Percutánní odběr vzorku rány s analýzou v krevní kultuře (PERKA-B) metoda

Infekce ran představují závažný globální problém veřejného zdraví z klinického, epidemiologického i ekonomického hlediska. Přestože incidence infekcí operačních ran se liší podle regionu, celosvětová míra se odhaduje přibližně na 2–3 % (1). Chronické rány, jako jsou diabetické vředy na nohou, žilní vředy a dekubity, představují podobně významnou zátěž a jejich prevalence celosvětově stále roste. Nedávné odhady naznačují, že celosvětové výdaje spojené s ranami a infekcemi ran dosáhly 148 miliard amerických dolarů (2). Podstatná část těchto nákladů je přičítána prodlouženým hospitalizacím a antibiotické léčbě.

Racionální použití antibiotik u infekcí ran závisí především na identifikaci původce a stanovení jeho profilu citlivosti na antimikrobiální látky pomocí mikrobiologického vyšetření vhodného klinického materiálu. Vzhledem k vysokému riziku kontaminace povrchově odebraných vzorků se obecně za spolehlivější než stěrové vzorky považují vzorky z hluboké biopsie tkáně nebo aspirace (3, 4). V běžné klinicko-mikrobiologické praxi zahrnuje standardní vyšetření vzorků z ran očkování na 5% krevní agar s ovčí krví v kombinaci s MacConkeyho nebo eozin methylenovým modrým (EMB) agarem. Tyto půdy se inkubují při 35 °C po dobu 24 hodin a následně se vyhodnotí. Pokud není pozorován růst, inkubace se prodlouží o dalších 24 hodin a kultury bez růstu po 48 hodinách jsou hlášeny jako negativní. Při zjištění růstu se provede další identifikace izolátů.

Navzdory pečlivému odběru vzorků zůstává u značné části vzorků z ran výsledek kultivace negativní. Předchozí studie dokumentovaly míru negativních kultivací přibližně 12 % u diabetických infekcí nohou (5), 19 % u infekcí chronických ran a 10–15 % u infekcí operačních ran (6, 7). Za takových okolností jsou klinici často nuceni zahájit empirickou antimikrobiální léčbu, když mikrobiologické analýzy nedokážou identifikovat původce, přestože existují silné klinické důkazy infekce. Tento přístup může vést k neodůvodněnému podávání antibiotik nebo k používání širokospektrých látek, čímž se zvyšuje riziko nepříznivých výsledků pro pacienta a přispívá se ke zvýšení nákladů na zdravotní péči. V důsledku toho je nezbytné zdokonalit mikrobiologické diagnostické techniky, aby byla zajištěna přesná identifikace patogenů a usnadněn racionální výběr antimikrobiální léčby.

Půdy používané v automatizovaných systémech pro kultivaci krve jsou ve srovnání s konvenčními pevnými půdami, jako je 5% krevní agar s ovčí krví, MacConkeyho agar a EMB agar, obohacené a jsou speciálně navrženy ke zlepšení růstu mikrobů. Kromě toho mohou delší inkubační doby používané v těchto systémech dále zlepšit detekci patogenů. Ačkoli se systémy pro kultivaci krve běžně používají k detekci mikroorganismů ve vzorcích krve odebraných z periferních žil pacientů s podezřením na infekce krevního řečiště, v současné době neexistuje standardizovaný protokol pro očkování ne-krevních klinických vzorků do lahviček pro kultivaci krve.