- ICH GCP
- Реестр клинических исследований США
- Клиническое испытание NCT06304623
SVF для лечения легочного фиброза после COVID-19 (SVFCOVID-19)
Роль клеточной терапии с использованием SVF-клеток (стромально-сосудистой фракции) жирового происхождения в лечении легочного фиброза после COVID-19
Общее описание исследования
Это проспективное многоцентровое интервенционное исследование расширенного доступа с участием субъектов, выздоровевших от пневмонии, вызванной COVID-19, для оценки их реакции на внутривенное введение аутологичного СВФ, полученного из жировой ткани.
Основная цель
Целью данного исследования было оценить безопасность однократных внутривенных инъекций аутологичного СВФ, полученного из жировой ткани, полученного с использованием системы устройств GID SVF-2, для лечения вторичной респираторной недостаточности, связанной с COVID-19.
Вторичная цель
Оценить эффективность первоначального лечения SVF IV.
Обзор исследования
Статус
Условия
Вмешательство/лечение
Подробное описание
Недавняя вспышка коронавируса 2 (SARS-CoV-2) быстро распространилась по всему миру, что привело к глобальной пандемии с разрушительными социально-экономическими последствиями. После объявления Всемирной организацией здравоохранения (ВОЗ) чрезвычайной ситуации в области общественного здравоохранения возникла острая необходимость в разработке эффективных терапевтических стратегий для пациентов с COVID-19, находящихся в критическом состоянии. Этот новый штамм вируса вызывает сложное заболевание с широким спектром проявлений: от легких симптомов до полиорганной недостаточности. Общей чертой тяжелых случаев является патологически сложный «цитокиновый шторм», который проявляется как чрезмерный иммунный ответ с быстрым прогрессированием заболевания и высокой смертностью. В частности, тяжелые исходы SARS CoV-2 связаны с повышенным уровнем С-реактивного белка и интерлейкина-6 в легких. Инфекция COVID-19 может быстро декомпенсировать тяжелую дыхательную недостаточность, требующую интубации и искусственной вентиляции легких. Потребность в искусственной вентиляции легких предвещает плохой прогноз: зарегистрированный уровень смертности достигает 88%.
Выжившие после пневмонии COVID-19 сталкиваются с последствиями заболевания, которые поражают несколько систем органов. В частности, у значительного числа пациентов продолжаются проблемы с одышкой и снижением оксигенации, что превращает ранее здоровых пациентов в вызванных вирусом легочных инвалидов. Механизмом этого является интенсивное рубцевание и разрушение микроциркуляции, обнаруженное в легких у перенесших Covid-19. Существует острая необходимость в разработке протоколов лечения, способных снизить степень легочного фиброза и стимулировать местный ангиогенез для лучшей поддержки поврежденных альвеол.
В последние десятилетия мезенхимальные стромальные клетки (МСК) стали потенциальным терапевтическим агентом для клеточной терапии благодаря благотворному влиянию на иммуномодуляцию и восстановление/регенерацию тканей. Эти клетки обладают уникальными свойствами самообновления и способностью дифференцироваться в несколько линий. МСК обнаруживаются в небольших количествах в костном мозге (КМСК) и ткани пуповины. МСК также обнаруживаются в жировой ткани (называемой АСК), где они существуют как часть многоклеточной популяции, стромально-сосудистой фракции (СВФ). Популяции ASC на 500-1000 более многочисленны, чем их костномозговые аналоги.
Жировая ткань является источником стромально-сосудистой фракции (СВФ), которую можно выделить и трансплантировать пациенту во время той же хирургической процедуры в месте оказания медицинской помощи. СВФ представляет собой гетерогенную смесь стромальных клеток-предшественников, перицитов, эндотелиальных клеток-предшественников и макрофагов. Было показано, что, действуя коллективно, СВФ обладает широкими противовоспалительными и регенеративными свойствами. Было показано, что СВФ безопасен после внутривенного введения и показал некоторые многообещающие результаты в восстановлении дыхательной функции у пациентов с тяжелыми заболеваниями легких. На основании общедоступного анализа данных секвенирования одноклеточной РНК (scRNA-seq) SVF демонстрирует отсутствие экспрессии ACE2, что указывает на его потенциал как фенотипа устойчивости к инфекции SARS-CoV-2. В совокупности внутривенное введение SVF, полученного из жировой ткани, представлено как новый подход к лечению, позволяющий улучшить клинические результаты у пациентов с респираторными нарушениями, вызванными COVID-19.
Клиническое воздействие СВФ на COVID-19 основано на 5 механизмах действия. Они широко документированы (см. прилагаемые публикации и библиографию).
Противовоспалительная иммуномодуляция, особенно Т-рег. Антифиброз. Матриксные металлопротеиназы и фактор роста печени. Поддержка регенеративных популяций клеток in situ. Легочная астма изучает ангиогенез в ишемических условиях, основанный на высвобождении VEGF.
Терапия клетками SVF из жировой ткани имеет преимущества, поскольку большое количество клеток можно удалить из небольших объемов (30–90 куб.см) с помощью минимально инвазивной процедуры липосакции.
Индикация расширенного доступа
Это исследование расширенного доступа для лечения небольшой группы пациентов с легочными последствиями после выздоровления от пневмонии, вызванной COVID-19, с использованием аутологичного СВФ, полученного из жировой ткани, в виде однократной внутривенной инъекции.
Цели клинических исследований
Главная цель
Оценить безопасность однократной инъекции аутологичного СВФ, полученного из жировой ткани, полученного с помощью устройства GID SVF-2, для лечения респираторного дистресс-синдрома.
связанные с COVID-19.
Вторичная цель
Для оценки эффективности путем (1) поддержания насыщения SaO2 ≥ на существующем уровне при неинвазивной кислородной поддержке, (2) достижения снижения уровня кислородной поддержки, необходимого для поддержания SaO2 ≥ 92, с помощью внутривенной инъекции аутологичного SVF, полученного из жировой ткани, полученного с использованием система устройств ГИД СВФ-2 для лечения респираторного дистресс-синдрома, связанного с COVID-19.
Ожидаемая продолжительность клинического исследования
Последующий контроль через 3, 6, 9 и 12 месяцев. Общая продолжительность обучения – 1 год.
Клинический протокол
Дизайн исследования
Общий дизайн исследования
Это проспективное многоцентровое интервенционное исследование расширенного доступа с участием пациентов с COVID-19. Лечение прошли сорок (40) субъектов с подтвержденным COVID-19 и SaO2 ≤ 92. Субъектам вводили внутривенную инъекцию аутологичного SVF, полученного из жировой ткани. За субъектами будут наблюдать в течение 6 недель.
Процедуры исследования
Процедуры обнаружения
Первоначальная оценка проводилась в местном Центре спасения. Затем субъектов направляли в HEODRA или HECAM для подтверждения диагноза и дополнительных тестов.
Сопутствующие препараты
Принимаются все сопутствующие лекарства, считающиеся стандартом лечения. Форма отчета о случае сопутствующего приема лекарств будет заполняться при каждом последующем визите субъекта.
Краткое описание исследуемого лечения
40 нерандомизированных пациентов будут лечиться аутологичным СВФ. Минимальная дозировка: 45x106 ± 5x106 клеток. План лечения: однократное вмешательство.
Контрольные образцы сыворотки (20 куб.см) – факторы воспаления: 1 месяц, 3 месяца, 6 месяцев PFT + DLco: до операции, 1 месяц, 3 месяца, 6 месяцев, недели и 12 месяцев КТ: до операции, 3 месяца, 6 месяцев, 12-месячный опросник качества жизни SF-36 SF-36 (Medical Outcomes Trust): предоперационный, 12-месячный респираторный опросник SGRQ-C SGRQ-C (St. Университет Джорджа): до операции, 12 месяцев.
Жировая ткань субъекта будет получена путем липосакции живота или боков и помещена непосредственно в устройство GID SVF-2. Собранную жировую ткань ферментативно расщепляют в том же устройстве GID SVF-2 с использованием фермента GIDZyme-2-70 и центрифугируют в том же устройстве GID SVF-2 для концентрирования клеток SVF. Клетки SVF будут удалены, и активная лечебная доза 45 x 106 (±5 x 106) клеток SVF будет введена в пакет для внутривенного вливания емкостью 100 мл, содержащий LR. Жидкости будут вводиться через внутривенный катетер через фильтр крови в течение 10 минут.
Дозировка
Приготовление дозы
Используя LunaStem® Nucleocounter «Концентрация клеток и коэффициент разведения 100», рассчитайте необходимый объем, используя следующее уравнение, и перенесите это количество ресуспензии в шприц емкостью 10 мл.
#мл = доза = 40 x 106 (+/- 5x106)
Введение дозы Способ введения SVF для сосудистого применения одинаков как внутривенный (IV), так и внутривенный (IA).
Лечение проводилось внутривенно с использованием внутривенного катетера с кровяным фильтром.
Добавьте дозу в пакетик LR емкостью 100 мл, нагретый до 37°C, и хорошо перемешайте. Вводить 100 мл в течение 10 минут.
Приверженность лечению
У каждого участника было время прочитать форму согласия и задать вопросы об исследовании, прежде чем подписать информированное согласие. Субъекты должны связаться с врачом или персоналом, если у участника возникнут какие-либо проблемы во время исследования. Будет подчеркнуто, что субъект должен соблюдать протокол и честно рассказывать о своих симптомах.
Отстранение субъектов за несоответствие
Субъекты могут быть исключены из исследования по усмотрению главного исследователя только по причинам, связанным с исследованиями исследования, которые могут поставить под угрозу здоровье и/или благополучие субъекта, если участники продолжат участие в исследовании. Субъекты могут добровольно выйти из исследования в любое время без ущерба для себя.
• Субъекты, исключенные из участия, не будут заменены, если участник получал исследуемое лечение.
График учебных визитов
Первоначальная оценка и информированное согласие проводились в больницах. Перед лечением субъектов оценивали, чтобы определить, соответствуют ли участники критериям включения/исключения. Если это еще не было предоставлено, собирались демографические данные, история болезни, сопутствующие лекарства, SaO2 и газы артериальной крови. Субъект был включен в исследование, если участник соответствовал всем критериям отбора и подписал информированное согласие.
Время между регистрацией и лечением не превышало 48 часов.
В день лечения каждого субъекта повторно оценивали для включения в исследование.
Тип исследования
Регистрация (Действительный)
Фаза
- Фаза 1
Контакты и местонахождение
Места учебы
-
-
-
Matagalpa, Никарагуа, 61000
- Hospital Escuela Cesar Amador Molina
-
-
Leon
-
León, Leon, Никарагуа, 21000
- Hospital Escuela Oscar Danilo Rosales Arguello (HEODRA)
-
-
Критерии участия
Критерии приемлемости
Возраст, подходящий для обучения
- Взрослый
- Пожилой взрослый
Принимает здоровых добровольцев
Описание
Критерии включения:
Пациенты были выявлены в местных медицинских центрах в Манагуа и Леоне (Никарагуа) и проверены на соответствие требованиям врачами-исследователями.
- Сорок пациентов с ПЦР-подтвержденным Covid-19
- Стойкие легочные жалобы на одышку в течение как минимум 2 месяцев после выписки из больницы.
- Возраст 18 - 85 лет.
- Мужчина или женщина.
- Индекс массы тела > 22.
- Форсированная жизненная емкость (ФЖЕЛ) > 40% прогнозируемого и <70% прогнозируемого
- Диффузная емкость легких по угарному газу (DLCO) > 20% прогнозируемой и <70% прогнозируемой.
Критерий исключения:
- Использование домашнего кислорода
- В анамнезе злокачественные новообразования легких.
- Иммунодепрессивное медикаментозное лечение
- Перенесенное заболевание сердца в анамнезе с фракцией выброса ≤30%
- Диабет
- Беременность или планы зачатия в период исследования.
- Участие в другом клиническом исследовании.
Учебный план
Как устроено исследование?
Детали дизайна
- Основная цель: Уход
- Распределение: Н/Д
- Интервенционная модель: Одногрупповое задание
- Маскировка: Нет (открытая этикетка)
Оружие и интервенции
Группа участников / Армия |
Вмешательство/лечение |
|---|---|
|
Экспериментальный: Лечение клетками SVF
40 субъектам было проведено внутривенное лечение аутологичным СВФ.
|
Субъектам вводили внутривенную инъекцию аутологичного SVF, полученного из жировой ткани.
|
Что измеряет исследование?
Первичные показатели результатов
Мера результата |
Мера Описание |
Временное ограничение |
|---|---|---|
|
Безопасность лечения СВФ IV
Временное ограничение: До 12 месяцев после инъекции.
|
Ни у одного из участников с потенциальными тяжелыми нежелательными явлениями со стороны легких (SAE) не было связано с инфузией клеток SVF или однократной внутривенной инъекцией аутологичного SVF, полученного из жировой ткани, полученного с использованием системы устройств GID SVF-2.
|
До 12 месяцев после инъекции.
|
Вторичные показатели результатов
Мера результата |
Мера Описание |
Временное ограничение |
|---|---|---|
|
Эффективность первоначального лечения SVF IV
Временное ограничение: До 12 месяцев
|
У всех субъектов с симптомами одышки улучшилось: механическая функция легких по данным спирометрии увеличилась, форсированная жизненная емкость легких (ФЖЕЛ).
|
До 12 месяцев
|
Другие показатели результатов
Мера результата |
Мера Описание |
Временное ограничение |
|---|---|---|
|
Эффективность первоначального лечения СВФ IV
Временное ограничение: До 12 месяцев
|
У всех субъектов с альвеолярно-капиллярной диффузией кислорода повышена с использованием показателя диффузионной способности легких по монооксиду углерода (DLCO).
|
До 12 месяцев
|
Соавторы и исследователи
Спонсор
Соавторы
Следователи
- Директор по исследованиям: Carlos Lopez, MD, Hospital Escuela Oscar Danilo Rosales, Leon (HEODRA)
- Директор по исследованиям: Yanury Dolmus, MD, Hospital Escuela Cesar Amador Molina, Matagalpa (HECAM)
Публикации и полезные ссылки
Общие публикации
- Huang C, Wang Y, Li X, Ren L, Zhao J, Hu Y, Zhang L, Fan G, Xu J, Gu X, Cheng Z, Yu T, Xia J, Wei Y, Wu W, Xie X, Yin W, Li H, Liu M, Xiao Y, Gao H, Guo L, Xie J, Wang G, Jiang R, Gao Z, Jin Q, Wang J, Cao B. Clinical features of patients infected with 2019 novel coronavirus in Wuhan, China. Lancet. 2020 Feb 15;395(10223):497-506. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30183-5. Epub 2020 Jan 24. Erratum In: Lancet. 2020 Jan 30;:
- Guan WJ, Ni ZY, Hu Y, Liang WH, Ou CQ, He JX, Liu L, Shan H, Lei CL, Hui DSC, Du B, Li LJ, Zeng G, Yuen KY, Chen RC, Tang CL, Wang T, Chen PY, Xiang J, Li SY, Wang JL, Liang ZJ, Peng YX, Wei L, Liu Y, Hu YH, Peng P, Wang JM, Liu JY, Chen Z, Li G, Zheng ZJ, Qiu SQ, Luo J, Ye CJ, Zhu SY, Zhong NS; China Medical Treatment Expert Group for Covid-19. Clinical Characteristics of Coronavirus Disease 2019 in China. N Engl J Med. 2020 Apr 30;382(18):1708-1720. doi: 10.1056/NEJMoa2002032. Epub 2020 Feb 28.
- Mehta P, McAuley DF, Brown M, Sanchez E, Tattersall RS, Manson JJ; HLH Across Speciality Collaboration, UK. COVID-19: consider cytokine storm syndromes and immunosuppression. Lancet. 2020 Mar 28;395(10229):1033-1034. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30628-0. Epub 2020 Mar 16. No abstract available.
- Coronaviridae Study Group of the International Committee on Taxonomy of Viruses. The species Severe acute respiratory syndrome-related coronavirus: classifying 2019-nCoV and naming it SARS-CoV-2. Nat Microbiol. 2020 Apr;5(4):536-544. doi: 10.1038/s41564-020-0695-z. Epub 2020 Mar 2.
- Weiss P, Murdoch DR. Clinical course and mortality risk of severe COVID-19. Lancet. 2020 Mar 28;395(10229):1014-1015. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30633-4. Epub 2020 Mar 17. No abstract available.
- Nguyen A, Guo J, Banyard DA, Fadavi D, Toranto JD, Wirth GA, Paydar KZ, Evans GR, Widgerow AD. Stromal vascular fraction: A regenerative reality? Part 1: Current concepts and review of the literature. J Plast Reconstr Aesthet Surg. 2016 Feb;69(2):170-9. doi: 10.1016/j.bjps.2015.10.015. Epub 2015 Oct 31.
- Guo J, Nguyen A, Banyard DA, Fadavi D, Toranto JD, Wirth GA, Paydar KZ, Evans GR, Widgerow AD. Stromal vascular fraction: A regenerative reality? Part 2: Mechanisms of regenerative action. J Plast Reconstr Aesthet Surg. 2016 Feb;69(2):180-8. doi: 10.1016/j.bjps.2015.10.014. Epub 2015 Oct 24.
- Turner AJ, Hiscox JA, Hooper NM. ACE2: from vasopeptidase to SARS virus receptor. Trends Pharmacol Sci. 2004 Jun;25(6):291-4. doi: 10.1016/j.tips.2004.04.001.
- Leng Z, Zhu R, Hou W, Feng Y, Yang Y, Han Q, Shan G, Meng F, Du D, Wang S, Fan J, Wang W, Deng L, Shi H, Li H, Hu Z, Zhang F, Gao J, Liu H, Li X, Zhao Y, Yin K, He X, Gao Z, Wang Y, Yang B, Jin R, Stambler I, Lim LW, Su H, Moskalev A, Cano A, Chakrabarti S, Min KJ, Ellison-Hughes G, Caruso C, Jin K, Zhao RC. Transplantation of ACE2- Mesenchymal Stem Cells Improves the Outcome of Patients with COVID-19 Pneumonia. Aging Dis. 2020 Mar 9;11(2):216-228. doi: 10.14336/AD.2020.0228. eCollection 2020 Apr.
- Caplan AI, Correa D. The MSC: an injury drugstore. Cell Stem Cell. 2011 Jul 8;9(1):11-5. doi: 10.1016/j.stem.2011.06.008.
- Nauta AJ, Fibbe WE. Immunomodulatory properties of mesenchymal stromal cells. Blood. 2007 Nov 15;110(10):3499-506. doi: 10.1182/blood-2007-02-069716. Epub 2007 Jul 30.
- Chamberlain G, Fox J, Ashton B, Middleton J. Concise review: mesenchymal stem cells: their phenotype, differentiation capacity, immunological features, and potential for homing. Stem Cells. 2007 Nov;25(11):2739-49. doi: 10.1634/stemcells.2007-0197. Epub 2007 Jul 26.
- WHO Director-General's opening remarks at the media briefing on COVID-19 - 11 March2020. https://www.who.int/dg/speeches/detail/who-director-general-s-opening-remarks-at-the- media-briefing-on-covid-19---11-march-2020. Published 2020
- Jiang S, Du L, Shi Z. An emerging coronavirus causing pneumonia outbreak in Wuhan, China: calling for developing therapeutic and prophylactic strategies. Emerg Microbes Infect. 2020 Jan 31;9(1):275-277. doi: 10.1080/22221751.2020.1723441. eCollection 2020. No abstract available. Erratum In: Emerg Microbes Infect. 2020 Dec;9(1):539.
- Pittenger MF, Discher DE, Peault BM, Phinney DG, Hare JM, Caplan AI. Mesenchymal stem cell perspective: cell biology to clinical progress. NPJ Regen Med. 2019 Dec 2;4:22. doi: 10.1038/s41536-019-0083-6. eCollection 2019.
- Le Blanc K, Davies LC. Mesenchymal stromal cells and the innate immune response. Immunol Lett. 2015 Dec;168(2):140-6. doi: 10.1016/j.imlet.2015.05.004. Epub 2015 May 15.
- Brown, P, Katz AJ. Adipose -derived stem cells In: Atala A (ed). Textbook of Regenerative Medicine Elsevier, 3rd ed. 2019, pp.
- Kapur SK, Dos-Anjos Vilaboa S, Llull R, Katz AJ. Adipose tissue and stem/progenitor cells: discovery and development. Clin Plast Surg. 2015 Apr;42(2):155-67. doi: 10.1016/j.cps.2014.12.010.
- Regmi S, Pathak S, Kim JO, Yong CS, Jeong JH. Mesenchymal stem cell therapy for the treatment of inflammatory diseases: Challenges, opportunities, and future perspectives. Eur J Cell Biol. 2019 Dec;98(5-8):151041. doi: 10.1016/j.ejcb.2019.04.002. Epub 2019 Apr 14.
- Limper AH. Safety of IV Human Mesenchymal Stem Cells in Patients With Idiopathic Pulmonary Fibrosis. Chest. 2017 May;151(5):951-952. doi: 10.1016/j.chest.2016.12.015. No abstract available.
- Comella K, Blas JAP, Ichim T, Lopez J, Limon J, Moreno RC. Autologous Stromal Vascular Fraction in the Intravenous Treatment of End-Stage Chronic Obstructive Pulmonary Disease: A Phase I Trial of Safety and Tolerability. J Clin Med Res. 2017 Aug;9(8):701-708. doi: 10.14740/jocmr3072w. Epub 2017 Jul 1.
- Michalek J, Vrablikova A, Heinrich KG, Dudasova Z. Stromal Vascular Fraction Cell Therapy for a Stroke Patient-Cure without Side Effects. Brain Sci. 2019 Mar 6;9(3):55. doi: 10.3390/brainsci9030055.
- Gutta S, Grobe N, Kumbaji M, Osman H, Saklayen M, Li G, Elased KM. Increased urinary angiotensin converting enzyme 2 and neprilysin in patients with type 2 diabetes. Am J Physiol Renal Physiol. 2018 Aug 1;315(2):F263-F274. doi: 10.1152/ajprenal.00565.2017. Epub 2018 Mar 21.
- Giannandrea M, Parks WC. Diverse functions of matrix metalloproteinases during fibrosis. Dis Model Mech. 2014 Feb;7(2):193-203. doi: 10.1242/dmm.012062.
- Pardo A, Cabrera S, Maldonado M, Selman M. Role of matrix metalloproteinases in the pathogenesis of idiopathic pulmonary fibrosis. Respir Res. 2016 Mar 4;17:23. doi: 10.1186/s12931-016-0343-6.
- Crestani B, Marchand-Adam S, Quesnel C, Plantier L, Borensztajn K, Marchal J, Mailleux A, Soler P, Dehoux M. Hepatocyte growth factor and lung fibrosis. Proc Am Thorac Soc. 2012 Jul;9(3):158-63. doi: 10.1513/pats.201202-018AW.
- Castro LL, Kitoko JZ, Xisto DG, Olsen PC, Guedes HLM, Morales MM, Lopes-Pacheco M, Cruz FF, Rocco PRM. Multiple doses of adipose tissue-derived mesenchymal stromal cells induce immunosuppression in experimental asthma. Stem Cells Transl Med. 2020 Feb;9(2):250-260. doi: 10.1002/sctm.19-0120. Epub 2019 Nov 20.
- Zakhari JS, Zabonick J, Gettler B, Williams SK. Vasculogenic and angiogenic potential of adipose stromal vascular fraction cell populations in vitro. In Vitro Cell Dev Biol Anim. 2018 Jan;54(1):32-40. doi: 10.1007/s11626-017-0213-7. Epub 2017 Dec 1.
- Carstens MH, Gomez A, Cortes R, Turner E, Perez C, Ocon M, Correa D. Non-reconstructable peripheral vascular disease of the lower extremity in ten patients treated with adipose-derived stromal vascular fraction cells. Stem Cell Res. 2017 Jan;18:14-21. doi: 10.1016/j.scr.2016.12.001. Epub 2016 Dec 8.
Даты записи исследования
Изучение основных дат
Начало исследования (Действительный)
Первичное завершение (Действительный)
Завершение исследования (Действительный)
Даты регистрации исследования
Первый отправленный
Впервые представлено, что соответствует критериям контроля качества
Первый опубликованный (Действительный)
Обновления учебных записей
Последнее опубликованное обновление (Действительный)
Последнее отправленное обновление, отвечающее критериям контроля качества
Последняя проверка
Дополнительная информация
Термины, связанные с этим исследованием
Дополнительные соответствующие термины MeSH
Другие идентификационные номера исследования
- CIRE.112
Информация о лекарствах и устройствах, исследовательские документы
Изучает лекарственный продукт, регулируемый FDA США.
Изучает продукт устройства, регулируемый Управлением по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов США.
продукт, произведенный в США и экспортированный из США.
Эта информация была получена непосредственно с веб-сайта clinicaltrials.gov без каких-либо изменений. Если у вас есть запросы на изменение, удаление или обновление сведений об исследовании, обращайтесь по адресу register@clinicaltrials.gov. Как только изменение будет реализовано на clinicaltrials.gov, оно будет автоматически обновлено и на нашем веб-сайте. .