Método de Muestreo Percutáneo de Heridas con Análisis en Hemocultivo (PERKA-B)

Las infecciones de heridas representan un importante problema de salud pública mundial desde perspectivas clínicas, epidemiológicas y económicas. Aunque la incidencia de infecciones del sitio quirúrgico varía según la región, se estima que la tasa global es de aproximadamente el 2-3% (1). Las heridas crónicas, como las úlceras del pie diabético, las úlceras venosas y las úlceras por presión, constituyen una carga igualmente significativa, con una prevalencia que aumenta constantemente en todo el mundo. Estimaciones recientes indican que los gastos globales relacionados con heridas e infecciones de heridas han alcanzado los 148 mil millones de dólares estadounidenses (2). Una proporción sustancial de estos costos es atribuible a hospitalizaciones prolongadas y terapia antibiótica.

El uso racional de antibióticos en infecciones de heridas se basa principalmente en la identificación del patógeno causante y la determinación de su perfil de susceptibilidad antimicrobiana mediante el examen microbiológico de muestras clínicas apropiadas. Debido a que las muestras recogidas superficialmente conllevan un alto riesgo de contaminación, la biopsia de tejido profundo o las muestras de aspirado generalmente se consideran más fiables que las muestras de hisopo (3, 4). En la práctica clínica microbiológica de rutina, el examen estándar de muestras de heridas implica la inoculación en agar sangre de carnero al 5% en combinación con agar MacConkey o agar eosina azul de metileno (EMB). Estos medios se incuban a 35°C durante 24 horas y posteriormente se evalúan. Si no se observa crecimiento, la incubación se extiende por 24 horas adicionales, y los cultivos sin crecimiento después de 48 horas se reportan como negativos. Cuando se detecta crecimiento, se realiza una identificación adicional de los aislados.

A pesar de una recolección meticulosa de muestras, una proporción sustancial de muestras de heridas continúa arrojando resultados de cultivo negativos. Investigaciones previas han documentado tasas de cultivo negativo de aproximadamente el 12% en infecciones del pie diabético (5), el 19% en infecciones de heridas crónicas y el 10-15% en infecciones del sitio quirúrgico (6, 7). En tales circunstancias, los médicos a menudo se ven obligados a iniciar terapia antimicrobiana empírica cuando los análisis microbiológicos no logran identificar un patógeno causante, a pesar de una fuerte evidencia clínica de infección. Este enfoque puede conducir a la administración injustificada de antibióticos o a la dependencia de agentes de amplio espectro, aumentando así el riesgo de resultados adversos para el paciente y contribuyendo a mayores gastos sanitarios. En consecuencia, el refinamiento de las técnicas de diagnóstico microbiológico es imperativo para garantizar una identificación precisa del patógeno y facilitar la selección racional de la terapia antimicrobiana.

Los medios utilizados en los sistemas automatizados de hemocultivo están enriquecidos en comparación con los medios sólidos convencionales, como el agar sangre de carnero al 5%, el agar MacConkey y el agar EMB, y están específicamente diseñados para mejorar la recuperación microbiana. Además, los períodos de incubación más largos utilizados en estos sistemas pueden mejorar aún más la detección de patógenos. Aunque los sistemas de hemocultivo se utilizan rutinariamente para detectar microorganismos en muestras de sangre obtenidas de venas periféricas de pacientes con sospecha de infecciones del torrente sanguíneo, actualmente no existe un protocolo estandarizado para la inoculación de muestras clínicas no sanguíneas en botellas de hemocultivo.