Effets des produits laitiers fermentés sur les changements de défécation par le microbiote intestinal

Cet essai clinique à conception parallèle à double aveugle monocentrique a évalué l'impact d'un lait fermenté contenant des probiotiques consommé quotidiennement pendant 4 semaines sur les modèles de défécation et la composition du microbiome intestinal chez les adultes en bonne santé. Nous avons recruté des participants âgés de 20 à 65 ans qui n'avaient pas de maladies gastro-intestinales et qui ne prenaient pas de médicaments pour des symptômes digestifs (par exemple, des inhibiteurs de l'acide gastrique, des antibiotiques, des médicaments de stérilisation ou des agents d'antidiarhée) au cours du mois précédent. Il a été interdit aux participants de consommer des aliments probiotiques, des suppléments ou des produits laitiers fermentés, sauf ceux qui ont été fournis au cours de l'étude de 6 semaines. Chaque participant a d'abord terminé une période d'adaptation de 2 semaines (n = 22). Par la suite, chaque participant a été assigné au hasard à un groupe de contrôle ou d'intervention. Les participants ont reçu deux portions quotidiennes de 200 g d'un lait fermenté infusé par des probiotiques ou un produit laitier témoin pendant 4 semaines. Le produit d'intervention contenait 2 × 109 unités de formation de colonies (CFU) / ml de Lactobacillus acidophilus et Bifidobacterium lactis, ainsi que deux cultures de démarrage de Streptococcus thermophilus et L. bulgaricus. Le groupe d'intervention a été administré une dose médiane des probiotiques quotidiens de 3 × 108 CFU (intervalle de confiance à 95% [IC]: 1 × 109 à 3 × 1010 CFU) dans 112 ml de lait fermenté par jour (IC à 95%: 100-187,5 ml / jour). Un consentement écrit a été obtenu de chaque participant avant le début de cette étude. Le protocole d'essai contrôlé randomisé a été approuvé par le comité de révision institutionnel de l'Université médicale de Taipei, Taiwan (N202101006 et N202110014).

Les caractéristiques de base et les enregistrements alimentaires anthropométriques et les données de mesure du sang ont été collectés au départ et après 4 semaines d'intervention. Ceux-ci comprenaient le poids corporel, la hauteur, l'indice de masse corporelle, le profil lipidique et les niveaux de marqueurs de fonction hépatique. Des records alimentaires de trois jours (deux jours en semaine et un jour de week-end) ont été collectés au départ et pendant chacune des 4 semaines d'intervention pour surveiller les habitudes alimentaires des participants.

Les symptômes de fréquence de défécation et de constipation puisque les sujets sélectionnés étaient des individus en bonne santé, la fréquence de défécation par semaine et les scores d'échelle de selles de Bristol ont été évalués à l'aide d'un questionnaire donné aux participants.

Analyse du microbiote fécal des échantillons fécaux a été prélevé au départ et après l'intervention. Nous avons utilisé des milieux sélectifs, préparés comme décrit ailleurs, pour analyser les concentrations de Bifidobacterium spp., Lactobacillus spp., C. perfringens et organismes coliformes dans les échantillons fécaux. Cinq participants ont été sélectionnés au hasard dans chaque groupe, et leurs compositions de microbiome ont été analysées en utilisant le séquençage d'ARNr 16S. En bref, l'ADN génomique bactérien a été isolé des échantillons de selles des participants en utilisant le mini kit de selles d'ADN Fast Qiaamp (Qiagen, Allemagne), et la région V3-V4 des gènes d'ARNr bactérien 16S a été amplifié en utilisant des amorces universelles (341F et 805R). Les lectures appariées démultiplexées ont été traitées à l'aide du logiciel CutAdapt, v1.12 (doi: 10.14806 / ej.17.1.200), et les lectures filtrées ont été analysées à l'aide du package DADA2, v1.3.5, dans R Software, v3.3.3, suivant le flux de travail proposé par Callahan et al. mais sans raréfing.