- ICH GCP
- 미국 임상 시험 레지스트리
- 임상시험 NCT07325786
혈액 배양 검사와 함께 시행하는 경피적 상처 채취(PERKA-B) 방법
감염된 상처 표본 검사에 대한 새로운 방법: 혈액 배양 분석을 통한 경피적 상처 채취(PERKA-B) 방법
연구 개요
상세 설명
상처 감염은 임상적, 역학적, 경제적 관점에서 주요한 세계적 공중보건 문제를 나타냅니다. 수술 부위 감염의 발생률은 지역에 따라 다르지만, 세계적인 비율은 약 2-3%로 추정됩니다(1). 당뇨병성 족부 궤양, 정맥성 궤양, 욕창과 같은 만성 상처는 유사하게 상당한 부담을 구성하며, 그 유병률이 전 세계적으로 꾸준히 증가하고 있습니다. 최근 추정치는 상처 및 상처 감염과 관련된 세계적 지출이 1480억 미국 달러에 달한다고 나타냅니다(2). 이 비용의 상당 부분은 장기 입원 및 항생제 치료에 기인합니다.
상처 감염에서 합리적인 항생제 사용은 주로 적절한 임상 검체의 미생물학적 검사를 통해 원인 병원체의 확인 및 항균제 감수성 프로파일의 결정에 의존합니다. 표면적으로 채취된 샘플은 오염 위험이 높기 때문에, 깊은 조직 생검 또는 흡인 검체가 일반적으로 면봉 샘플보다 더 신뢰할 수 있는 것으로 간주됩니다(3, 4). 일상적인 임상 미생물학 실습에서 상처 검체의 표준 검사는 MacConkey 또는 에오신 메틸렌 블루(EMB) 한천 배지와 결합된 5% 양 혈액 한천 배지에 접종하는 것을 포함합니다. 이러한 배지는 35°C에서 24시간 동안 배양된 후 평가됩니다. 생장이 관찰되지 않으면 배양을 추가로 24시간 연장하며, 48시간 후에도 생장이 없는 배양은 음성으로 보고됩니다. 생장이 감지되면 분리주의 추가 동정이 수행됩니다.
신중한 검체 채집에도 불구하고, 상처 샘플의 상당 부분은 계속해서 음성 배양 결과를 보입니다. 이전 연구에서 당뇨병성 족부 감염에서 약 12%(5), 만성 상처 감염에서 19%, 수술 부위 감염에서 10-15%의 배양 음성 비율이 문서화되었습니다(6, 7). 이러한 상황에서 임상의는 강력한 임상적 감염 증거에도 불구하고 미생물학적 분석이 원인 병원체를 확인하지 못할 때 경험적 항균제 치료를 시작해야 하는 경우가 많습니다. 이 접근법은 부당한 항생제 투여 또는 광범위 항생제 의존으로 이어질 수 있어, 환자 결과의 악화 위험을 증가시키고 의료비 지출 증가에 기여할 수 있습니다. 결과적으로, 정확한 병원체 확인을 보장하고 항균제 치료의 합리적 선택을 용이하게 하기 위해 미생물학적 진단 기술의 개선이 필수적입니다.
자동 혈액 배양 시스템에서 사용되는 배지는 5% 양 혈액 한천 배지, MacConkey 한천 배지, EMB 한천 배지와 같은 기존의 고체 배지에 비해 농축되어 있으며, 미생물 회복을 향상시키도록 특별히 설계되었습니다. 또한, 이러한 시스템에서 사용되는 더 긴 배양 기간은 병원체 검출을 더욱 개선할 수 있습니다. 혈액 배양 시스템은 혈류 감염이 의심되는 환자의 말초 정맥에서 얻은 혈액 샘플의 미생물 검출에 일상적으로 사용되지만, 현재 비혈액 임상 검체를 혈액 배양 병에 접종하기 위한 표준화된 프로토콜은 없습니다.
연구 유형
등록 (추정된)
단계
- 해당 없음
연락처 및 위치
연구 장소
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Istanbul, 터키 (Türkiye), 34480
- Başakşehir Çam and Sakura City Hospital, Department of Plastic, Reconstructive and Aesthetic Surgery
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참여기준
자격 기준
공부할 수 있는 나이
- 성인
- 고령자
건강한 자원 봉사자를 받아들입니다
설명
포함 기준:
- 감염된 상처를 가진 환자
제외 기준:
- 18세 미만
공부 계획
연구는 어떻게 설계됩니까?
디자인 세부사항
- 주 목적: 특수 증상
- 할당: 무작위화되지 않음
- 중재 모델: 병렬 할당
- 마스킹: 없음(오픈 라벨)
무기와 개입
참가자 그룹 / 팔 |
개입 / 치료 |
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실험적: 혈액 배양 분석을 통한 경피적 상처 샘플링(PERKA-B) 방법
혈액 배양 분석을 통한 경피적 상처 샘플링(PERKA-B) 방법: 조직 샘플은 5mL의 멸균 식염수에 균질화하고 2800-3000rpm으로 2분 동안 진탕했습니다. 일부 액을 표준 배양을 위해 채취한 후, 나머지 현탁액은 5mL 멸균 주사기를 사용하여 무균적으로 흡입하여 혈액 배양 병에 접종했습니다. 접종된 병은 자동 혈액 배양 시스템에서 배양되었으며, 성장 신호를 지속적으로 모니터링했습니다. 최대 배양 기간은 5일로 설정되었으며, 이 기간이 끝날 때까지 성장 신호가 없는 샘플은 음성으로 간주되었습니다. 미생물 성장이 감지되면, 혈액 배양 병에서 샘플을 채취하여 5% 양 혈액 한천 및 MacConkey 한천 배지에 재배양하고 35°C에서 호기적으로 배양했습니다. 배양 배지는 24시간 후 미생물 성장을 관찰했습니다. 성장이 관찰되지 않으면 배양을 계속하고 접종 후 48시간에 배지를 다시 검사했습니다. |
무균 조건에서 괴사 조직을 제거한 후, 수술 기법을 사용하여 감염 부위에서 적절한 조직 표본을 채취하여 무균 일반 튜브에 넣었습니다.
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실험적: 표준 미생물 분석
조직 표본이 들어 있는 멸균 튜브에 멸균 식염수 5mL를 첨가했습니다. 튜브를 분당 2800-3000회전(rpm)으로 설정된 보텍스 믹서를 사용하여 2분간 혼합했습니다. 얻어진 액체 현탁액에서 멸균 루프를 사용하여 무균 조건에서 5% 양 혈액 한천과 MacConkey 한천에 0.05mL를 접종했습니다. 접종된 5% 양 혈액 한천과 MacConkey 한천 배지는 35°C에서 배양했습니다. 5% 양 혈액 한천과 MacConkey 한천에 접종된 배양 접시는 24시간 후에 미생물 성장을 관찰했습니다. 성장이 관찰되지 않으면 접종 후 48시간에 접시를 다시 배양하고 재평가했습니다. |
무균 조건에서 괴사 조직을 제거한 후, 수술 기법을 사용하여 감염 부위에서 적절한 조직 표본을 채취하여 무균 일반 튜브에 넣었습니다.
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연구는 무엇을 측정합니까?
주요 결과 측정
결과 측정 |
측정값 설명 |
기간 |
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기존 배양법 대 PERKA-B 방법
기간: 3개월
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이 연구에서는 혈액 배양의 분류 성능을 기존 배양 대비 양성 및 음성 결과 측면에서 평가하기 위해 진단 성능 지표를 계산할 것입니다.
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3개월
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공동 작업자 및 조사자
간행물 및 유용한 링크
일반 간행물
- Senneville E, Albalawi Z, van Asten SA, Abbas ZG, Allison G, Aragon-Sanchez J, Embil JM, Lavery LA, Alhasan M, Oz O, Uckay I, Urbancic-Rovan V, Xu ZR, Peters EJG. IWGDF/IDSA guidelines on the diagnosis and treatment of diabetes-related foot infections (IWGDF/IDSA 2023). Diabetes Metab Res Rev. 2024 Mar;40(3):e3687. doi: 10.1002/dmrr.3687. Epub 2023 Oct 1.
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