Percutan sårprøvetaking med analyse i blodkultur (PERKA-B) metode

Sårinfeksjoner utgjør et betydelig globalt folkehelseproblem fra kliniske, epidemiologiske og økonomiske perspektiver. Selv om forekomsten av kirurgiske stedinfeksjoner varierer etter region, anslås den globale raten til å være omtrent 2-3 % (1). Kroniske sår, som diabetiske fotulcer, venøse ulcer og trykksår, utgjør en tilsvarende betydelig byrde, med en jevn økning i forekomsten på verdensbasis. Nylige estimater indikerer at globale utgifter knyttet til sår og sårinfeksjoner har nådd 148 milliarder amerikanske dollar (2). En betydelig andel av disse kostnadene kan tilskrives forlenget innleggelse og antibiotikabehandling.

Rasjonell antibiotikabruk ved sårinfeksjoner er primært avhengig av identifisering av den årsaksskyldende patogenen og bestemmelse av dens antimikrobielle følsomhetsprofil gjennom mikrobiologisk undersøkelse av passende kliniske prøver. Fordi overfladisk innsamlede prøver har høy risiko for forurensning, anses dyptvevbiopsi eller aspiratprøver generelt som mer pålitelige enn viskeprøver (3, 4). I rutinemessig klinisk mikrobiologisk praksis innebærer standardundersøkelse av sårprøver inokulering på 5 % saueblodagar i kombinasjon med MacConkey eller eosin metylenblå (EMB) agar. Disse mediene inkuberes ved 35°C i 24 timer og evalueres deretter. Hvis ingen vekst observeres, forlenges inkubasjonen med ytterligere 24 timer, og kulturer uten vekst etter 48 timer rapporteres som negative. Når vekst påvises, utføres videre identifisering av isolatene.

Til tross for omhyggelig prøveinnsamling, gir en betydelig andel av sårprøver fortsatt negative kulturresultater. Tidligere undersøkelser har dokumentert kulturnegative rater på omtrent 12 % ved diabetiske fotinfeksjoner (5), 19 % ved kroniske sårinfeksjoner og 10-15 % ved kirurgiske stedinfeksjoner (6, 7). I slike tilfeller er klinikere ofte nødt til å initiere empirisk antimikrobiell terapi når mikrobiologiske analyser ikke klarer å identifisere en årsaksskyldende patogen, til tross for sterk klinisk evidens for infeksjon. Denne tilnærmingen kan føre til uforsvarlig antibiotikaadministrering eller avhengighet av bredspektret midler, noe som øker risikoen for ugunstige pasientutfall og bidrar til økte helseutgifter. Følgelig er forbedring av mikrobiologiske diagnostiske teknikker avgjørende for å sikre nøyaktig patogenidentifisering og for å legge til rette for rasjonell valg av antimikrobiell terapi.

Medier brukt i automatiserte blodkultursystemer er beriket sammenlignet med konvensjonelle faste medier, som 5 % saueblodagar, MacConkey agar og EMB agar, og er spesielt utformet for å forbedre mikrobiel gjenvinning. I tillegg kan de lengre inkubasjonsperiodene som brukes i disse systemene ytterligere forbedre patogendeteksjon. Selv om blodkultursystemer rutinemessig brukes til å påvise mikroorganismer i blodprøver hentet fra perifere vener hos pasienter med mistenkt blodstrømsinfeksjon, er det for tiden ingen standardisert protokoll for inokulering av ikke-blod kliniske prøver i blodkulturflasker.