Método de Amostragem Percutânea de Feridas com Análise em Hemocultura (PERKA-B)

As infeções de feridas representam um grande problema de saúde pública global, tanto do ponto de vista clínico, como epidemiológico e económico. Embora a incidência de infeções do local cirúrgico varie consoante a região, a taxa global é estimada em aproximadamente 2-3% (1). As feridas crónicas, como úlceras do pé diabético, úlceras venosas e úlceras de pressão, constituem um fardo igualmente significativo, com a sua prevalência a aumentar de forma constante em todo o mundo. Estimativas recentes indicam que as despesas globais relacionadas com feridas e infeções de feridas atingiram 148 mil milhões de dólares americanos (2). Uma proporção substancial destes custos é atribuível a hospitalizações prolongadas e à terapia antibiótica.

O uso racional de antibióticos nas infeções de feridas baseia-se principalmente na identificação do agente patogénico causador e na determinação do seu perfil de suscetibilidade antimicrobiana através do exame microbiológico de espécimes clínicos apropriados. Uma vez que as amostras recolhidas superficialmente apresentam um elevado risco de contaminação, a biópsia de tecido profundo ou as amostras aspiradas são geralmente consideradas mais fiáveis do que as amostras recolhidas por zaragatoa (3, 4). Na prática clínica de microbiologia de rotina, o exame padrão de espécimes de feridas envolve a inoculação em ágar de sangue de carneiro a 5% em combinação com ágar MacConkey ou ágar eosina azul de metileno (EMB). Estes meios são incubados a 35°C durante 24 horas e posteriormente avaliados. Se não for observado crescimento, a incubação é prolongada por mais 24 horas, e as culturas sem crescimento após 48 horas são reportadas como negativas. Quando é detetado crescimento, procede-se à identificação adicional dos isolados.

Apesar da recolha meticulosa de espécimes, uma proporção substancial de amostras de feridas continua a produzir resultados de cultura negativos. Investigações anteriores documentaram taxas de cultura negativa de aproximadamente 12% nas infeções do pé diabético (5), 19% nas infeções de feridas crónicas e 10-15% nas infeções do local cirúrgico (6, 7). Nestas circunstâncias, os clínicos são frequentemente obrigados a iniciar terapia antimicrobiana empírica quando as análises microbiológicas não conseguem identificar um agente patogénico causador, apesar de fortes evidências clínicas de infeção. Esta abordagem pode levar à administração injustificada de antibióticos ou à dependência de agentes de largo espectro, aumentando assim o risco de resultados adversos para o doente e contribuindo para o aumento das despesas com os cuidados de saúde. Consequentemente, o aperfeiçoamento das técnicas de diagnóstico microbiológico é imperativo para garantir a identificação precisa do agente patogénico e para facilitar a seleção racional da terapia antimicrobiana.

Os meios utilizados nos sistemas automatizados de hemoculturas são enriquecidos em comparação com os meios sólidos convencionais, como o ágar de sangue de carneiro a 5%, o ágar MacConkey e o ágar EMB, e são especificamente concebidos para melhorar a recuperação microbiana. Além disso, os períodos de incubação mais longos utilizados nestes sistemas podem melhorar ainda mais a deteção de agentes patogénicos. Embora os sistemas de hemoculturas sejam rotineiramente utilizados para detetar microrganismos em amostras de sangue obtidas a partir de veias periféricas de doentes com suspeita de infeções da corrente sanguínea, atualmente não existe um protocolo padronizado para a inoculação de espécimes clínicos não sanguíneos em frascos de hemocultura.