23. Uma opção para melhorar a detecção por citometria de fluxo poderia ser a exclusão de células CD23 positivas, mas isso também poderia levar à exclusão de células produtoras de IgE que expressam CD23. Assim, a única alternativa para superar esse obstáculo é usar um anticorpo anti-IgE que possa distinguir entre IgE ligada ao receptor e IgE ancorada na membrana. A este respeito, foi recentemente demonstrado que um anticorpo anti-IgE que preenche estes requisitos identifica com sucesso as células produtoras de IgE. Assim, os investigadores irão empregar esta nova estratégia para identificar células produtoras de IgE tanto na mucosa nasal quanto no sangue de indivíduos alérgicos.
Neste projeto, os pesquisadores pretendem elucidar os locais e as características da produção de IgE específica para alérgenos em um estudo de dois braços abrangendo indivíduos alérgicos ao pólen de bétula submetidos a desafio controlado com pólen de bétula nasal fora da estação (outubro). Para tanto, células produtoras de IgE no sangue serão determinadas por citometria de fluxo e células produtoras de IgE na mucosa nasal serão reveladas em biópsias nasais por microscopia confocal. Compreender as características e localizações das células produtoras de IgE é fundamental para o desenvolvimento de futuras novas abordagens terapêuticas.
Tipo de estudo
Inscrição (Estimado)
Estágio
- Não aplicável
Contactos e Locais
Contato de estudo
- Nome: Sven Schneider, MD
- Número de telefone: +4314040034380
- E-mail: sven.schneider@meduniwien.ac.at
Estude backup de contato
- Nome: Julia Eckl-Dorna, MD, PhD
- Número de telefone: +4314040034380
- E-mail: julia.eckl-dorna@meduniwien.ac.at
Locais de estudo
-
-
-
Vienna, Áustria, 1090
- Recrutamento
- Medical University of Vienna
-
Investigador principal:
- Sven Schneider, MD
-
Contato:
- Julia Eckl-Dorna, MD, PhD
- Número de telefone: 34380 +43140400
- E-mail: julia.eckl-dorna@meduniwien.ac.at
-
Contato:
- Sven Schneider, MD
- Número de telefone: 34380 +43140400
- E-mail: sven.schneider@meduniwien.ac.at
-
Subinvestigador:
- Julia Eckl-Dorna, MD, PhD
-
Subinvestigador:
- Mohammed Zghaebi, MSc
-
Subinvestigador:
- Nicholas Campion, MD
-
Subinvestigador:
- Rudolf Valenta, MD
-
Subinvestigador:
- Sabine Flicker, PhD
-
Subinvestigador:
- Verena Niederberger, MD
-
Subinvestigador:
- Tina Bartosik, MD
-
Subinvestigador:
- Katharina Gangl, MD
-
-
Critérios de participação
Critérios de elegibilidade
Idades elegíveis para estudo
Aceita Voluntários Saudáveis
Descrição
Critério de inclusão:
Indivíduos sensibilizados com pólen de bétula
- Rinite alérgica moderada a grave ao alérgeno do pólen de bétula por pelo menos duas temporadas de acordo com seu histórico médico
- Sensibilização para Bet v 1 (Bet v 1 IgE específico: 3,5 kU/L ou superior conforme especificado por UniCAP-FEIA)
- Regulação positiva de CD203c ou CD63 após desafio com Bet v 1 em testes de ativação de basófilos por citometria de fluxo (≥20% de regulação positiva de CD63 ou CD203c após estimulação de Bet v 1 em comparação com controles não estimulados conforme medido por citometria de fluxo)
- Disposição para seguir o protocolo.
- Consentimento informado por escrito
- Seguro de saúde padrão
- Os assuntos devem estar disponíveis durante todo o período de estudo
Critério de exclusão:
- Evidência de doenças agudas, crônicas, malignas ou gerais - avaliadas perguntando ao paciente (p. Sofreu ou sofre atualmente de alguma doença maligna ou generalizada? Sofreu ou sofre atualmente de alguma doença crônica? Você teve alguma doença aguda nas últimas duas semanas?).
- Uma história de anafilaxia.
- Utilização de modificadores de leucotrienos.
- Utilização de anti-histamínicos de ação prolongada.
- Uso crônico ou intermitente de corticosteroides orais, inalatórios, intramusculares, intravenosos e tópicos potentes.
- Pólipos nasais, história de sinusite crônica ou desvio considerável do septo nasal
- Rinite secundária a outras causas.
- Contra-indicações para testes cutâneos por picada, por exemplo, irritação da pele na área de teste e urticária factícia.
- Doenças cardiovasculares ou terapia anti-hipertensiva e betabloqueadores.
- Qualquer interrupção do sistema de coagulação por meio de medicamentos ou distúrbios de coagulação conhecidos
- Terapia profilática com aspirina
- Uso crônico de medicamentos adicionais que afetariam a avaliação e os resultados do estudo (por exemplo, antidepressivos tricíclicos que bloqueiam os receptores H1 e H2)
- Mulheres grávidas ou amamentando.
- Incapacidade real que influenciaria a capacidade do sujeito de participar do estudo.
- Histórico de doença mental, deficiência intelectual, abuso de drogas ou álcool
- Asma ativa que requer tratamento
- Imunoterapia com alérgenos de pólen de bétula
- Viagem organizada para fora da região de estudo por uma parte substancial do período de estudo.
Plano de estudo
Como o estudo é projetado?
Detalhes do projeto
- Finalidade Principal: Ciência básica
- Alocação: Randomizado
- Modelo Intervencional: Atribuição Paralela
- Mascaramento: Triplo
Armas e Intervenções
Grupo de Participantes / Braço |
Intervenção / Tratamento |
|---|---|
|
Comparador Ativo: Grupo ativo
Indivíduos alérgicos a bétula recebendo desafio com extrato de pólen de bétula
|
Amostras de sangue serão coletadas por punção da veia antecubital para isolamento de células mononucleares do sangue periférico (PBMCs), medição de citocinas e análise por citometria de fluxo
As biópsias nasais serão retiradas da borda inferior do corneto inferior, aproximadamente 1-2cm da borda anterior curvada para sequenciamento de RNA e coloração por microscopia confocal
A coleta de espécimes nasais será realizada.
Nasosorção FXi/PU (contendo uma matriz absortiva sintética (SAM)) será obtida.
Será utilizada uma cureta nasal de 10 cm (Rhino-Probe, Arlington Scientific, EUA).
A cureta é colocada contra a porção médio-inferior do corneto inferior sob visualização direta.
A cureta é esfregada contra a superfície da mucosa, indo para fora.
Para garantir a aquisição de amostra bem-sucedida, este movimento será repetido 2-3 vezes
O extrato de pólen de bétula (Allergopharma, Viena, Áustria) será diluído na hora em uma solução estéril de cloreto de sódio a 0,9 por cento e administrado por meio de uma bomba dosadora.
O alérgeno será administrado fornecendo 15 μl por sopro para ambas as narinas.
Azelastina spray nasal ou desloratadina 5 mg serão administrados se o paciente apresentar sintomas nasais ou oculares após o desafio.
Quantidade equivalente de solução salina sem alérgenos será fornecida ao grupo controle.
Para avaliar o perfil de sensibilização do paciente na visita de triagem, será realizado um teste cutâneo regular com extrato de pólen de bétula comercial e um painel de alérgenos usados no diagnóstico de rotina na clínica de alergia de ouvido, nariz e garganta (ENT) departamento. Teste cutâneo titulado: O teste cutâneo titulado (SPT) para extrato de pólen de bétula é conduzido usando diluições crescentes até 1:100.000. Como resultado, é possível determinar a concentração mais baixa que leva a uma reação cutânea.
A funcionalidade e conveniência do PNIF apresenta uma rara oportunidade de obter rapidamente medições objetivas do pico de fluxo inspiratório nasal.
Também foi validado durante outro desafio nasal com alérgenos como uma ferramenta de estudo
Em pacientes do sexo feminino, um teste de gravidez de urina regular descartará a gravidez.
O teste será realizado na visita de triagem antes do primeiro teste cutâneo e depois uma vez por mês depois.
|
|
Comparador de Placebo: Grupo de controle
Indivíduos alérgicos a bétula recebendo solução salina
|
Amostras de sangue serão coletadas por punção da veia antecubital para isolamento de células mononucleares do sangue periférico (PBMCs), medição de citocinas e análise por citometria de fluxo
As biópsias nasais serão retiradas da borda inferior do corneto inferior, aproximadamente 1-2cm da borda anterior curvada para sequenciamento de RNA e coloração por microscopia confocal
A coleta de espécimes nasais será realizada.
Nasosorção FXi/PU (contendo uma matriz absortiva sintética (SAM)) será obtida.
Será utilizada uma cureta nasal de 10 cm (Rhino-Probe, Arlington Scientific, EUA).
A cureta é colocada contra a porção médio-inferior do corneto inferior sob visualização direta.
A cureta é esfregada contra a superfície da mucosa, indo para fora.
Para garantir a aquisição de amostra bem-sucedida, este movimento será repetido 2-3 vezes
O extrato de pólen de bétula (Allergopharma, Viena, Áustria) será diluído na hora em uma solução estéril de cloreto de sódio a 0,9 por cento e administrado por meio de uma bomba dosadora.
O alérgeno será administrado fornecendo 15 μl por sopro para ambas as narinas.
Azelastina spray nasal ou desloratadina 5 mg serão administrados se o paciente apresentar sintomas nasais ou oculares após o desafio.
Quantidade equivalente de solução salina sem alérgenos será fornecida ao grupo controle.
Para avaliar o perfil de sensibilização do paciente na visita de triagem, será realizado um teste cutâneo regular com extrato de pólen de bétula comercial e um painel de alérgenos usados no diagnóstico de rotina na clínica de alergia de ouvido, nariz e garganta (ENT) departamento. Teste cutâneo titulado: O teste cutâneo titulado (SPT) para extrato de pólen de bétula é conduzido usando diluições crescentes até 1:100.000. Como resultado, é possível determinar a concentração mais baixa que leva a uma reação cutânea.
A funcionalidade e conveniência do PNIF apresenta uma rara oportunidade de obter rapidamente medições objetivas do pico de fluxo inspiratório nasal.
Também foi validado durante outro desafio nasal com alérgenos como uma ferramenta de estudo
Em pacientes do sexo feminino, um teste de gravidez de urina regular descartará a gravidez.
O teste será realizado na visita de triagem antes do primeiro teste cutâneo e depois uma vez por mês depois.
|
O que o estudo está medindo?
Medidas de resultados primários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
|---|---|---|
|
Quantificação de células produtoras de IgE
Prazo: 3 anos
|
Quantificação do número de células produtoras de IgE em sangue e biópsias nasais (Número de células produtoras de IgE de células totais) por citometria de fluxo e microscopia
|
3 anos
|
Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Investigadores
- Investigador principal: Sven Schneider, MD, Medical University of Vienna
Publicações e links úteis
Publicações Gerais
- Boelke G, Berger U, Bergmann KC, Bindslev-Jensen C, Bousquet J, Gildemeister J, Jutel M, Pfaar O, Sehlinger T, Zuberbier T. Peak nasal inspiratory flow as outcome for provocation studies in allergen exposure chambers: a GA2LEN study. Clin Transl Allergy. 2017 Sep 17;7:33. doi: 10.1186/s13601-017-0169-4. eCollection 2017.
- Gangl K, Reininger R, Bernhard D, Campana R, Pree I, Reisinger J, Kneidinger M, Kundi M, Dolznig H, Thurnher D, Valent P, Chen KW, Vrtala S, Spitzauer S, Valenta R, Niederberger V. Cigarette smoke facilitates allergen penetration across respiratory epithelium. Allergy. 2009 Mar;64(3):398-405. doi: 10.1111/j.1398-9995.2008.01861.x. Epub 2008 Dec 16.
- Gangl K, Waltl EE, Vetr H, Cabauatan CR, Niespodziana K, Valenta R, Niederberger V. Infection with Rhinovirus Facilitates Allergen Penetration Across a Respiratory Epithelial Cell Layer. Int Arch Allergy Immunol. 2015;166(4):291-6. doi: 10.1159/000430441. Epub 2015 May 13.
- Reisinger J, Triendl A, Kuchler E, Bohle B, Krauth MT, Rauter I, Valent P, Koenig F, Valenta R, Niederberger V. IFN-gamma-enhanced allergen penetration across respiratory epithelium augments allergic inflammation. J Allergy Clin Immunol. 2005 May;115(5):973-81. doi: 10.1016/j.jaci.2005.01.021.
- Niederberger V, Ring J, Rakoski J, Jager S, Spitzauer S, Valent P, Horak F, Kundi M, Valenta R. Antigens drive memory IgE responses in human allergy via the nasal mucosa. Int Arch Allergy Immunol. 2007;142(2):133-44. doi: 10.1159/000096439. Epub 2006 Oct 19.
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- Eckl-Dorna J, Froschl R, Lupinek C, Kiss R, Gattinger P, Marth K, Campana R, Mittermann I, Blatt K, Valent P, Selb R, Mayer A, Gangl K, Steiner I, Gamper J, Perkmann T, Zieglmayer P, Gevaert P, Valenta R, Niederberger V. Intranasal administration of allergen increases specific IgE whereas intranasal omalizumab does not increase serum IgE levels-A pilot study. Allergy. 2018 May;73(5):1003-1012. doi: 10.1111/all.13343. Epub 2017 Dec 12.
- Valenta R, Karaulov A, Niederberger V, Gattinger P, van Hage M, Flicker S, Linhart B, Campana R, Focke-Tejkl M, Curin M, Eckl-Dorna J, Lupinek C, Resch-Marat Y, Vrtala S, Mittermann I, Garib V, Khaitov M, Valent P, Pickl WF. Molecular Aspects of Allergens and Allergy. Adv Immunol. 2018;138:195-256. doi: 10.1016/bs.ai.2018.03.002. Epub 2018 Apr 26.
- Eckl-Dorna J, Villazala-Merino S, Linhart B, Karaulov AV, Zhernov Y, Khaitov M, Niederberger-Leppin V, Valenta R. Allergen-Specific Antibodies Regulate Secondary Allergen-Specific Immune Responses. Front Immunol. 2019 Jan 17;9:3131. doi: 10.3389/fimmu.2018.03131. eCollection 2018.
- Villazala-Merino S, Rodriguez-Dominguez A, Stanek V, Campion NJ, Gattinger P, Hofer G, Froeschl R, Fae I, Lupinek C, Vrtala S, Breiteneder H, Keller W, Perkmann T, Nakamura R, Pickl WF, Valenta R, Eckl-Dorna J, Niederberger V. Allergen-specific IgE levels and the ability of IgE-allergen complexes to cross-link determine the extent of CD23-mediated T-cell activation. J Allergy Clin Immunol. 2020 Mar;145(3):958-967.e5. doi: 10.1016/j.jaci.2019.11.019. Epub 2019 Nov 24.
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- Selb R, Eckl-Dorna J, Twaroch TE, Lupinek C, Teufelberger A, Hofer G, Focke-Tejkl M, Gepp B, Linhart B, Breiteneder H, Ellinger A, Keller W, Roux KH, Valenta R, Niederberger V. Critical and direct involvement of the CD23 stalk region in IgE binding. J Allergy Clin Immunol. 2017 Jan;139(1):281-289.e5. doi: 10.1016/j.jaci.2016.04.015. Epub 2016 May 7.
- Eckl-Dorna J, Villazala-Merino S, Campion NJ, Byazrova M, Filatov A, Kudlay D, Karsonova A, Riabova K, Khaitov M, Karaulov A, Niederberger-Leppin V, Valenta R. Tracing IgE-Producing Cells in Allergic Patients. Cells. 2019 Aug 28;8(9):994. doi: 10.3390/cells8090994.
- Brightbill HD, Jeet S, Lin Z, Yan D, Zhou M, Tan M, Nguyen A, Yeh S, Delarosa D, Leong SR, Wong T, Chen Y, Ultsch M, Luis E, Ramani SR, Jackman J, Gonzalez L, Dennis MS, Chuntharapai A, DeForge L, Meng YG, Xu M, Eigenbrot C, Lee WP, Refino CJ, Balazs M, Wu LC. Antibodies specific for a segment of human membrane IgE deplete IgE-producing B cells in humanized mice. J Clin Invest. 2010 Jun;120(6):2218-29. doi: 10.1172/JCI40141. Epub 2010 May 10.
- Harris JM, Maciuca R, Bradley MS, Cabanski CR, Scheerens H, Lim J, Cai F, Kishnani M, Liao XC, Samineni D, Zhu R, Cochran C, Soong W, Diaz JD, Perin P, Tsukayama M, Dimov D, Agache I, Kelsen SG. A randomized trial of the efficacy and safety of quilizumab in adults with inadequately controlled allergic asthma. Respir Res. 2016 Mar 18;17:29. doi: 10.1186/s12931-016-0347-2.
- Focke M, Marth K, Valenta R. Molecular composition and biological activity of commercial birch pollen allergen extracts. Eur J Clin Invest. 2009 May;39(5):429-36. doi: 10.1111/j.1365-2362.2009.02109.x.
Datas de registro do estudo
Datas Principais do Estudo
Início do estudo (Real)
Conclusão Primária (Estimado)
Conclusão do estudo (Estimado)
Datas de inscrição no estudo
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Enviado pela primeira vez que atendeu aos critérios de CQ
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Palavras-chave
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- IgE21
Plano para dados de participantes individuais (IPD)
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Informações sobre medicamentos e dispositivos, documentos de estudo
Estuda um medicamento regulamentado pela FDA dos EUA
Estuda um produto de dispositivo regulamentado pela FDA dos EUA
produto fabricado e exportado dos EUA
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