Denne siden ble automatisk oversatt og nøyaktigheten av oversettelsen er ikke garantert. Vennligst referer til engelsk versjon for en kildetekst.

Evaluering av M1- og M2-makrofager i endometriotisk vev hos kvinner berørt av endometriose på forskjellige stadier.

23. mars 2020 oppdatert av: Antonio Simone Laganà, University of Messina

Evaluering av Evaluere M1 og M2 makrofager i endometriotisk vev hos kvinner berørt av endometriose på forskjellige stadier.

Akkumulerende bevis tyder på at det peritoneale mikromiljøet til kvinner som er rammet av endometriose gjennomgår en rekke lokale inflammatorisk-reparative fenomener, med involvering av fastboende makrofager, og tiltrekning og rekruttering av perifere mononukleære celler (monocytter og lymfocytter) fra blodet inn i bukhulen. : under endometriose oppstår et sammenbrudd i endometrial og peritoneal homeostase forårsaket av cytokin-adressert celleproliferasjon og dysregulering av apoptose.

Det omkringliggende mikromiljøet kan adressere makrofagplastisiteten mot en forbigående og reversibel polarisering. Disse polariserte fenotypene gjenspeiler den proinflammatoriske eller antiinflammatoriske statusen og kan endre seg over tid. De kan funksjonelt klassifiseres i to hovedpopulasjoner: "klassisk aktiverte" makrofager (M1) og "alternativt aktiverte" makrofager (M2).

Tatt i betraktning at publiserte data så langt fortsatt ikke er robuste nok til å trekke sikre konklusjoner, vil målet med dette forskningsprosjektet være å evaluere M1 og M2 makrofager i endometriotisk vev fra kvinner rammet av endometriose i ulike stadier.

Studieoversikt

Detaljert beskrivelse

Bakgrunn og begrunnelse: Endometriose er en østrogenavhengig sykdom definert av ektopisk tilstedeværelse og vekst av funksjonelt endometrievev, kjertler og stroma, utenfor livmorhulen (Kavoussi et al, 2016). Etiopatogenesen av endometriose er fortsatt kontroversiell: immune, hormonelle, genetiske og epigenetiske faktorer kan alle være involvert, og flere teorier har blitt foreslått for å forklare det.

Sykdommen rammer 2-10 % av kvinner i reproduktiv alder og 50 % av de infertile (Dunselman et al, 2014) og kan forårsake bekkensmerter (Triolo et al, 2013; Butticè et al, 2013), unormale blødninger, infertilitet/sterilitet og følgelig viktige psykologiske problemer (Laganà et al, 2015). Endometriose er klassifisert avhengig av antall, størrelse og overfladisk og/eller dyp plassering av endometrieimplantater, plakk, endometriomer og/eller adhesjoner. Den mest brukte klassifiseringen av endometriose ble utviklet av American Society for Reproductive Medicine (Rock JA, 1995), selv om annen klassifisering kan brukes for dyp infiltrerende endometriose (Haas et al, 2011) eller for å korrelere endometriose og infertilitet (Adamson et al, 2010).

Som allment bevist (Donnez et al, 2016), er det generelt akseptert at moderat/alvorlig endometriose-relatert sterilitet skyldes mekaniske faktorer, nemlig forvrengning/subversjon av den vanlige bekkenanatomien. Tvert imot er faktorene bak infertilitet/subfertilitet knyttet til minimal/mild endometriose mindre tydelige. Til dags dato har likevel ingen av de antatte mekanismene uttømmende forklart infertiliteten relatert til endometriose, mens det er mulig at en slik sykdom er forårsaket av flere faktorer totalt, inkludert genetiske og epigenetiske modifikasjoner (Sofo et al, 2015; Maniglio et al, 2016).

Akkumulerende bevis (Laganà et al, 2013; Laganà et al, 2016) tyder på at det peritoneale mikromiljøet til kvinner som er rammet av endometriose gjennomgår en rekke lokale inflammatorisk-reparative fenomener, med involvering av fastboende makrofager, og tiltrekning og rekruttering av perifere mononukleære celler (monocytter og lymfocytter) fra blodet inn i bukhulen: under endometriose oppstår et sammenbrudd i endometrial og peritoneal homeostase forårsaket av cytokin-adressert celleproliferasjon (Pizzo et al, 2002) og dysregulering av apoptose (Sturlese et al, 2011; Salmeri11, 2011). et al, 2015).

Monocytter spiller en nøkkelrolle under adaptiv immunitet, siden de migrerer på steder med infeksjon eller betennelse, differensierer i makrofager og fungerer som antigenpresenterende celler (APC).

Siden deres første identifisering av fagocytose av Elie Metchnikoff i Messina (JAMA, 1968), etter å ha eksperimentert på larvene til sjøstjerner, har mange skritt fremover tillatt oss å ha en bred oversikt over makrofager bortsett fra deres rolle som fagocytiske celler.

Det omkringliggende mikromiljøet kan adressere makrofagplastisiteten mot en forbigående og reversibel polarisering. Disse polariserte fenotypene gjenspeiler den proinflammatoriske eller antiinflammatoriske statusen og kan endre seg over tid. De kan funksjonelt klassifiseres i to hovedpopulasjoner: "klassisk aktiverte" makrofager (M1) og "alternativt aktiverte" makrofager (M2) (Sica & Mantovani, 2012). Selv om det er allment akseptert at M1 og M2 representerer to terminaler av hele spekteret av makrofagaktivering (Liu et al, 2014), nyere data (Locati et al, 2013; Mantovani et al, 2013; Capobianco & Rovere-Querini, 2013) lov til å karakterisere disse to populasjonene som følger:

  • M1 makrofager: CD14+ CD68+ CCR7+ CD80+
  • M2 makrofager: CD14+ CD68+ CD163+ CD206+

Studiepopulasjon: Etterforskerne vil velge pasienter som er berørt av histologisk bekreftet endometriose (tilfeller) og av funksjonelle cyster på eggstokkene (kontroller), som skal gjennomgå laparoskopisk kirurgi. I samsvar med den reviderte American Society for Reproductive Medicine-klassifiseringen for endometriose (Rock JA, 1995), vil endometriotiske pasienter deles inn i 4 grupper: minimale, milde, moderate og alvorlige stadier av endometriose.

All den laparoskopiske prosedyren vil bli utført under den proliferative fasen av menstruasjonssyklusen. Etterforskerne vil ekskludere fra studien kvinner som er berørt av andre bekkenlidelser, kronisk sirkulasjonssykdom, autoimmun eller neoplastisk sykdom og som tok noen antiinflammatorisk eller hormonell eller immunmodulerende medisin i løpet av de foregående 6 månedene.

Preparering av vevsprøve og makrofagkarakterisering: Vevsseksjoner (endometriotisk vev for tilfeller, ovariefunksjonelle cyster for kontroller) vil bli hakket og inkubert i en enzymcocktail som inneholder sluttkonsentrasjoner på 3,4 mg/ml pankreatin, 0,1 mg/ml hyaluronidase og 1,6 mg/ml kollagenase I i Hank's Buffered Saline Solution (HBSS) inneholdende 2 mg/ml D-glukose ved 37°C i 2 timer. Etter fordøyelsen vil cellene bli spredt ved siling gjennom en 250 μm mesh-skjerm og vasket med HBSS. Vevsceller vil bli farget og fiksert for flowcytometrisk analyse. Før makrofagisolering vil døde celler bli fjernet fra kulturen ved å bruke settet for fjerning av døde celler. Cellelevedyktighet vil bli vurdert ved trypanblått eksklusjon.

For å vurdere overflateekspresjon av makrofagmarkører, vil vevsprøver farges for flowcytometri med fluorokrom-konjugerte monoklonale antistoffer mot CD14, CD68, CCR7 og CD80 for å identifisere M1, mens fluorokrom-konjugerte monoklonale antistoffer mot CD14, CD68, CD163 for å identifisere og CD200 M2.

Statistisk analyse: Forutsetningen om normalfordeling for kontinuerlige variabler vil bli testet med Kolmogorov-Smirnov-testen for god passform. Alle konklusjonsanalyser vil bli utført ved bruk av ikke-parametriske statistiske tester. Ikke-normalfordelte variabler mellom gruppene vil bli sammenlignet ved hjelp av Kruskal-Wallis-testen. Området for statistisk signifikans vil være P < 0,05. I tillegg vil etterforskerne bruke post hoc multiple sammenligningstester enten kontra kontroller eller mot hvert trinn for å analysere data.

Studietype

Observasjonsmessig

Registrering (Faktiske)

45

Kontakter og plasseringer

Denne delen inneholder kontaktinformasjon for de som utfører studien, og informasjon om hvor denne studien blir utført.

Studiesteder

      • Messina, Italia, 98122
        • University of Messina

Deltakelseskriterier

Forskere ser etter personer som passer til en bestemt beskrivelse, kalt kvalifikasjonskriterier. Noen eksempler på disse kriteriene er en persons generelle helsetilstand eller tidligere behandlinger.

Kvalifikasjonskriterier

Alder som er kvalifisert for studier

14 år til 31 år (Voksen)

Tar imot friske frivillige

Nei

Kjønn som er kvalifisert for studier

Hunn

Prøvetakingsmetode

Ikke-sannsynlighetsprøve

Studiepopulasjon

Pasienter i reproduktiv alder rammet av histologisk bekreftet endometriose (tilfeller) og av funksjonelle cyster på eggstokkene (kontroller), som skal gjennomgå laparoskopisk kirurgi.

Beskrivelse

Inklusjonskriterier:

  • Pasienter rammet av histologisk bekreftet endometriose (tilfeller)
  • Pasienter påvirket av ovariefunksjonscyster (kontroller)

Ekskluderingskriterier:

  • Andre bekkenlidelser (bortsett fra ovariefunksjonelle cyster)
  • Kroniske sirkulasjonsforstyrrelser
  • Autoimmune lidelser
  • Neoplastiske lidelser
  • Pasienter som ble behandlet med antiinflammatorisk eller hormonell eller immunmodulerende medisin i løpet av de foregående 6 månedene.

Studieplan

Denne delen gir detaljer om studieplanen, inkludert hvordan studien er utformet og hva studien måler.

Hvordan er studiet utformet?

Designdetaljer

  • Observasjonsmodeller: Case-Control
  • Tidsperspektiver: Potensielle

Kohorter og intervensjoner

Gruppe / Kohort
Intervensjon / Behandling
Endometriose
Pasienter rammet av endometriose (histologisk bekreftet) på ulike stadier, som skal gjennomgå laparoskopisk kirurgi.
For å vurdere overflateekspresjon av makrofagmarkører, vil vevsprøver farges for flowcytometri med fluorokrom-konjugerte monoklonale antistoffer mot CD14, CD68, CCR7 og CD80 for å identifisere M1, mens fluorokrom-konjugerte monoklonale antistoffer mot CD14, CD68, CD163 for å identifisere og CD200 M2.
Ovariefunksjonelle cyster
Pasienter som er rammet av funksjonelle cyster på eggstokkene, som skal gjennomgå laparoskopisk kirurgi.
For å vurdere overflateekspresjon av makrofagmarkører, vil vevsprøver farges for flowcytometri med fluorokrom-konjugerte monoklonale antistoffer mot CD14, CD68, CCR7 og CD80 for å identifisere M1, mens fluorokrom-konjugerte monoklonale antistoffer mot CD14, CD68, CD163 for å identifisere og CD200 M2.

Hva måler studien?

Primære resultatmål

Resultatmål
Tiltaksbeskrivelse
Tidsramme
Kvantifisering av M1 og M2 makrofager i endometriotisk vev for hvert stadium av endometriose.
Tidsramme: Dag 1
For å vurdere overflateekspresjon av makrofagmarkører, vil endometrievevsceller farges for flowcytometri med fluorokrom-konjugerte monoklonale antistoffer mot CD14, CD68, CCR7 og CD80 for å identifisere M1, mens fluorokrom-konjugerte monoklonale antistoffer mot CD14, CD68, CD20163 og identifisere M2.
Dag 1

Sekundære resultatmål

Resultatmål
Tiltaksbeskrivelse
Tidsramme
Korrelasjon mellom M1 og M2 makrofager i endometriotisk vev til tilstedeværelsen av endometriose-assosiert infertilitet.
Tidsramme: Dag 1
For å vurdere overflateekspresjon av makrofagmarkører, vil endometrievevsceller farges for flowcytometri med fluorokrom-konjugerte monoklonale antistoffer mot CD14, CD68, CCR7 og CD80 for å identifisere M1, mens fluorokrom-konjugerte monoklonale antistoffer mot CD14, CD68, CD20163 og identifisere M2. Kvinnelig infertilitet vil bli definert av unnlatelse av å oppnå en klinisk graviditet etter 12 måneder eller mer med regelmessig ubeskyttet samleie.
Dag 1
Korrelasjon mellom M1 og M2 makrofager i endometriotisk vev til tilstedeværelsen av endometriose-assosierte kroniske bekkensmerter.
Tidsramme: Dag 1
For å vurdere overflateekspresjon av makrofagmarkører, vil endometrievevsceller farges for flowcytometri med fluorokrom-konjugerte monoklonale antistoffer mot CD14, CD68, CCR7 og CD80 for å identifisere M1, mens fluorokrom-konjugerte monoklonale antistoffer mot CD14, CD68, CD20163 og identifisere M2. Kroniske bekkensmerter vil defineres som smerter som oppstår under navlen (navlen) som varer i minst seks måneder.
Dag 1

Samarbeidspartnere og etterforskere

Det er her du vil finne personer og organisasjoner som er involvert i denne studien.

Etterforskere

  • Hovedetterforsker: Antonio Simone Laganà, M.D., University of Messina

Publikasjoner og nyttige lenker

Den som er ansvarlig for å legge inn informasjon om studien leverer frivillig disse publikasjonene. Disse kan handle om alt relatert til studiet.

Generelle publikasjoner

Studierekorddatoer

Disse datoene sporer fremdriften for innsending av studieposter og sammendragsresultater til ClinicalTrials.gov. Studieposter og rapporterte resultater gjennomgås av National Library of Medicine (NLM) for å sikre at de oppfyller spesifikke kvalitetskontrollstandarder før de legges ut på det offentlige nettstedet.

Studer hoveddatoer

Studiestart (Faktiske)

1. desember 2016

Primær fullføring (Faktiske)

1. desember 2018

Studiet fullført (Faktiske)

1. desember 2019

Datoer for studieregistrering

Først innsendt

27. april 2017

Først innsendt som oppfylte QC-kriteriene

27. april 2017

Først lagt ut (Faktiske)

2. mai 2017

Oppdateringer av studieposter

Sist oppdatering lagt ut (Faktiske)

24. mars 2020

Siste oppdatering sendt inn som oppfylte QC-kriteriene

23. mars 2020

Sist bekreftet

1. mars 2020

Mer informasjon

Begreper knyttet til denne studien

Ytterligere relevante MeSH-vilkår

Andre studie-ID-numre

  • ENDOMAC

Plan for individuelle deltakerdata (IPD)

Planlegger du å dele individuelle deltakerdata (IPD)?

Ja

Legemiddel- og utstyrsinformasjon, studiedokumenter

Studerer et amerikansk FDA-regulert medikamentprodukt

Nei

Studerer et amerikansk FDA-regulert enhetsprodukt

Nei

Denne informasjonen ble hentet direkte fra nettstedet clinicaltrials.gov uten noen endringer. Hvis du har noen forespørsler om å endre, fjerne eller oppdatere studiedetaljene dine, vennligst kontakt register@clinicaltrials.gov. Så snart en endring er implementert på clinicaltrials.gov, vil denne også bli oppdatert automatisk på nettstedet vårt. .

Abonnere