Percutan Wundprøvetagning med Analyse i Blodkultur (PERKA-B) Metode

Sårinfektioner udgør et stort globalt folkesundhedsproblem ud fra kliniske, epidemiologiske og økonomiske perspektiver. Selvom forekomsten af operationsstedsinfektioner varierer efter region, anslås den globale rate at være cirka 2-3% (1). Kroniske sår, såsom diabetiske fodsår, venøse sår og tryksår, udgør en tilsvarende betydelig byrde, og deres forekomst stiger jævnt over hele verden. Nylige estimater viser, at de globale udgifter relateret til sår og sårinfektioner har nået 148 milliarder amerikanske dollars (2). En væsentlig del af disse omkostninger skyldes forlængede hospitalsindlæggelser og antibiotikabehandling.

Rationel antibiotikabrug ved sårinfektioner afhænger primært af identifikation af den årsagssættende patogen og bestemmelse af dens antimikrobielle følsomhedsprofil gennem mikrobiologisk undersøgelse af passende kliniske prøver. Fordi overfladisk indsamlede prøver bærer en høj risiko for kontaminering, betragtes dyb vævsbiopsi eller aspiratprøver generelt som mere pålidelige end svabberprøver (3, 4). I rutinemæssig klinisk mikrobiologisk praksis involverer standardundersøgelse af sårprøver inokulation på 5% fåreblodagar i kombination med MacConkey- eller eosinmetylenblå (EMB)-agar. Disse medier inkuberes ved 35°C i 24 timer og evalueres efterfølgende. Hvis der ikke observeres vækst, forlænges inkubationen med yderligere 24 timer, og kulturer uden vækst efter 48 timer rapporteres som negative. Når der detekteres vækst, udføres yderligere identifikation af isolaterne.

På trods af omhyggelig prøveindsamling giver en væsentlig andel af sårprøver fortsat negative kulturresultater. Tidligere undersøgelser har dokumenteret kulturnegative rater på cirka 12% ved diabetiske fodinficeringer (5), 19% ved kroniske sårinfektioner og 10-15% ved operationsstedsinfektioner (6, 7). I sådanne tilfælde er klinikere ofte forpligtede til at indlede empirisk antimikrobiel behandling, når mikrobiologiske analyser ikke identificerer en årsagssættende patogen, på trods af stærk klinisk evidens for infektion. Denne tilgang kan føre til uberettiget antibiotikagivning eller afhængighed af bredspektrede midler, hvilket øger risikoen for uønskede patientudfald og bidrager til forhøjede sundhedsudgifter. Derfor er forbedring af mikrobiologiske diagnostiske teknikker afgørende for at sikre nøjagtig patogenidentifikation og lette rationel udvælgelse af antimikrobiel behandling.

Medier brugt i automatiserede blodkultursystemer er berigede sammenlignet med konventionelle faste medier, såsom 5% fåreblodagar, MacConkey-agar og EMB-agar, og er specifikt designet til at forbedre mikrobiel genvinding. Derudover kan de længere inkubationsperioder, der anvendes i disse systemer, yderligere forbedre patogendetektion. Selvom blodkultursystemer rutinemæssigt anvendes til at detektere mikroorganismer i blodprøver indsamlet fra perifere vener hos patienter med mistænkte blodbaninfektioner, er der i øjeblikket ingen standardiseret protokol for inokulation af ikke-blod kliniske prøver i blodkulturflasker.