Réduction bactérienne après des procédures de désinfection supplémentaires dans les canaux radiculaires infectés

Calcul de la taille de l'échantillon La taille de l'échantillon a été calculée par le logiciel STATISTICA v8.0 (StatSoft, Tulsa, OK, USA), qui a démontré que 23 dents par groupe sont nécessaires pour montrer une différence de 5 % dans les niveaux bactériens à une puissance de 90 %. Compte tenu des pertes possibles, quatre-vingt-dix sujets adultes seront sélectionnés.

Sélection des cas et critères d'éligibilité Les participants seront recrutés à la clinique d'endodontie de l'Université de l'Iowa. Les critères d'inclusion seront les patients de 18 ans ou plus, les dents avec des parois de la chambre pulpaire intactes, aucune réponse aux tests pulpaires à froid et électriques et parodontite apicale.

Dents avec pulpe vitale, formation radiculaire incomplète, destruction importante de la couronne, traitement ou intervention endodontique antérieur (débridement pulpaire), abcès apical aigu/chronique, résorption interne ou externe, douleur faciale non odontogène, sondage parodontal plus profond que 4 mm, parodonte avancé non traité maladie ou chirurgie parodontale récente, dents avec un score de mobilité > 2, fracture ou fissure visible, patients diabétiques ou immunodéprimés, patients ayant reçu des antibiotiques systémiques au cours des trois derniers mois ou prenant des corticostéroïdes et la grossesse sera exclue.

Intervention d'étude Des échantillons de canal radiculaire seront prélevés sous stricte asepsie, comme décrit par Rodrigues et al. (21). Le champ opératoire sera désinfecté avec 3 % de peroxyde d'hydrogène et 3 % de NaOCl sous isolement par digue en caoutchouc. Une fois la cavité d'accès préparée, une solution de thiosulfate de sodium à 10 % sera injectée dans la chambre pulpaire et le contrôle de stérilité (SC) sera effectué sur les surfaces internes des parois de la cavité d'accès à l'aide de pointes en papier stériles. Cet échantillon sera transféré aseptiquement dans un cryotube contenant de l'ARN ultérieurement (Ambion, Austin, TX) et conservé à -20°C.

Le premier échantillon (S1) sera prélevé comme quantité de base de bactéries avant préparation chimiomécanique. Un ml de solution de thiosulfate de sodium à 10 % sera injecté dans le canal, et une pointe de papier stérile sera introduite jusqu'à cette longueur pendant 1 minute, transférée plus tard dans des cryotubes contenant de l'ARN et conservée à -20°C.

Le canal radiculaire sera façonné et nettoyé à l'aide d'instruments endodontiques rotatifs jusqu'à la taille 35/.04, avec une irrigation périodique avec 5 mL de NaOCl à 3 % entre chaque instrumentation. Après préparation apicale, le canal sera séché avec des pointes en papier stériles puis lavé avec 1 mL de thiosulfate de sodium à 10 % pendant 1 minute pour inactiver le NaOCl. Après cela, un deuxième échantillon (S2) sera collecté et stocké comme décrit pour S1.

Les échantillons de dents seront répartis au hasard en trois groupes (n = 30) selon le type d'approches de désinfection supplémentaires utilisées : (1) GWS, (2) LAI et (3) UAI. Ces appareils seront utilisés comme indiqué ci-dessus dans la phase 1 de cette étude. Après avoir utilisé des approches de désinfection supplémentaires, un troisième échantillon (S3) sera collecté dans le canal radiculaire et stocké comme décrit ci-dessus pour S1 et S2.