Percutane wondbemonstering met analyse in bloedkweek (PERKA-B) methode

Wondinfecties vormen een groot wereldwijd volksgezondheidsprobleem vanuit klinisch, epidemiologisch en economisch perspectief. Hoewel de incidentie van wondinfecties na een operatie per regio verschilt, wordt het wereldwijde percentage geschat op ongeveer 2-3% (1). Chronische wonden, zoals diabetische voetzweren, veneuze zweren en decubitus, vormen een vergelijkbare significante last, waarbij hun prevalentie wereldwijd gestaag toeneemt. Recente schattingen geven aan dat wereldwijde uitgaven gerelateerd aan wonden en wondinfecties 148 miljard Amerikaanse dollar hebben bereikt (2). Een aanzienlijk deel van deze kosten is toe te schrijven aan langdurige ziekenhuisopnames en antibioticatherapie.

Rationeel antibioticagebruik bij wondinfecties is voornamelijk gebaseerd op de identificatie van de verwekkende ziekteverwekker en de bepaling van het antimicrobiële gevoeligheidsprofiel door middel van microbiologisch onderzoek van geschikte klinische monsters. Omdat oppervlakkig verzamelde monsters een hoog risico op contaminatie met zich meebrengen, worden diepe weefselbiopten of aspiraatmonsters over het algemeen als betrouwbaarder beschouwd dan uitstrijkmonsters (3, 4). In de routinematige klinische microbiologiepraktijk omvat standaardonderzoek van wondmonsters inoculatie op 5% schapenbloedagar in combinatie met MacConkey-agar of eosine-methyleenblauw (EMB)-agar. Deze media worden geïncubeerd bij 35°C gedurende 24 uur en vervolgens geëvalueerd. Als er geen groei wordt waargenomen, wordt de incubatie verlengd met nog eens 24 uur, en culturen zonder groei na 48 uur worden gerapporteerd als negatief. Wanneer groei wordt gedetecteerd, wordt verdere identificatie van de isolaten uitgevoerd.

Ondanks zorgvuldige monstername blijft een aanzienlijk deel van de wondmonsters negatieve cultuurresultaten opleveren. Eerdere onderzoeken hebben cultuurnegatieve percentages gedocumenteerd van ongeveer 12% bij diabetische voetinfecties (5), 19% bij chronische wondinfecties en 10-15% bij wondinfecties na een operatie (6, 7). In dergelijke omstandigheden zijn clinici vaak verplicht om empirische antimicrobiële therapie te starten wanneer microbiologische analyses geen verwekkende ziekteverwekker identificeren, ondanks sterke klinische aanwijzingen voor infectie. Deze aanpak kan leiden tot ongerechtvaardigde toediening van antibiotica of afhankelijkheid van breedspectrummiddelen, waardoor het risico op nadelige patiëntuitkomsten toeneemt en bijdraagt aan verhoogde gezondheidszorguitgaven. Bijgevolg is verfijning van microbiologische diagnostische technieken noodzakelijk om nauwkeurige ziekteverwekkeridentificatie te garanderen en om de rationele selectie van antimicrobiële therapie te vergemakkelijken.

Media die in geautomatiseerde bloedkweeksystemen worden gebruikt, zijn verrijkt in vergelijking met conventionele vaste media, zoals 5% schapenbloedagar, MacConkey-agar en EMB-agar, en zijn specifiek ontworpen om microbiële terugwinning te verbeteren. Bovendien kunnen de langere incubatieperioden die in deze systemen worden gebruikt, de detectie van ziekteverwekkers verder verbeteren. Hoewel bloedkweeksystemen routinematig worden gebruikt om micro-organismen te detecteren in bloedmonsters die zijn verkregen uit perifere aderen van patiënten met vermoedelijke bloedbaaninfecties, is er momenteel geen gestandaardiseerd protocol voor de inoculatie van niet-bloed klinische monsters in bloedkweekflessen.