Reducción bacteriana después de procedimientos de desinfección suplementarios en conductos radiculares infectados

Cálculo del tamaño de la muestra El tamaño de la muestra se calculó mediante el software STATISTICA v8.0 (StatSoft, Tulsa, OK, EE. UU.), que demostró que se necesitan 23 dientes por grupo para mostrar una diferencia del 5% en los niveles bacterianos con una potencia del 90%. Considerando posibles pérdidas, se seleccionarán noventa sujetos adultos.

Criterios de elegibilidad y selección de casos Los participantes serán reclutados en la Clínica de Endodoncia de la Universidad de Iowa. Los criterios de inclusión serán pacientes de 18 años o más, dientes con paredes de la cámara pulpar intactas, sin respuesta a las pruebas pulpares eléctricas y frías y periodontitis apical.

Dientes con pulpa vital, formación radicular incompleta, destrucción extensa de la corona, tratamiento o intervención endodóncica previa (desbridamiento pulpar), absceso apical agudo/crónico, reabsorción interna o externa, dolor facial no odontogénico, sondaje periodontal más profundo de 4 mm, periodontal avanzado sin tratar. Se excluirá enfermedad o cirugía periodontal reciente, dientes con puntuación de movilidad> 2, fractura o grieta visible, pacientes con diabetes o condiciones inmunocomprometidas, pacientes que recibieron antibióticos sistémicos en los últimos tres meses o que toman corticosteroides y embarazo.

Intervención del estudio Las muestras del conducto radicular se tomarán bajo estricta asepsia, como lo describen Rodrigues et al. (21). El campo operatorio se desinfectará con peróxido de hidrógeno al 3% y NaOCl al 3% bajo aislamiento con dique de goma. Una vez preparada la cavidad de acceso, se inyectará una solución de tiosulfato de sodio al 10% en la cámara pulpar y se tomará el control de esterilidad (SC) de las paredes internas de las paredes de la cavidad de acceso utilizando puntas de papel estériles. Esta muestra se transferirá asépticamente a un criotubo que contiene ARN más tarde (Ambion, Austin, TX) y se almacenará a -20 °C.

La primera muestra (S1) se tomará como cantidad inicial de bacterias antes de la preparación quimiomecánica. Se inyectará en el canal un ml de solución de tiosulfato de sodio al 10% y se introducirá una punta de papel estéril hasta esa longitud durante 1 minuto, se transferirá posteriormente a criotubos que contengan ARN y se almacenará a -20 °C.

El conducto radicular se moldeará y limpiará utilizando instrumentos de endodoncia rotatorios hasta tamaño 35/.04, con irrigación periódica con 5 mL de NaOCl al 3% entre cada instrumentación. Después de la preparación apical, el canal se secará con puntas de papel estériles y luego se lavará con 1 ml de tiosulfato de sodio al 10 % durante 1 minuto para inactivar el NaOCl. Después de eso, se recolectará y almacenará una segunda muestra (S2) como se describe para S1.

Las muestras de dientes se asignarán aleatoriamente a tres grupos (n = 30) según el tipo de métodos de desinfección suplementarios utilizados: (1) GWS, (2) LAI y (3) UAI. Estos dispositivos se utilizarán como se indicó anteriormente en la fase 1 de este estudio. Después de utilizar enfoques de desinfección suplementarios, se recolectará una tercera muestra (S3) del conducto radicular y se almacenará como se describe anteriormente para S1 y S2.