Percutan sårprovtagning med analys i blododling (PERKA-B)-metoden

Sårinfektioner utgör ett stort globalt folkhälsoproblem ur kliniska, epidemiologiska och ekonomiska perspektiv. Även om förekomsten av operationssårsinfektioner varierar mellan regioner, uppskattas den globala frekvensen till cirka 2–3 % (1). Kroniska sår, såsom diabetiska fotsår, venösa sår och trycksår, utgör en liknande betydande börda, och deras förekomst ökar stadigt över hela världen. Nya uppskattningar indikerar att de globala utgifterna relaterade till sår och sårinfektioner har nått 148 miljarder US-dollar (2). En betydande del av dessa kostnader hänförs till förlängda sjukhusvistelser och antibiotikabehandling.

Rationell användning av antibiotika vid sårinfektioner bygger främst på identifiering av den orsakande patogenen och bestämning av dess antimikrobiella känslighetsprofil genom mikrobiologisk undersökning av lämpliga kliniska prover. Eftersom ytligt insamlade prover bär en hög risk för kontamination, anses djupvävnadsbiopsi eller aspiratprover generellt vara mer tillförlitliga än svabbprover (3, 4). I rutinmässig klinisk mikrobiologisk praktik innebär standardundersökning av sårprover inokulering på 5 % fårägarblodagar i kombination med MacConkey-agar eller eosinfärgad metylenblåagar (EMB-agar). Dessa medier inkuberas vid 35 °C i 24 timmar och utvärderas därefter. Om ingen tillväxt observeras förlängs inkuberingen med ytterligare 24 timmar, och odlingar utan tillväxt efter 48 timmar rapporteras som negativa. När tillväxt upptäcks utförs vidare identifiering av isolaten.

Trots omsorgsfull provinsamling fortsätter en betydande del av sårproverna att ge negativa odlingsresultat. Tidigare undersökningar har dokumenterat kulturnegativa frekvenser på cirka 12 % vid diabetiska fotinfektioner (5), 19 % vid kroniska sårinfektioner och 10–15 % vid operationssårsinfektioner (6, 7). I sådana situationer är kliniker ofta tvungna att inleda empirisk antimikrobiell behandling när mikrobiologiska analyser inte kan identifiera en orsakande patogen, trots starka kliniska tecken på infektion. Denna metod kan leda till omotiverad antibiotikabehandling eller förlita sig på bredspektrumagenter, vilket ökar risken för ogynnsamma patientutfall och bidrar till ökade sjukvårdskostnader. Följaktligen är förfining av mikrobiologiska diagnostiska tekniker nödvändig för att säkerställa korrekt patogenidentifiering och underlätta rationellt val av antimikrobiell behandling.

Medier som används i automatiserade blododlingssystem är berikade jämfört med konventionella fasta medier, såsom 5 % fårägarblodagar, MacConkey-agar och EMB-agar, och är specifikt utformade för att förbättra mikrobiell återvinning. Dessutom kan de längre inkuberingsperioderna som används i dessa system ytterligare förbättra patogendetektering. Även om blododlingssystem rutinmässigt används för att detektera mikroorganismer i blodprover som erhållits från perifera vener hos patienter med misstänkt blodströmsinfektion, finns det för närvarande ingen standardiserad protokoll för inokulering av icke-blod kliniska prover i blododlingsflaskor.