- ICH GCP
- US Clinical Trials Registry
- Klinisk utprøving NCT06304623
SVF for behandling av lungefibrose etter COVID-19 (SVFCOVID-19)
Rollen til celleterapi med SVF-celler (stromal vaskulær fraksjon) av fettvevsopprinnelse i behandlingen av lungefibrose etter COVD-19
Generell beskrivelse av studiet
Dette er en prospektiv, multisenter intervensjonsstudie med utvidet tilgang av forsøkspersoner som er blitt friske fra COVID-19-lungebetennelse for å vurdere deres respons på intravenøs administrering av fettavledet autolog SVF.
Hovedmål
Formålet med denne studien var å evaluere sikkerheten til enkeltstående intravenøse injeksjoner av autolog fettavledet SVF produsert ved bruk av GID SVF-2 enhetssystemet for behandling av sekundær pustebesvær assosiert med COVID-19.
Sekundært mål
For å evaluere effekten av den første behandlingen med SVF IV.
Studieoversikt
Status
Forhold
Intervensjon / Behandling
Detaljert beskrivelse
Det nylige utbruddet av Coronavirus 2 (SARS-CoV-2) har spredt seg raskt over hele verden, noe som har resultert i en global pandemi med ødeleggende sosioøkonomiske konsekvenser. Etter å ha blitt erklært en folkehelsenødsituasjon av Verdens helseorganisasjon (WHO), er det et presserende behov for å utvikle effektive terapeutiske strategier for kritisk syke COVID-19-pasienter. Denne nye virusstammen forårsaker en kompleks sykdom med et bredt spekter av presentasjoner, fra milde symptomer til multiorgansvikt. Et vanlig trekk ved alvorlige tilfeller er den patologisk komplekse "cytokinstormen" som viser seg som en overdreven immunrespons med rask sykdomsprogresjon og høy dødelighet. Spesielt er de alvorlige utfallene av SARS CoV-2 assosiert med forhøyet C-reaktivt protein og Interleukin-6 i lungene. COVID-19-infeksjon kan raskt dekompensere til alvorlig respirasjonssvikt som krever intubasjon og mekanisk ventilasjon. Behovet for mekanisk ventilasjon gir en dårlig prognose, med en rapportert dødelighet på opptil 88 %.
Overlevende av COVID-19-lungebetennelse møter følgetilstander av sykdommen som påvirker flere organsystemer. Spesielt har et betydelig antall pågående problemer med åndenød og redusert oksygenering, noe som gjør tidligere friske pasienter til virusinduserte lungekrøpler. Mekanismen for dette er den intense arrdannelsen og ødeleggelsen av mikrosirkulasjonen som finnes i lungene til COVID-19-overlevende. Det er et presserende behov for utvikling av behandlingsprotokoller som er i stand til å redusere graden av lungefibrose og fremme lokal angiogenese for bedre å støtte skadde alveoler.
I de siste tiårene har mesenkymale stromale celler (MSCs) dukket opp som et potensielt terapeutisk middel for cellebaserte terapier på grunn av de gunstige effektene på immunmodulering og vevsreparasjon/regenerering. Disse cellene har egenskaper unike selvfornyelse og kapasitet til å differensiere til flere avstamninger. MSC-er finnes i et lite antall i benmarg (BMSC) og navlestrengsvev. MSC-er finnes også i fettvev (referert til som ASC-er) der de eksisterer som en del av en flercellet populasjon, den stromale vaskulære fraksjonen (SVF). ASC-populasjoner er 500-1000 mer tallrike enn sine benmargskolleger.
Fettvev gir en kilde til stromal vaskulær fraksjon (SVF) som kan isoleres og transplanteres til pasienten under samme kirurgiske prosedyre, på pleiepunktet. SVF er en heterogen blanding av stromale progenitorceller, pericytter, endoteliale forløperceller og makrofager. Ved å handle kollektivt har SVF vist seg å ha brede antiinflammatoriske og regenerative egenskaper. SVF har vist seg å være trygt etter IV-administrasjon og har vist noen lovende resultater for å gjenopprette respirasjonsfunksjonen hos pasienter med alvorlige lungesykdommer. Basert på offentlig analyse av enkeltcelle-RNA-sekvenseringsdata (scRNA-seq), demonstrerer SVF fraværet av ACE2-ekspresjon, noe som indikerer dets potensial som en resistent fenotype mot SARS-CoV-2-infeksjon. I Samlet presenteres IV-administrasjon av fettavledet SVF som en ny behandlingstilnærming for å forbedre det kliniske resultatet av respiratorisk kompromitterte COVID-19-pasienter.
Den kliniske effekten av SVF for COVID-19 er basert på 5 virkningsmekanismer. Disse er mye dokumentert (se vedlagte publikasjoner og litteraturliste).
Anti-inflammatorisk immunmodulering, spesielt T-regs Antifibrose. Matrisemetalloproteinaser og levervekstfaktor. Støtte for regenerative cellepopulasjoner in situ. Lungeastma studerer angiogenese under iskemiske forhold, basert på frigjøring av VEGF.
Terapi med SVF-celler fra fettvev er fordelaktig ettersom et stort antall celler kan fjernes fra små volumer (30-90 cc) ved en minimalt invasiv fettsugingsprosedyre.
Indikasjon for utvidet tilgang
Dette er en utvidet tilgangsstudie for å behandle en liten gruppe forsøkspersoner med lungefølger etter bedring etter COVID-19 lungebetennelse av autolog fettavledet SVF administrert som enkelt intravenøs injeksjon.
Mål for klinisk forskning
Hovedoppgave
For å vurdere sikkerheten til en enkelt injeksjon av autolog fettavledet SVF produsert med GID SVF-2-enheten for behandling av pustebesvær.
knyttet til covid-19.
Sekundært mål
For å vurdere effektiviteten, ved (1) å opprettholde SaO2-metning ≥ på det eksisterende nivået på ikke-invasiv oksygenstøtte, (2) oppnå en reduksjon i nivået av oksygenstøtte som kreves for å opprettholde SaO2 ≥ 92, ved å bruke intravenøs injeksjon av autolog fettavledet SVF produsert vha. GID SVF-2 enhetssystem for behandling av pustebesvær forbundet med COVID-19.
Forventet varighet av den kliniske undersøkelsen
Oppfølgingskontroller ved 3, 6, 9 og 12 måneder. Total varighet av studiet er 1 år.
Klinisk protokoll
Studere design
Generell studiedesign
Dette er en prospektiv, multisenter intervensjonsstudie med utvidet tilgang av personer med COVID-19. Førti (40) personer med bekreftet COVID-19 og SaO2 ≤ 92 ble behandlet. Forsøkspersonene fikk en intravenøs injeksjon av autolog fettavledet SVF. Forsøkspersonene vil bli fulgt i 6 uker.
Studieprosedyrer
Deteksjonsprosedyrer
Den første evalueringen ble gjort ved det lokale Centro de Salud. Forsøkspersonene ble deretter henvist til HEODRA eller HECAM for bekreftende diagnose og ytterligere tester.
Samtidig medisinering
Alle samtidige medisiner som anses som Standard of Care aksepteres. Ved hvert oppfølgingsbesøk vil det fylles ut et skjema for saksrapport om samtidig medisinering.
Oppsummering av studiebehandling
40 ikke-randomiserte pasienter vil bli behandlet med autolog SVF. Minimumsdose: 45x106 ± 5x106 celler Behandlingsplan: en enkelt intervensjon
Oppfølging Serumprøver (20 cc) - betennelsesfaktorer: 1 måned, 3 måneder, 6 måneder PFTs + DLco: preop, 1 måned, 3 måneder, 6 måneder uker og 12 måneder CT: preop, 3 måneder, 6 måneder, 12 måneders SF-36 livskvalitetsspørreskjema SF-36 (Medical Outcomes Trust): pre-op, 12 måneder SGRQ-C respiratorisk spørreskjema SGRQ-C (St. George's University): pre-op, 12 måneder
Pasientens fettvev vil bli ervervet ved fettsuging av magen eller flankene og plassert direkte i GID SVF-2-enheten. Det høstede fettvevet vil bli enzymatisk fordøyd i den samme GID SVF-2-enheten ved å bruke GIDZyme-2-70-enzymet og sentrifugeres i den samme GID SVF-2-enheten for å konsentrere SVF-cellene. SVF-celler vil bli fjernet og en aktiv behandlingsdose på 45 x 106 (±5 x 106) SVF-celler vil bli injisert i en 100 ml IV-pose som inneholder LR. Væsker vil bli gitt gjennom et IV-kateter gjennom et blodfilter over 10 minutter.
Dosering
Doseforberedelse
Bruk LunaStem® Nucleocounter Cell Concentration and Dilution Factor 100 for å beregne volumet som trengs ved å bruke følgende ligning og overføre den mengden resuspensjon til en 10 ml sprøyte.
#ml = dose = 40 x 106 (+/- 5 x 106)
Doseadministrasjon Måten å administrere SVF for vaskulær bruk er den samme enten den er intravenøs (IV) eller intravenøs (IA).
Behandlingen ble administrert intravenøst ved bruk av et intravenøst kateter med blodfilter.
Tilsett dosen i en 100 ml pose med LR som har blitt varmet opp til 37°C og bland godt. Administrer de 100 ml over 10 minutter.
Overholdelse av behandling
Hvert forsøksperson hadde tid til å lese samtykkeskjemaet og stille spørsmål om studien før de signerte det informerte samtykket. Forsøkspersonene bør kontakte legen eller personalet hvis deltakeren har noen bekymringer under studien. Det vil bli understreket at forsøkspersonen må følge protokollen og være ærlig om symptomene hennes.
Tilbaketrekking av emner for manglende overholdelse
Emner kan avsluttes fra studien etter hovedetterforskers skjønn kun av årsaker knyttet til studieeksamener som vil sette fagets helse og/eller velferd i fare dersom deltakerne skulle fortsette i studien. Forsøkspersoner kan frivillig trekke seg fra studien når som helst uten fordommer.
• Forsøkspersoner som trekkes ut vil ikke bli erstattet dersom deltaker har mottatt studiebehandling.
Tidsplan for studiebesøk
Den første evalueringen og informert samtykke fant sted på sykehusene. Før behandlingen ble forsøkspersonene evaluert for å avgjøre om deltakeren oppfyller inklusjons-/eksklusjonskriteriene. Hvis det ikke allerede er gitt, ble demografi, medisinsk historie, samtidige medisiner, SaO2 og arterielle blodgasser samlet inn. Emnet ble påmeldt hvis deltakeren oppfyller alle kvalifikasjonskriteriene og har signert det informerte samtykket.
Tiden mellom påmelding og behandling oversteg ikke 48 timer.
På behandlingsdagen ble hvert individ vurdert på nytt for inkludering i studien.
Studietype
Registrering (Faktiske)
Fase
- Fase 1
Kontakter og plasseringer
Studiesteder
-
-
-
Matagalpa, Nicaragua, 61000
- Hospital Escuela Cesar Amador Molina
-
-
Leon
-
León, Leon, Nicaragua, 21000
- Hospital Escuela Oscar Danilo Rosales Arguello (HEODRA)
-
-
Deltakelseskriterier
Kvalifikasjonskriterier
Alder som er kvalifisert for studier
- Voksen
- Eldre voksen
Tar imot friske frivillige
Beskrivelse
Inklusjonskriterier:
Pasienter ble identifisert ved Managua og Leon, Nicaragua, samfunnshelsesentre og screenet for kvalifisering av studieleger.
- Førti PCR-bekreftede COVID-19 pasienter
- Vedvarende lungeplager av dyspné i minst 2 måneder etter utskrivning fra sykehus.
- Alder 18 - 85 år.
- Mann eller kvinne.
- En kroppsmasseindeks på > 22.
- Forsert vitalkapasitet (FVC) > 40 % predikert og < 70 % predikert
- Diffuserende lungekapasitet i lungene for karbonmonoksid (DLCO) > 20 % predikert og < 70 % predikert.
Ekskluderingskriterier:
- Bruk av oksygen hjemme
- Historie om lungekreft.
- Immunsuppressiv medikamentell behandling
- Anamnese med tidligere hjertesykdom med en ejeksjonsfraksjon på ≤30 %
- Diabetes
- Graviditet eller planlegger å bli gravid i løpet av studieperioden.
- Deltakelse i en annen klinisk studie.
Studieplan
Hvordan er studiet utformet?
Designdetaljer
- Primært formål: Behandling
- Tildeling: N/A
- Intervensjonsmodell: Enkeltgruppeoppdrag
- Masking: Ingen (Open Label)
Våpen og intervensjoner
Deltakergruppe / Arm |
Intervensjon / Behandling |
|---|---|
|
Eksperimentell: SVF-cellebehandling
40 forsøkspersoner ble behandlet med autolog SVF intravenøs behandling.
|
Forsøkspersonene fikk en intravenøs injeksjon av autolog fettavledet SVF.
|
Hva måler studien?
Primære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Sikkerhet ved behandling med SVF IV
Tidsramme: Opptil 12 måneder etter injeksjon.
|
Ingen av deltakerne med potensielle alvorlige lungebivirkninger (SAE) relatert til SVF-celleinfusjon av enkelt intravenøs injeksjon av autolog fettavledet SVF produsert ved bruk av GID SVF-2-enhetssystemet.
|
Opptil 12 måneder etter injeksjon.
|
Sekundære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Effekten av den første behandlingen med SVF IV
Tidsramme: Inntil 12 måneder
|
Alle forsøkspersoner med dyspné-symptomer ble forbedret: Mekanisk funksjon av lungen ved spirometri økt i tvungen vitalkapasitet (FVC).
|
Inntil 12 måneder
|
Andre resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Effektiviteten av den første behandlingen med SVF IV
Tidsramme: Inntil 12 måneder
|
Alle forsøkspersoner med alveolær-kapillær diffusjon av oksygen forbedret ved hjelp av diffusjonskapasiteten til lungen for karbonmonoksid (DLCO) metrikk.
|
Inntil 12 måneder
|
Samarbeidspartnere og etterforskere
Sponsor
Samarbeidspartnere
Etterforskere
- Studieleder: Carlos Lopez, MD, Hospital Escuela Oscar Danilo Rosales, Leon (HEODRA)
- Studieleder: Yanury Dolmus, MD, Hospital Escuela Cesar Amador Molina, Matagalpa (HECAM)
Publikasjoner og nyttige lenker
Generelle publikasjoner
- Huang C, Wang Y, Li X, Ren L, Zhao J, Hu Y, Zhang L, Fan G, Xu J, Gu X, Cheng Z, Yu T, Xia J, Wei Y, Wu W, Xie X, Yin W, Li H, Liu M, Xiao Y, Gao H, Guo L, Xie J, Wang G, Jiang R, Gao Z, Jin Q, Wang J, Cao B. Clinical features of patients infected with 2019 novel coronavirus in Wuhan, China. Lancet. 2020 Feb 15;395(10223):497-506. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30183-5. Epub 2020 Jan 24. Erratum In: Lancet. 2020 Jan 30;:
- Guan WJ, Ni ZY, Hu Y, Liang WH, Ou CQ, He JX, Liu L, Shan H, Lei CL, Hui DSC, Du B, Li LJ, Zeng G, Yuen KY, Chen RC, Tang CL, Wang T, Chen PY, Xiang J, Li SY, Wang JL, Liang ZJ, Peng YX, Wei L, Liu Y, Hu YH, Peng P, Wang JM, Liu JY, Chen Z, Li G, Zheng ZJ, Qiu SQ, Luo J, Ye CJ, Zhu SY, Zhong NS; China Medical Treatment Expert Group for Covid-19. Clinical Characteristics of Coronavirus Disease 2019 in China. N Engl J Med. 2020 Apr 30;382(18):1708-1720. doi: 10.1056/NEJMoa2002032. Epub 2020 Feb 28.
- Mehta P, McAuley DF, Brown M, Sanchez E, Tattersall RS, Manson JJ; HLH Across Speciality Collaboration, UK. COVID-19: consider cytokine storm syndromes and immunosuppression. Lancet. 2020 Mar 28;395(10229):1033-1034. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30628-0. Epub 2020 Mar 16. No abstract available.
- Coronaviridae Study Group of the International Committee on Taxonomy of Viruses. The species Severe acute respiratory syndrome-related coronavirus: classifying 2019-nCoV and naming it SARS-CoV-2. Nat Microbiol. 2020 Apr;5(4):536-544. doi: 10.1038/s41564-020-0695-z. Epub 2020 Mar 2.
- Weiss P, Murdoch DR. Clinical course and mortality risk of severe COVID-19. Lancet. 2020 Mar 28;395(10229):1014-1015. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30633-4. Epub 2020 Mar 17. No abstract available.
- Nguyen A, Guo J, Banyard DA, Fadavi D, Toranto JD, Wirth GA, Paydar KZ, Evans GR, Widgerow AD. Stromal vascular fraction: A regenerative reality? Part 1: Current concepts and review of the literature. J Plast Reconstr Aesthet Surg. 2016 Feb;69(2):170-9. doi: 10.1016/j.bjps.2015.10.015. Epub 2015 Oct 31.
- Guo J, Nguyen A, Banyard DA, Fadavi D, Toranto JD, Wirth GA, Paydar KZ, Evans GR, Widgerow AD. Stromal vascular fraction: A regenerative reality? Part 2: Mechanisms of regenerative action. J Plast Reconstr Aesthet Surg. 2016 Feb;69(2):180-8. doi: 10.1016/j.bjps.2015.10.014. Epub 2015 Oct 24.
- Turner AJ, Hiscox JA, Hooper NM. ACE2: from vasopeptidase to SARS virus receptor. Trends Pharmacol Sci. 2004 Jun;25(6):291-4. doi: 10.1016/j.tips.2004.04.001.
- Leng Z, Zhu R, Hou W, Feng Y, Yang Y, Han Q, Shan G, Meng F, Du D, Wang S, Fan J, Wang W, Deng L, Shi H, Li H, Hu Z, Zhang F, Gao J, Liu H, Li X, Zhao Y, Yin K, He X, Gao Z, Wang Y, Yang B, Jin R, Stambler I, Lim LW, Su H, Moskalev A, Cano A, Chakrabarti S, Min KJ, Ellison-Hughes G, Caruso C, Jin K, Zhao RC. Transplantation of ACE2- Mesenchymal Stem Cells Improves the Outcome of Patients with COVID-19 Pneumonia. Aging Dis. 2020 Mar 9;11(2):216-228. doi: 10.14336/AD.2020.0228. eCollection 2020 Apr.
- Caplan AI, Correa D. The MSC: an injury drugstore. Cell Stem Cell. 2011 Jul 8;9(1):11-5. doi: 10.1016/j.stem.2011.06.008.
- Nauta AJ, Fibbe WE. Immunomodulatory properties of mesenchymal stromal cells. Blood. 2007 Nov 15;110(10):3499-506. doi: 10.1182/blood-2007-02-069716. Epub 2007 Jul 30.
- Chamberlain G, Fox J, Ashton B, Middleton J. Concise review: mesenchymal stem cells: their phenotype, differentiation capacity, immunological features, and potential for homing. Stem Cells. 2007 Nov;25(11):2739-49. doi: 10.1634/stemcells.2007-0197. Epub 2007 Jul 26.
- WHO Director-General's opening remarks at the media briefing on COVID-19 - 11 March2020. https://www.who.int/dg/speeches/detail/who-director-general-s-opening-remarks-at-the- media-briefing-on-covid-19---11-march-2020. Published 2020
- Jiang S, Du L, Shi Z. An emerging coronavirus causing pneumonia outbreak in Wuhan, China: calling for developing therapeutic and prophylactic strategies. Emerg Microbes Infect. 2020 Jan 31;9(1):275-277. doi: 10.1080/22221751.2020.1723441. eCollection 2020. No abstract available. Erratum In: Emerg Microbes Infect. 2020 Dec;9(1):539.
- Pittenger MF, Discher DE, Peault BM, Phinney DG, Hare JM, Caplan AI. Mesenchymal stem cell perspective: cell biology to clinical progress. NPJ Regen Med. 2019 Dec 2;4:22. doi: 10.1038/s41536-019-0083-6. eCollection 2019.
- Le Blanc K, Davies LC. Mesenchymal stromal cells and the innate immune response. Immunol Lett. 2015 Dec;168(2):140-6. doi: 10.1016/j.imlet.2015.05.004. Epub 2015 May 15.
- Brown, P, Katz AJ. Adipose -derived stem cells In: Atala A (ed). Textbook of Regenerative Medicine Elsevier, 3rd ed. 2019, pp.
- Kapur SK, Dos-Anjos Vilaboa S, Llull R, Katz AJ. Adipose tissue and stem/progenitor cells: discovery and development. Clin Plast Surg. 2015 Apr;42(2):155-67. doi: 10.1016/j.cps.2014.12.010.
- Regmi S, Pathak S, Kim JO, Yong CS, Jeong JH. Mesenchymal stem cell therapy for the treatment of inflammatory diseases: Challenges, opportunities, and future perspectives. Eur J Cell Biol. 2019 Dec;98(5-8):151041. doi: 10.1016/j.ejcb.2019.04.002. Epub 2019 Apr 14.
- Limper AH. Safety of IV Human Mesenchymal Stem Cells in Patients With Idiopathic Pulmonary Fibrosis. Chest. 2017 May;151(5):951-952. doi: 10.1016/j.chest.2016.12.015. No abstract available.
- Comella K, Blas JAP, Ichim T, Lopez J, Limon J, Moreno RC. Autologous Stromal Vascular Fraction in the Intravenous Treatment of End-Stage Chronic Obstructive Pulmonary Disease: A Phase I Trial of Safety and Tolerability. J Clin Med Res. 2017 Aug;9(8):701-708. doi: 10.14740/jocmr3072w. Epub 2017 Jul 1.
- Michalek J, Vrablikova A, Heinrich KG, Dudasova Z. Stromal Vascular Fraction Cell Therapy for a Stroke Patient-Cure without Side Effects. Brain Sci. 2019 Mar 6;9(3):55. doi: 10.3390/brainsci9030055.
- Gutta S, Grobe N, Kumbaji M, Osman H, Saklayen M, Li G, Elased KM. Increased urinary angiotensin converting enzyme 2 and neprilysin in patients with type 2 diabetes. Am J Physiol Renal Physiol. 2018 Aug 1;315(2):F263-F274. doi: 10.1152/ajprenal.00565.2017. Epub 2018 Mar 21.
- Giannandrea M, Parks WC. Diverse functions of matrix metalloproteinases during fibrosis. Dis Model Mech. 2014 Feb;7(2):193-203. doi: 10.1242/dmm.012062.
- Pardo A, Cabrera S, Maldonado M, Selman M. Role of matrix metalloproteinases in the pathogenesis of idiopathic pulmonary fibrosis. Respir Res. 2016 Mar 4;17:23. doi: 10.1186/s12931-016-0343-6.
- Crestani B, Marchand-Adam S, Quesnel C, Plantier L, Borensztajn K, Marchal J, Mailleux A, Soler P, Dehoux M. Hepatocyte growth factor and lung fibrosis. Proc Am Thorac Soc. 2012 Jul;9(3):158-63. doi: 10.1513/pats.201202-018AW.
- Castro LL, Kitoko JZ, Xisto DG, Olsen PC, Guedes HLM, Morales MM, Lopes-Pacheco M, Cruz FF, Rocco PRM. Multiple doses of adipose tissue-derived mesenchymal stromal cells induce immunosuppression in experimental asthma. Stem Cells Transl Med. 2020 Feb;9(2):250-260. doi: 10.1002/sctm.19-0120. Epub 2019 Nov 20.
- Zakhari JS, Zabonick J, Gettler B, Williams SK. Vasculogenic and angiogenic potential of adipose stromal vascular fraction cell populations in vitro. In Vitro Cell Dev Biol Anim. 2018 Jan;54(1):32-40. doi: 10.1007/s11626-017-0213-7. Epub 2017 Dec 1.
- Carstens MH, Gomez A, Cortes R, Turner E, Perez C, Ocon M, Correa D. Non-reconstructable peripheral vascular disease of the lower extremity in ten patients treated with adipose-derived stromal vascular fraction cells. Stem Cell Res. 2017 Jan;18:14-21. doi: 10.1016/j.scr.2016.12.001. Epub 2016 Dec 8.
Studierekorddatoer
Studer hoveddatoer
Studiestart (Faktiske)
Primær fullføring (Faktiske)
Studiet fullført (Faktiske)
Datoer for studieregistrering
Først innsendt
Først innsendt som oppfylte QC-kriteriene
Først lagt ut (Faktiske)
Oppdateringer av studieposter
Sist oppdatering lagt ut (Faktiske)
Siste oppdatering sendt inn som oppfylte QC-kriteriene
Sist bekreftet
Mer informasjon
Begreper knyttet til denne studien
Ytterligere relevante MeSH-vilkår
Andre studie-ID-numre
- CIRE.112
Legemiddel- og utstyrsinformasjon, studiedokumenter
Studerer et amerikansk FDA-regulert medikamentprodukt
Studerer et amerikansk FDA-regulert enhetsprodukt
produkt produsert i og eksportert fra USA
Denne informasjonen ble hentet direkte fra nettstedet clinicaltrials.gov uten noen endringer. Hvis du har noen forespørsler om å endre, fjerne eller oppdatere studiedetaljene dine, vennligst kontakt register@clinicaltrials.gov. Så snart en endring er implementert på clinicaltrials.gov, vil denne også bli oppdatert automatisk på nettstedet vårt. .