Méthode de prélèvement percutané de plaie avec analyse en hémoculture (PERKA-B)

Les infections des plaies représentent un problème majeur de santé publique mondial d'un point de vue clinique, épidémiologique et économique. Bien que l'incidence des infections du site opératoire varie selon les régions, le taux mondial est estimé à environ 2-3% (1). Les plaies chroniques, telles que les ulcères du pied diabétique, les ulcères veineux et les escarres, constituent un fardeau tout aussi important, leur prévalence augmentant régulièrement dans le monde. Des estimations récentes indiquent que les dépenses mondiales liées aux plaies et aux infections des plaies ont atteint 148 milliards de dollars américains (2). Une proportion substantielle de ces coûts est attribuable aux hospitalisations prolongées et à l'antibiothérapie.

L'utilisation rationnelle des antibiotiques dans les infections des plaies repose principalement sur l'identification de l'agent pathogène causal et la détermination de son profil de sensibilité aux antimicrobiens par un examen microbiologique d'échantillons cliniques appropriés. Étant donné que les échantillons prélevés en surface présentent un risque élevé de contamination, la biopsie tissulaire profonde ou les échantillons par aspiration sont généralement considérés comme plus fiables que les prélèvements par écouvillon (3, 4). Dans la pratique courante de la microbiologie clinique, l'examen standard des échantillons de plaie implique l'ensemencement sur gélose au sang de mouton à 5% en combinaison avec une gélose de MacConkey ou une gélose à l'éosine bleu de méthylène (EMB). Ces milieux sont incubés à 35°C pendant 24 heures puis évalués. Si aucune croissance n'est observée, l'incubation est prolongée de 24 heures supplémentaires, et les cultures sans croissance après 48 heures sont déclarées négatives. Lorsqu'une croissance est détectée, une identification plus poussée des isolats est réalisée.

Malgré un prélèvement minutieux des échantillons, une proportion substantielle des échantillons de plaies continue de donner des résultats de culture négatifs. Des études antérieures ont documenté des taux de cultures négatives d'environ 12% dans les infections du pied diabétique (5), 19% dans les infections de plaies chroniques et 10-15% dans les infections du site opératoire (6, 7). Dans de telles circonstances, les cliniciens sont souvent obligés d'initier une antibiothérapie empirique lorsque les analyses microbiologiques ne parviennent pas à identifier un agent pathogène causal, malgré des preuves cliniques solides d'infection. Cette approche peut conduire à une administration injustifiée d'antibiotiques ou au recours à des agents à large spectre, augmentant ainsi le risque de résultats défavorables pour les patients et contribuant à l'augmentation des dépenses de santé. Par conséquent, l'amélioration des techniques de diagnostic microbiologique est impérative pour assurer une identification précise des agents pathogènes et faciliter la sélection rationnelle de l'antibiothérapie.

Les milieux utilisés dans les systèmes automatisés d'hémocultures sont enrichis par rapport aux milieux solides conventionnels, tels que la gélose au sang de mouton à 5%, la gélose de MacConkey et la gélose EMB, et sont spécifiquement conçus pour améliorer la récupération microbienne. De plus, les périodes d'incubation plus longues utilisées dans ces systèmes peuvent encore améliorer la détection des agents pathogènes. Bien que les systèmes d'hémoculture soient couramment utilisés pour détecter les micro-organismes dans les échantillons sanguins prélevés dans les veines périphériques de patients suspectés d'infections sanguines, il n'existe actuellement aucun protocole standardisé pour l'ensemencement d'échantillons cliniques non sanguins dans les flacons d'hémoculture.