Metodo di Campionamento Percutaneo delle Ferite con Analisi in Emocoltura (PERKA-B)

Le infezioni delle ferite rappresentano un importante problema di salute pubblica globale dal punto di vista clinico, epidemiologico ed economico. Sebbene l'incidenza delle infezioni del sito chirurgico vari a seconda della regione, il tasso globale è stimato essere approssimativamente del 2-3% (1). Le ferite croniche, come le ulcere del piede diabetico, le ulcere venose e le ulcere da pressione, costituiscono un carico altrettanto significativo, con la loro prevalenza in costante aumento in tutto il mondo. Stime recenti indicano che le spese globali relative alle ferite e alle infezioni delle ferite hanno raggiunto 148 miliardi di dollari USA (2). Una parte sostanziale di questi costi è attribuibile a ricoveri ospedalieri prolungati e alla terapia antibiotica.

L'uso razionale degli antibiotici nelle infezioni delle ferite si basa principalmente sull'identificazione del patogeno causale e sulla determinazione del suo profilo di sensibilità antimicrobica attraverso l'esame microbiologico di campioni clinici appropriati. Poiché i campioni raccolti superficialmente comportano un elevato rischio di contaminazione, la biopsia tissutale profonda o i campioni di aspirato sono generalmente considerati più affidabili dei campioni prelevati con tampone (3, 4). Nella pratica clinica microbiologica di routine, l'esame standard dei campioni di ferita prevede l'inoculazione su agar sangue di pecora al 5% in combinazione con agar MacConkey o agar eosina blu di metilene (EMB). Questi terreni vengono incubati a 35°C per 24 ore e successivamente valutati. Se non si osserva crescita, l'incubazione viene prolungata per ulteriori 24 ore e le colture senza crescita dopo 48 ore vengono segnalate come negative. Quando viene rilevata crescita, viene effettuata un'ulteriore identificazione degli isolati.

Nonostante un'attenta raccolta dei campioni, una parte sostanziale dei campioni di ferita continua a dare risultati di coltura negativi. Indagini precedenti hanno documentato tassi di coltura negativa di circa il 12% nelle infezioni del piede diabetico (5), del 19% nelle infezioni delle ferite croniche e del 10-15% nelle infezioni del sito chirurgico (6, 7). In tali circostanze, i clinici sono spesso costretti a iniziare una terapia antimicrobica empirica quando le analisi microbiologiche non riescono a identificare un patogeno causale, nonostante forti evidenze cliniche di infezione. Questo approccio può portare a una somministrazione ingiustificata di antibiotici o al ricorso ad agenti ad ampio spettro, aumentando così il rischio di esiti avversi per il paziente e contribuendo all'aumento delle spese sanitarie. Di conseguenza, il perfezionamento delle tecniche diagnostiche microbiologiche è imperativo per garantire un'accurata identificazione del patogeno e per facilitare la selezione razionale della terapia antimicrobica.

I terreni utilizzati nei sistemi automatizzati di emocoltura sono arricchiti rispetto ai terreni solidi convenzionali, come l'agar sangue di pecora al 5%, l'agar MacConkey e l'agar EMB, e sono specificamente progettati per migliorare il recupero microbico. Inoltre, i periodi di incubazione più lunghi utilizzati in questi sistemi possono ulteriormente migliorare il rilevamento dei patogeni. Sebbene i sistemi di emocoltura siano utilizzati di routine per rilevare microrganismi in campioni di sangue ottenuti dalle vene periferiche di pazienti con sospette infezioni del flusso sanguigno, attualmente non esiste un protocollo standardizzato per l'inoculazione di campioni clinici non ematici nelle bottiglie di emocoltura.