- ICH GCP
- US Clinical Trials Registry
- Klinisk utprøving NCT04944095
Endring i antistoffnivåer etter SARS-CoV-2 (Covid-19) vaksinasjoner (Covid-19-Abs)
Serologisk testing (antistoffnivåer) med tid etter SARS-CoV-2 (Covid-19) vaksinasjoner hos beboere i sykepleie, utvidet omsorg og over 55 år
Studieoversikt
Status
Intervensjon / Behandling
Detaljert beskrivelse
Emner:
Denne studieprotokollen vil bli registrert hos ClinicalTrails.gov og godkjenning av en uavhengig etisk komité. Alle forsøkspersoner vil få detaljert skriftlig informasjon om forsøket, og vil bli pålagt å gi skriftlig samtykke til å delta i studien. Etterforskerne vil samle inn blodprøver fra beboere tilknyttet over 300 sykehjem, utvidede omsorgsfasiliteter og over 55 samfunn som har samtykket til å delta i studien ved baseline (når tilgjengelig), og 3, 6, 9 og 12 måneder etter -vaksinasjon med en av de tre godkjente SARS-CoV-2-vaksinene. Plasmaprøvene vil bli analysert av Southlake Diagnostics.
Studien vil omfatte opptil 10 000 mannlige og kvinnelige beboere på sykehjem, utvidede omsorgsfasiliteter og lokalsamfunn over 55, samt ansatte tilknyttet disse fasilitetene. Demografiske data om forsøkspersonene, inkludert karakteristika, og medisinske historier inkludert samtidige medisiner og sykdomstilstander/tilstander vil bli samlet inn.
Blodprøvesamling:
En standard operasjonsprosedyre (SOP) er utviklet av Southlake Diagnostics for å etablere en standardisert prosedyre for å etablere et trygt og passende sted og metode for å ta blodprøver fra mennesker. Denne SOP inneholder forskrifter og anbefalinger fra Occupational Safety and Health Administration (OSHA) Needlestick Safety and Prevention Act (29 CFR 1910.1030). Blodprøver utført av Southlake Diagnostics-personell vil følge denne SOP-en.
OSHA Bloodborne Pathogen Standard, (29 CFR 1910.1030) definerer nødvendig bruk av Safety Engineered Sharps Devices for enhver klinisk forskning (inkludert blodprøvetaking og injeksjoner). Alt personell som utfører blodprøvetaking er pålagt å bruke Safety Engineered Sharps Devices.
Personell som tar blodprøver er pålagt å bruke passende personlig verneutstyr (PPE). Clinical Operations-teamet er ansvarlig for å verifisere at laboratoriepersonell som utfører blodprøver har passende opplæring og erfaring i å utføre humane blodprøver.
Blodprøver vil bli tatt fra en passende vene som median cubitalvene. Blodprøver på 3,0 ml vil bli samlet i BD Vacutainer blodprøverør som inneholder litium-heparin ved bruk av 21-23 gage nåler. Blodprøvene vil bli pakket i biohazard, plastlekkasjesikre poser, og transportert i isolerte beholdere med kalde pakker for å sikre integriteten til prøvene, etter behov. Plasma vil bli tilberedt ved sentrifugering. Plasmaprøver vil bli lagret ved 2-8°C hvis de ikke testes innen 8 timer, og fryses hvis de ikke testes innen 14 dager.
Analytiske metoder:
IgG-antistoffer mot SARS-CoV-2 i humant plasma (litium-heparin) vil bli bestemt ved å bruke Siemens Atellica® IM SARS-CoV-2 IgG (sCOVG)-analyse (EUA-nummer: EUA202669) som er en kjemiluminescerende immunanalyse beregnet for kvalitativ og semi-kvantitativ påvisning av IgG-antistoffer ved hjelp av Atellica® IM Analyzer [1]. Denne SARS-CoV-2 IgG-analysen detekterer spesifikt IgG-antistoffer mot S1-reseptorbindende domene (RBD)-antigenet. IgG-antistoffer mot SARS-CoV-2 kan generelt påvises i blod flere dager etter første infeksjon eller vaksinasjon. Varigheten av tiden antistoffer er tilstede etter vaksinasjon er ikke godt karakterisert. Testen vil gi en indikasjon på immunitetsnivået som en vaksine gir mot SARS-CoV-2-viruset som forårsaker COVID-19.
Atellica IM sCOVG-analysen er en helautomatisert 2-trinns sandwich-immunanalyse som bruker indirekte kjemiluminescerende teknologi. Det eksisterer en direkte sammenheng mellom mengden SARS-CoV-2 IgG-antistoff som er tilstede i en pasientplasmaprøve og mengden relative kjemiluminescerende lysenheter (RLU) detektert av systemet. Utarbeidelse av masterkurver og utføring av kalibreringer av systemet vil bli utført i henhold til produksjonsinstruksjoner.
Resultatene av IgG-antistofftesten er uttrykt som indeksverdier med et analytisk måleintervall på 0,50-150,00 Indeks enheter. Plasmaprøver med indeksverdier >150 vil bli fortynnet og testet på nytt. Indeksverdier <1,00 vil bli vurdert som negative (ikke-reaktive) mens verdier >1,00 vil bli vurdert som positive (reaktive) [1].
Totale (IgM + IgG) antistoffer mot SARS-CoV-2 i humant plasma (litium-heparin) vil bli bestemt ved å bruke Siemens Atellica® IM SARS-CoV-2 Total (COV2T)-analyse som er en kjemiluminescerende immunanalyse beregnet for kvalitativ påvisning av totale antistoffer ved å bruke Atellica® IM Analyzer[1].
Atellica IM COV2T-analysen er en automatisert immunanalyse som bruker indirekte kjemiluminescerende teknologi [1]. Resultatene av den totale (IgM + IgG) antistofftesten er uttrykt som indeksverdier med et analytisk måleintervall på 0,05-10,00 Indeks enheter. Indeksverdier <1,00 vil bli ansett som negative (ikke-reaktive) mens verdier >1,00 vil bli ansett som positive (reaktive) [1]
[1]. https://www.siemens-healthineers.com/en-us/laboratory-diagnostics/assays-by-diseases-conditions/infectious-disease-assays/sars-cov-2-igg-assay
Dataledelse:
Demografiske data for forsøkspersonene, inkludert karakteristika, og medisinske historier, inkludert samtidige medisiner og sykdomstilstander/tilstander, vil bli gitt for hvert individ av den respektive boligen og lagt inn i REDCap-skyplattformen (beskrevet nedenfor) av datainndataspesialister ansatt av Southlake Diagnostics. Dataregistrering vil bli kontrollert av en annen spesialist for nøyaktigheten av oppføringen. Standardisert og godkjent terminologi vil bli brukt for alle oppføringsparametere som høyde, vekt, alder, legemiddelnavn og sykdomstilstander for å sikre konsistent datainntasting. Dataregistrering vil bli gjennomgått for nøyaktighet av oppføring og validering av Co-Principal Investigator (Dr. Robert Newton) som er ansvarlig for denne funksjonen, og hovedetterforskeren.
Statistiske metoder:
Laboratoriet vil gi den sertifiserte statistikeren et regneark med data som vil bli sortert og analysert som en helhet og i henhold til ulike parametere som kjønn, aldersgrupper, kjente sykdomstilstander og immunkompetanser, fysiske egenskaper og tid etter vaksinasjon ved hjelp av en REDCap Cloud plattform (www.redcapcloud.com/). Denne plattformen er avansert, kompatibel programvare for håndtering av alle typer data knyttet til kliniske studier. Systemet er Medical Dictionary for Regulatory Activities (MEdDRA) terminologisertifisert, Clinical Data Interchange Standards Consortium (CDISC)-kompatibelt og International Standards Organization (ISO) 27001-sertifisert. Dataene vil bli sortert og analysert for statistisk signifikans og trender ved hjelp av ulike dataprogrammer knyttet til plattformen.
Informasjon om total varighet og hastighet av nedgang av antistoffnivåer som en funksjon av tiden etter vaksinasjon, samt effekten av forstyrrende faktorer på antistoffnivåer som en funksjon av tid vil bli bestemt. Informasjon om antistoffnivåer (IgG og totalt) og Covid-19-infeksjon eller reinfeksjon, og omtrentlig tidspunkt for når et booster-skudd kan være nødvendig, vil også bli innhentet i forhold til antistoffnivåer. Det store antallet forsøkspersoner i den samlede studien bør gjøre det mulig å lage statistiske assosiasjoner mellom antistoffnivåer og ulike potensielt forvirrende og påvirkende faktorer. Dataene vil bli gjennomgått av hovedetterforskeren og co-PI-er.
Studietype
Registrering (Forventet)
Kontakter og plasseringer
Studiekontakt
- Navn: Sidney J Stohs, Ph.D.
- Telefonnummer: 1-214-215-6655
- E-post: sid.stohs9@gmail.com; sid.stohs@bostonbiopharm.com
Studer Kontakt Backup
- Navn: William Kraemer, Ph.D.
- Telefonnummer: 1-860-208-5189
- E-post: kraemer@osu.edu
Studiesteder
-
-
Texas
-
Southlake, Texas, Forente stater, 76092
- Rekruttering
- Southlake Diagnostics, Inc.
-
Ta kontakt med:
- Desiree Brown, MA
- Telefonnummer: 214-697-9949
- E-post: desiree@southlakedx.com
-
Ta kontakt med:
- Sidney J. Stohs, Ph.D.
- Telefonnummer: 1-214-215-6655
- E-post: sid.stohs@bostonbiopharm.com
-
-
Deltakelseskriterier
Kvalifikasjonskriterier
Alder som er kvalifisert for studier
Tar imot friske frivillige
Kjønn som er kvalifisert for studier
Prøvetakingsmetode
Studiepopulasjon
Beskrivelse
Inklusjonskriterier:
- Mannlige og kvinnelige forsøkspersoner over 55 år
- Har gitt frivillig, skriftlig, informert samtykke til å delta i studien
Ekskluderingskriterier:
- Personer som ikke er i stand til å gi informert samtykke.
Studieplan
Hvordan er studiet utformet?
Designdetaljer
Kohorter og intervensjoner
Gruppe / Kohort |
Intervensjon / Behandling |
|---|---|
|
SARS-CoV-2 antistoffnivåer
Dette er en enkeltarmsstudie av Southlake Diagnostics Inc. der endringer i plasmaantistoffnivåer (IgG og totalt) bestemmes over 12 måneder på individer som bor på over 300 tilknyttede sykehjem, utvidede omsorgsfasiliteter og over 55 boliger etter vaksinasjon med en av de autoriserte SARS-CoV-2-vaksinene (Pfizer, Moderna eller J&J).
Ingen inngrep er involvert.
Etterforskerne er ikke ansvarlige for å administrere vaksinene eller avgjøre forsøkspersonens kvalifisering eller vilje til å motta vaksinen.
Blodprøver vil bli tatt og plasma IgG og totale antistoffer vil bli bestemt ved baseline, 3, 6, 9 og 12 måneder etter vaksinasjon.
|
Endringer i plasmaantistoffnivåer over 12 måneder vil avgjøres etter vaksinasjon med en av de autoriserte SARS-CoV-2-vaksinene.
Andre navn:
|
Hva måler studien?
Primære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Endringer i plasmaantistoffnivåer med tiden etter SARS-CoV-2-vaksinasjoner
Tidsramme: Endringer bestemt over 12 måneder (ved baseline, 3,6, 9 og 12 måneder)
|
Bestemmelse av plasma IgG og totale (IgG + IgM) antistoffnivåer over tid
|
Endringer bestemt over 12 måneder (ved baseline, 3,6, 9 og 12 måneder)
|
Sekundære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Plasmaantistoffnivåer og forstyrrende faktorer
Tidsramme: Faktorer som påvirker endringer over 12 måneder (bestemmelser ved baseline, 3,6, 9 og 12 måneder)
|
En bestemmelse av om faktorer som alder, kjent immunkompetanse, bruk av spesifikke legemidler og spesifikke sykdomstilstander påvirker endringer i plasmaantistoffnivåer i løpet av de 12 månedene studien varer.
|
Faktorer som påvirker endringer over 12 måneder (bestemmelser ved baseline, 3,6, 9 og 12 måneder)
|
Samarbeidspartnere og etterforskere
Sponsor
Samarbeidspartnere
Etterforskere
- Studieleder: Harry G Preuss, MD, Georgetown University, washington, DC
- Studieleder: Robert U Newton, Ph.D., Edith Cowan University, Perth Western Australia
Publikasjoner og nyttige lenker
Generelle publikasjoner
- Logunov DY, Dolzhikova IV, Zubkova OV, Tukhvatullin AI, Shcheblyakov DV, Dzharullaeva AS, Grousova DM, Erokhova AS, Kovyrshina AV, Botikov AG, Izhaeva FM, Popova O, Ozharovskaya TA, Esmagambetov IB, Favorskaya IA, Zrelkin DI, Voronina DV, Shcherbinin DN, Semikhin AS, Simakova YV, Tokarskaya EA, Lubenets NL, Egorova DA, Shmarov MM, Nikitenko NA, Morozova LF, Smolyarchuk EA, Kryukov EV, Babira VF, Borisevich SV, Naroditsky BS, Gintsburg AL. Safety and immunogenicity of an rAd26 and rAd5 vector-based heterologous prime-boost COVID-19 vaccine in two formulations: two open, non-randomised phase 1/2 studies from Russia. Lancet. 2020 Sep 26;396(10255):887-897. doi: 10.1016/S0140-6736(20)31866-3. Epub 2020 Sep 4. Erratum In: Lancet. 2021 Jan 9;397(10269):98.
- Piccoli L, Park YJ, Tortorici MA, Czudnochowski N, Walls AC, Beltramello M, Silacci-Fregni C, Pinto D, Rosen LE, Bowen JE, Acton OJ, Jaconi S, Guarino B, Minola A, Zatta F, Sprugasci N, Bassi J, Peter A, De Marco A, Nix JC, Mele F, Jovic S, Rodriguez BF, Gupta SV, Jin F, Piumatti G, Lo Presti G, Pellanda AF, Biggiogero M, Tarkowski M, Pizzuto MS, Cameroni E, Havenar-Daughton C, Smithey M, Hong D, Lepori V, Albanese E, Ceschi A, Bernasconi E, Elzi L, Ferrari P, Garzoni C, Riva A, Snell G, Sallusto F, Fink K, Virgin HW, Lanzavecchia A, Corti D, Veesler D. Mapping Neutralizing and Immunodominant Sites on the SARS-CoV-2 Spike Receptor-Binding Domain by Structure-Guided High-Resolution Serology. Cell. 2020 Nov 12;183(4):1024-1042.e21. doi: 10.1016/j.cell.2020.09.037. Epub 2020 Sep 16.
- Chen X, Pan Z, Yue S, Yu F, Zhang J, Yang Y, Li R, Liu B, Yang X, Gao L, Li Z, Lin Y, Huang Q, Xu L, Tang J, Hu L, Zhao J, Liu P, Zhang G, Chen Y, Deng K, Ye L. Disease severity dictates SARS-CoV-2-specific neutralizing antibody responses in COVID-19. Signal Transduct Target Ther. 2020 Sep 2;5(1):180. doi: 10.1038/s41392-020-00301-9.
- Xia S, Duan K, Zhang Y, Zhao D, Zhang H, Xie Z, Li X, Peng C, Zhang Y, Zhang W, Yang Y, Chen W, Gao X, You W, Wang X, Wang Z, Shi Z, Wang Y, Yang X, Zhang L, Huang L, Wang Q, Lu J, Yang Y, Guo J, Zhou W, Wan X, Wu C, Wang W, Huang S, Du J, Meng Z, Pan A, Yuan Z, Shen S, Guo W, Yang X. Effect of an Inactivated Vaccine Against SARS-CoV-2 on Safety and Immunogenicity Outcomes: Interim Analysis of 2 Randomized Clinical Trials. JAMA. 2020 Sep 8;324(10):951-960. doi: 10.1001/jama.2020.15543.
- VanBlargan LA, Goo L, Pierson TC. Deconstructing the Antiviral Neutralizing-Antibody Response: Implications for Vaccine Development and Immunity. Microbiol Mol Biol Rev. 2016 Oct 26;80(4):989-1010. doi: 10.1128/MMBR.00024-15. Print 2016 Dec.
- Premkumar L, Segovia-Chumbez B, Jadi R, Martinez DR, Raut R, Markmann A, Cornaby C, Bartelt L, Weiss S, Park Y, Edwards CE, Weimer E, Scherer EM, Rouphael N, Edupuganti S, Weiskopf D, Tse LV, Hou YJ, Margolis D, Sette A, Collins MH, Schmitz J, Baric RS, de Silva AM. The receptor binding domain of the viral spike protein is an immunodominant and highly specific target of antibodies in SARS-CoV-2 patients. Sci Immunol. 2020 Jun 11;5(48):eabc8413. doi: 10.1126/sciimmunol.abc8413.
- Wang H, Zhang Y, Huang B, Deng W, Quan Y, Wang W, Xu W, Zhao Y, Li N, Zhang J, Liang H, Bao L, Xu Y, Ding L, Zhou W, Gao H, Liu J, Niu P, Zhao L, Zhen W, Fu H, Yu S, Zhang Z, Xu G, Li C, Lou Z, Xu M, Qin C, Wu G, Gao GF, Tan W, Yang X. Development of an Inactivated Vaccine Candidate, BBIBP-CorV, with Potent Protection against SARS-CoV-2. Cell. 2020 Aug 6;182(3):713-721.e9. doi: 10.1016/j.cell.2020.06.008. Epub 2020 Jun 6.
- Addetia A, Crawford KHD, Dingens A, Zhu H, Roychoudhury P, Huang ML, Jerome KR, Bloom JD, Greninger AL. Neutralizing Antibodies Correlate with Protection from SARS-CoV-2 in Humans during a Fishery Vessel Outbreak with a High Attack Rate. J Clin Microbiol. 2020 Oct 21;58(11):e02107-20. doi: 10.1128/JCM.02107-20. Print 2020 Oct 21.
- Corbett KS, Flynn B, Foulds KE, Francica JR, Boyoglu-Barnum S, Werner AP, Flach B, O'Connell S, Bock KW, Minai M, Nagata BM, Andersen H, Martinez DR, Noe AT, Douek N, Donaldson MM, Nji NN, Alvarado GS, Edwards DK, Flebbe DR, Lamb E, Doria-Rose NA, Lin BC, Louder MK, O'Dell S, Schmidt SD, Phung E, Chang LA, Yap C, Todd JM, Pessaint L, Van Ry A, Browne S, Greenhouse J, Putman-Taylor T, Strasbaugh A, Campbell TA, Cook A, Dodson A, Steingrebe K, Shi W, Zhang Y, Abiona OM, Wang L, Pegu A, Yang ES, Leung K, Zhou T, Teng IT, Widge A, Gordon I, Novik L, Gillespie RA, Loomis RJ, Moliva JI, Stewart-Jones G, Himansu S, Kong WP, Nason MC, Morabito KM, Ruckwardt TJ, Ledgerwood JE, Gaudinski MR, Kwong PD, Mascola JR, Carfi A, Lewis MG, Baric RS, McDermott A, Moore IN, Sullivan NJ, Roederer M, Seder RA, Graham BS. Evaluation of the mRNA-1273 Vaccine against SARS-CoV-2 in Nonhuman Primates. N Engl J Med. 2020 Oct 15;383(16):1544-1555. doi: 10.1056/NEJMoa2024671. Epub 2020 Jul 28.
- Walsh EE, Frenck RW Jr, Falsey AR, Kitchin N, Absalon J, Gurtman A, Lockhart S, Neuzil K, Mulligan MJ, Bailey R, Swanson KA, Li P, Koury K, Kalina W, Cooper D, Fontes-Garfias C, Shi PY, Tureci O, Tompkins KR, Lyke KE, Raabe V, Dormitzer PR, Jansen KU, Sahin U, Gruber WC. Safety and Immunogenicity of Two RNA-Based Covid-19 Vaccine Candidates. N Engl J Med. 2020 Dec 17;383(25):2439-2450. doi: 10.1056/NEJMoa2027906. Epub 2020 Oct 14.
- Mercado NB, Zahn R, Wegmann F, Loos C, Chandrashekar A, Yu J, Liu J, Peter L, McMahan K, Tostanoski LH, He X, Martinez DR, Rutten L, Bos R, van Manen D, Vellinga J, Custers J, Langedijk JP, Kwaks T, Bakkers MJG, Zuijdgeest D, Rosendahl Huber SK, Atyeo C, Fischinger S, Burke JS, Feldman J, Hauser BM, Caradonna TM, Bondzie EA, Dagotto G, Gebre MS, Hoffman E, Jacob-Dolan C, Kirilova M, Li Z, Lin Z, Mahrokhian SH, Maxfield LF, Nampanya F, Nityanandam R, Nkolola JP, Patel S, Ventura JD, Verrington K, Wan H, Pessaint L, Van Ry A, Blade K, Strasbaugh A, Cabus M, Brown R, Cook A, Zouantchangadou S, Teow E, Andersen H, Lewis MG, Cai Y, Chen B, Schmidt AG, Reeves RK, Baric RS, Lauffenburger DA, Alter G, Stoffels P, Mammen M, Van Hoof J, Schuitemaker H, Barouch DH. Single-shot Ad26 vaccine protects against SARS-CoV-2 in rhesus macaques. Nature. 2020 Oct;586(7830):583-588. doi: 10.1038/s41586-020-2607-z. Epub 2020 Jul 30. Erratum In: Nature. 2021 Feb;590(7844):E25.
- Wajnberg A, Amanat F, Firpo A, Altman DR, Bailey MJ, Mansour M, McMahon M, Meade P, Mendu DR, Muellers K, Stadlbauer D, Stone K, Strohmeier S, Simon V, Aberg J, Reich DL, Krammer F, Cordon-Cardo C. Robust neutralizing antibodies to SARS-CoV-2 infection persist for months. Science. 2020 Dec 4;370(6521):1227-1230. doi: 10.1126/science.abd7728. Epub 2020 Oct 28.
- Hassan AO, Case JB, Winkler ES, Thackray LB, Kafai NM, Bailey AL, McCune BT, Fox JM, Chen RE, Alsoussi WB, Turner JS, Schmitz AJ, Lei T, Shrihari S, Keeler SP, Fremont DH, Greco S, McCray PB Jr, Perlman S, Holtzman MJ, Ellebedy AH, Diamond MS. A SARS-CoV-2 Infection Model in Mice Demonstrates Protection by Neutralizing Antibodies. Cell. 2020 Aug 6;182(3):744-753.e4. doi: 10.1016/j.cell.2020.06.011. Epub 2020 Jun 10.
- Krammer F. SARS-CoV-2 vaccines in development. Nature. 2020 Oct;586(7830):516-527. doi: 10.1038/s41586-020-2798-3. Epub 2020 Sep 23.
- 14. Muecksch F, et al. Longitudinal analysis of clinical serology assay performance and neutralising antibody levels in COVID19 convalescents. medRxiv. 2020.08.05.20169128. https://doi.org/10.1101/2020.08.05.20169128
- 15. Ripperger TJ, et al. Detection, prevalence, and duration of humoral responses to SARS-CoV-2 under conditions of limited population exposure. medRxiv. 2020.08.14.20174490; DOI: https://doi. org/10.1101/2020.08.14.20174490
- 16. Grandjean L, et al. Humoral response dynamics following infection with SARS-CoV-2. medRxiv. 2020.07.16.20155663; https://doi.org/10.1101/2020.07.16.20155663
- Iyer AS, Jones FK, Nodoushani A, Kelly M, Becker M, Slater D, Mills R, Teng E, Kamruzzaman M, Garcia-Beltran WF, Astudillo M, Yang D, Miller TE, Oliver E, Fischinger S, Atyeo C, Iafrate AJ, Calderwood SB, Lauer SA, Yu J, Li Z, Feldman J, Hauser BM, Caradonna TM, Branda JA, Turbett SE, LaRocque RC, Mellon G, Barouch DH, Schmidt AG, Azman AS, Alter G, Ryan ET, Harris JB, Charles RC. Persistence and decay of human antibody responses to the receptor binding domain of SARS-CoV-2 spike protein in COVID-19 patients. Sci Immunol. 2020 Oct 8;5(52):eabe0367. doi: 10.1126/sciimmunol.abe0367.
- 18. Iyer AS. Dynamics and significance of the antibody response to SARS-CoV-2. medRxiv. 2020.07.18.20155374. DOI:10.1101/2020.07.18.20155374
- Figueiredo-Campos P, Blankenhaus B, Mota C, Gomes A, Serrano M, Ariotti S, Costa C, Nunes-Cabaco H, Mendes AM, Gaspar P, Pereira-Santos MC, Rodrigues F, Condeco J, Escoval MA, Santos M, Ramirez M, Melo-Cristino J, Simas JP, Vasconcelos E, Afonso A, Veldhoen M. Seroprevalence of anti-SARS-CoV-2 antibodies in COVID-19 patients and healthy volunteers up to 6 months post disease onset. Eur J Immunol. 2020 Dec;50(12):2025-2040. doi: 10.1002/eji.202048970. Epub 2020 Nov 10.
- Isho B, Abe KT, Zuo M, Jamal AJ, Rathod B, Wang JH, Li Z, Chao G, Rojas OL, Bang YM, Pu A, Christie-Holmes N, Gervais C, Ceccarelli D, Samavarchi-Tehrani P, Guvenc F, Budylowski P, Li A, Paterson A, Yue FY, Marin LM, Caldwell L, Wrana JL, Colwill K, Sicheri F, Mubareka S, Gray-Owen SD, Drews SJ, Siqueira WL, Barrios-Rodiles M, Ostrowski M, Rini JM, Durocher Y, McGeer AJ, Gommerman JL, Gingras AC. Persistence of serum and saliva antibody responses to SARS-CoV-2 spike antigens in COVID-19 patients. Sci Immunol. 2020 Oct 8;5(52):eabe5511. doi: 10.1126/sciimmunol.abe5511.
- 21. Poland GA, et al. SARS-CoV-2 immunity: review and applications to phase 3 vaccine candidates. Published online October 13, 2020. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(20)32137-1
- Folegatti PM, Ewer KJ, Aley PK, Angus B, Becker S, Belij-Rammerstorfer S, Bellamy D, Bibi S, Bittaye M, Clutterbuck EA, Dold C, Faust SN, Finn A, Flaxman AL, Hallis B, Heath P, Jenkin D, Lazarus R, Makinson R, Minassian AM, Pollock KM, Ramasamy M, Robinson H, Snape M, Tarrant R, Voysey M, Green C, Douglas AD, Hill AVS, Lambe T, Gilbert SC, Pollard AJ; Oxford COVID Vaccine Trial Group. Safety and immunogenicity of the ChAdOx1 nCoV-19 vaccine against SARS-CoV-2: a preliminary report of a phase 1/2, single-blind, randomised controlled trial. Lancet. 2020 Aug 15;396(10249):467-478. doi: 10.1016/S0140-6736(20)31604-4. Epub 2020 Jul 20. Erratum In: Lancet. 2020 Aug 15;396(10249):466. Lancet. 2020 Dec 12;396(10266):1884.
- Zhu FC, Li YH, Guan XH, Hou LH, Wang WJ, Li JX, Wu SP, Wang BS, Wang Z, Wang L, Jia SY, Jiang HD, Wang L, Jiang T, Hu Y, Gou JB, Xu SB, Xu JJ, Wang XW, Wang W, Chen W. Safety, tolerability, and immunogenicity of a recombinant adenovirus type-5 vectored COVID-19 vaccine: a dose-escalation, open-label, non-randomised, first-in-human trial. Lancet. 2020 Jun 13;395(10240):1845-1854. doi: 10.1016/S0140-6736(20)31208-3. Epub 2020 May 22.
- Zhu FC, Guan XH, Li YH, Huang JY, Jiang T, Hou LH, Li JX, Yang BF, Wang L, Wang WJ, Wu SP, Wang Z, Wu XH, Xu JJ, Zhang Z, Jia SY, Wang BS, Hu Y, Liu JJ, Zhang J, Qian XA, Li Q, Pan HX, Jiang HD, Deng P, Gou JB, Wang XW, Wang XH, Chen W. Immunogenicity and safety of a recombinant adenovirus type-5-vectored COVID-19 vaccine in healthy adults aged 18 years or older: a randomised, double-blind, placebo-controlled, phase 2 trial. Lancet. 2020 Aug 15;396(10249):479-488. doi: 10.1016/S0140-6736(20)31605-6. Epub 2020 Jul 20.
- Jackson LA, Anderson EJ, Rouphael NG, Roberts PC, Makhene M, Coler RN, McCullough MP, Chappell JD, Denison MR, Stevens LJ, Pruijssers AJ, McDermott A, Flach B, Doria-Rose NA, Corbett KS, Morabito KM, O'Dell S, Schmidt SD, Swanson PA 2nd, Padilla M, Mascola JR, Neuzil KM, Bennett H, Sun W, Peters E, Makowski M, Albert J, Cross K, Buchanan W, Pikaart-Tautges R, Ledgerwood JE, Graham BS, Beigel JH; mRNA-1273 Study Group. An mRNA Vaccine against SARS-CoV-2 - Preliminary Report. N Engl J Med. 2020 Nov 12;383(20):1920-1931. doi: 10.1056/NEJMoa2022483. Epub 2020 Jul 14.
- 28. Keech C, et al. Phase 1-2 trial of a SARS-CoV-2 recombinant spike protein nanoparticle vaccine. DOI:10.1056/NEJMoa2026920 29. 49. Zhang, Y.J. et al. Immunogenicity and safety of a SARS-CoV-2 inactivated vaccine in healthy adults aged 18-59 years: report of the randomized, double-blind, and placebo-controlled phase 2 clinical trial. medRxiv. 2020.07.31.20161216; https://doi.org/10.1101/2020.07.31.20161216
- Hotez PJ, Corry DB, Strych U, Bottazzi ME. COVID-19 vaccines: neutralizing antibodies and the alum advantage. Nat Rev Immunol. 2020 Jul;20(7):399-400. doi: 10.1038/s41577-020-0358-6.
- Dagotto G, Yu J, Barouch DH. Approaches and Challenges in SARS-CoV-2 Vaccine Development. Cell Host Microbe. 2020 Sep 9;28(3):364-370. doi: 10.1016/j.chom.2020.08.002. Epub 2020 Aug 10.
- Yu J, Tostanoski LH, Peter L, Mercado NB, McMahan K, Mahrokhian SH, Nkolola JP, Liu J, Li Z, Chandrashekar A, Martinez DR, Loos C, Atyeo C, Fischinger S, Burke JS, Slein MD, Chen Y, Zuiani A, Lelis FJN, Travers M, Habibi S, Pessaint L, Van Ry A, Blade K, Brown R, Cook A, Finneyfrock B, Dodson A, Teow E, Velasco J, Zahn R, Wegmann F, Bondzie EA, Dagotto G, Gebre MS, He X, Jacob-Dolan C, Kirilova M, Kordana N, Lin Z, Maxfield LF, Nampanya F, Nityanandam R, Ventura JD, Wan H, Cai Y, Chen B, Schmidt AG, Wesemann DR, Baric RS, Alter G, Andersen H, Lewis MG, Barouch DH. DNA vaccine protection against SARS-CoV-2 in rhesus macaques. Science. 2020 Aug 14;369(6505):806-811. doi: 10.1126/science.abc6284. Epub 2020 May 20.
- Gao Q, Bao L, Mao H, Wang L, Xu K, Yang M, Li Y, Zhu L, Wang N, Lv Z, Gao H, Ge X, Kan B, Hu Y, Liu J, Cai F, Jiang D, Yin Y, Qin C, Li J, Gong X, Lou X, Shi W, Wu D, Zhang H, Zhu L, Deng W, Li Y, Lu J, Li C, Wang X, Yin W, Zhang Y, Qin C. Development of an inactivated vaccine candidate for SARS-CoV-2. Science. 2020 Jul 3;369(6499):77-81. doi: 10.1126/science.abc1932. Epub 2020 May 6.
- Mulligan MJ, Lyke KE, Kitchin N, Absalon J, Gurtman A, Lockhart S, Neuzil K, Raabe V, Bailey R, Swanson KA, Li P, Koury K, Kalina W, Cooper D, Fontes-Garfias C, Shi PY, Tureci O, Tompkins KR, Walsh EE, Frenck R, Falsey AR, Dormitzer PR, Gruber WC, Sahin U, Jansen KU. Phase I/II study of COVID-19 RNA vaccine BNT162b1 in adults. Nature. 2020 Oct;586(7830):589-593. doi: 10.1038/s41586-020-2639-4. Epub 2020 Aug 12. Erratum In: Nature. 2021 Feb;590(7844):E26.
- Sahin U, Muik A, Derhovanessian E, Vogler I, Kranz LM, Vormehr M, Baum A, Pascal K, Quandt J, Maurus D, Brachtendorf S, Lorks V, Sikorski J, Hilker R, Becker D, Eller AK, Grutzner J, Boesler C, Rosenbaum C, Kuhnle MC, Luxemburger U, Kemmer-Bruck A, Langer D, Bexon M, Bolte S, Kariko K, Palanche T, Fischer B, Schultz A, Shi PY, Fontes-Garfias C, Perez JL, Swanson KA, Loschko J, Scully IL, Cutler M, Kalina W, Kyratsous CA, Cooper D, Dormitzer PR, Jansen KU, Tureci O. COVID-19 vaccine BNT162b1 elicits human antibody and TH1 T cell responses. Nature. 2020 Oct;586(7830):594-599. doi: 10.1038/s41586-020-2814-7. Epub 2020 Sep 30. Erratum In: Nature. 2021 Feb;590(7844):E17.
- Bos R, Rutten L, van der Lubbe JEM, Bakkers MJG, Hardenberg G, Wegmann F, Zuijdgeest D, de Wilde AH, Koornneef A, Verwilligen A, van Manen D, Kwaks T, Vogels R, Dalebout TJ, Myeni SK, Kikkert M, Snijder EJ, Li Z, Barouch DH, Vellinga J, Langedijk JPM, Zahn RC, Custers J, Schuitemaker H. Ad26 vector-based COVID-19 vaccine encoding a prefusion-stabilized SARS-CoV-2 Spike immunogen induces potent humoral and cellular immune responses. NPJ Vaccines. 2020 Sep 28;5:91. doi: 10.1038/s41541-020-00243-x. eCollection 2020.
- 36. Bubar, K.M. et al. Model-informed COVID-19 vaccine prioritization strategies by age and serostatus. medRxiv 2020.09.08.20190629; https://doi.org/10.1101/2020.09.08.20190629
- Gaebler C, Nussenzweig MC. All eyes on a hurdle race for a SARS-CoV-2 vaccine. Nature. 2020 Oct;586(7830):501-502. doi: 10.1038/d41586-020-02926-w. No abstract available.
- Trabaud MA, Icard V, Milon MP, Bal A, Lina B, Escuret V. Comparison of eight commercial, high-throughput, automated or ELISA assays detecting SARS-CoV-2 IgG or total antibody. J Clin Virol. 2020 Nov;132:104613. doi: 10.1016/j.jcv.2020.104613. Epub 2020 Sep 7.
- Houlihan CF, Beale R. The complexities of SARS-CoV-2 serology. Lancet Infect Dis. 2020 Dec;20(12):1350-1351. doi: 10.1016/S1473-3099(20)30699-X. Epub 2020 Sep 23. No abstract available.
- National SARS-CoV-2 Serology Assay Evaluation Group. Performance characteristics of five immunoassays for SARS-CoV-2: a head-to-head benchmark comparison. Lancet Infect Dis. 2020 Dec;20(12):1390-1400. doi: 10.1016/S1473-3099(20)30634-4. Epub 2020 Sep 23. Erratum In: Lancet Infect Dis. 2020 Dec;20(12):e298.
- Rosadas C, Randell P, Khan M, McClure MO, Tedder RS. Testing for responses to the wrong SARS-CoV-2 antigen? Lancet. 2020 Sep 5;396(10252):e23. doi: 10.1016/S0140-6736(20)31830-4. Epub 2020 Aug 28. No abstract available.
- Long QX, Tang XJ, Shi QL, Li Q, Deng HJ, Yuan J, Hu JL, Xu W, Zhang Y, Lv FJ, Su K, Zhang F, Gong J, Wu B, Liu XM, Li JJ, Qiu JF, Chen J, Huang AL. Clinical and immunological assessment of asymptomatic SARS-CoV-2 infections. Nat Med. 2020 Aug;26(8):1200-1204. doi: 10.1038/s41591-020-0965-6. Epub 2020 Jun 18.
- Seow J, Graham C, Merrick B, Acors S, Pickering S, Steel KJA, Hemmings O, O'Byrne A, Kouphou N, Galao RP, Betancor G, Wilson HD, Signell AW, Winstone H, Kerridge C, Huettner I, Jimenez-Guardeno JM, Lista MJ, Temperton N, Snell LB, Bisnauthsing K, Moore A, Green A, Martinez L, Stokes B, Honey J, Izquierdo-Barras A, Arbane G, Patel A, Tan MKI, O'Connell L, O'Hara G, MacMahon E, Douthwaite S, Nebbia G, Batra R, Martinez-Nunez R, Shankar-Hari M, Edgeworth JD, Neil SJD, Malim MH, Doores KJ. Longitudinal observation and decline of neutralizing antibody responses in the three months following SARS-CoV-2 infection in humans. Nat Microbiol. 2020 Dec;5(12):1598-1607. doi: 10.1038/s41564-020-00813-8. Epub 2020 Oct 26.
- Ibarrondo FJ, Fulcher JA, Goodman-Meza D, Elliott J, Hofmann C, Hausner MA, Ferbas KG, Tobin NH, Aldrovandi GM, Yang OO. Rapid Decay of Anti-SARS-CoV-2 Antibodies in Persons with Mild Covid-19. N Engl J Med. 2020 Sep 10;383(11):1085-1087. doi: 10.1056/NEJMc2025179. Epub 2020 Jul 21. No abstract available. Erratum In: N Engl J Med. 2020 Jul 23;:
- 45. https://www.siemens-healthineers.com/en-us/laboratory-diagnostics/assays-by-diseases-conditions/infectious-disease-assays/sars-cov-2-igg-assay
Studierekorddatoer
Studer hoveddatoer
Studiestart (FAKTISKE)
Primær fullføring (FORVENTES)
Studiet fullført (FORVENTES)
Datoer for studieregistrering
Først innsendt
Først innsendt som oppfylte QC-kriteriene
Først lagt ut (FAKTISKE)
Oppdateringer av studieposter
Sist oppdatering lagt ut (FAKTISKE)
Siste oppdatering sendt inn som oppfylte QC-kriteriene
Sist bekreftet
Mer informasjon
Begreper knyttet til denne studien
Nøkkelord
Ytterligere relevante MeSH-vilkår
Andre studie-ID-numre
- SARS-CoV-2 Antibodies Levels
Plan for individuelle deltakerdata (IPD)
Planlegger du å dele individuelle deltakerdata (IPD)?
IPD-planbeskrivelse
IPD-delingstidsramme
Tilgangskriterier for IPD-deling
IPD-deling Støtteinformasjonstype
- STUDY_PROTOCOL
- SEVJE
- ICF
- ANALYTIC_CODE
- CSR
Legemiddel- og utstyrsinformasjon, studiedokumenter
Studerer et amerikansk FDA-regulert medikamentprodukt
Studerer et amerikansk FDA-regulert enhetsprodukt
Denne informasjonen ble hentet direkte fra nettstedet clinicaltrials.gov uten noen endringer. Hvis du har noen forespørsler om å endre, fjerne eller oppdatere studiedetaljene dine, vennligst kontakt register@clinicaltrials.gov. Så snart en endring er implementert på clinicaltrials.gov, vil denne også bli oppdatert automatisk på nettstedet vårt. .