- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT04978545
Wpływ Ca(OH)2 na zapalenie przyzębia wierzchołkowego
Potencjalny wpływ wodorotlenku wapnia na preparację chemomechaniczną zębów z zapaleniem przyzębia wierzchołkowego po leczeniu: randomizowane badanie kliniczne
Przegląd badań
Status
Warunki
Interwencja / Leczenie
Szczegółowy opis
Kryteria kwalifikacyjne Populacja badana składała się z 16 pacjentów (6 kobiet i 10 mężczyzn, w wieku 19-63 lata, średnia wieku 34,43) zgłaszających się do kliniki endodontycznej w Stambule Medipol University Dental School w celu niechirurgicznego ponownego leczenia endodontycznego zębów ze zmianami zapalnymi przywierzchołków. Do badania włączono szesnaście zębów wcześniej leczonych kanałowo, wykazujących kliniczne i radiologiczne objawy przewlekłego zapalenia przyzębia w wierzchołku. Radiologicznie średnica przezierności okołowierzchołkowej wahała się od 2 do 7 mm. Zęby z pozabiegowym zapaleniem przyzębia wierzchołka miały leczenie endodontyczne zakończone ponad 2 lata wcześniej i wymagały ponownego leczenia. Końce wypełnień kanałów korzeniowych znajdowały się w odległości 0-4 mm od wierzchołka radiologicznego, bez przepełnienia. Zęby miały nienaruszone uzupełnienia koronowe, bez widocznej ekspozycji materiału wypełniającego korzenie na kontakt z jamą ustną. Wybrane zęby miały wystarczającą strukturę korony do odpowiedniej izolacji koferdamem i wykazywały brak kieszonek przyzębnych lub poziomu przyczepu głębszego niż 4 mm. Zastosowano również następujące kryteria wykluczenia: zęby pacjentów, którzy otrzymywali antybiotyki w ciągu ostatnich 3 miesięcy lub którzy mieli jakąkolwiek chorobę ogólną, zęby, których nie można było odpowiednio zaizolować koferdamem, zęby bez uszczelnienia wieńcowego, zęby z kieszonką przyzębną głębokość >4mm; oraz zęby ze złamaniem korony/korzeni. Od każdego pacjenta uwzględniono tylko jeden ząb.
Procedury leczenia kanałowego i pobieranie próbek Koferdam i technika aseptyczna były stosowane przez cały czas ponownego leczenia endodontycznego. Po usunięciu płytki nazębnej i izolacji koferdamu pole operacyjne oczyszczono 3% nadtlenkiem wodoru i zdezynfekowano 2,5% roztworem NaOCl. Następnie usunięto wszystkie uzupełnienia koronowe, wkłady i ubytki próchnicowe oraz zakończono preparację dostępu po prawidłowym odsłonięciu wypełnienia kanału korzeniowego. Następnie ząb (wraz z komorą miazgi), klamrę i przylegający koferdam ponownie zdezynfekowano 2,5% NaOCl, a następnie inaktywowano 10% tiosiarczanem sodu, aby uniknąć interferencji z pobieraniem próbek bakteriologicznych. Próbki kontrolne sterylności (SR1) pobrano z powierzchni zęba sterylnym wacikiem Omni Swab (Whatman FTA, Sigma-Aldrich) z wysuwaną główką. Papierowe ćwieki przeniesiono do krioprobówek zawierających roztwór soli fizjologicznej buforowanej fosforanami (PBS) przechowywany w temperaturze -20°C. W każdym przypadku pobrano próbkę z pojedynczego kanału korzeniowego, aby ograniczyć ocenę mikrobiologiczną do jednego środowiska ekologicznego. W zębach wielokorzeniowych wybrano korzeń ze zmianą okołowierzchołkową. Jeśli we wszystkich korzeniach występowały zmiany okołowierzchołkowe, wybierano szerszy kanał. Dwa kanały uwzględnione w tym badaniu pochodziły z zębów jednokorzeniowych, 3 kanały policzkowe w zębach przedtrzonowych szczęki, 1 kanał podniebienny w zębach trzonowych szczęki i 10 kanałów dystalnych w zębach trzonowych żuchwy.
Stare wypełnienia korzeni usunięto wiertłami Gates-Glidden (Dentsply Maillefer, Ballaigues, Szwajcaria) i pilnikami endodontycznymi bez użycia rozpuszczalników chemicznych. Długość roboczą (WL) ustalono w odległości 1 mm od otworu wierzchołkowego za pomocą lokalizatora wierzchołka (Raypex6; VDW GmbH, Monachium, Niemcy), a następnie wykonano radiogramy okołowierzchołkowe, aby upewnić się, że usunięto cały materiał wypełniający. Płukanie sterylnym roztworem soli wykonano w celu usunięcia wszelkich pozostałości materiału i zwilżenia kanału przed pobraniem próbki. Następnie kanał pozostawiono wypełniony solą fizjologiczną, a mały instrument ręczny umieszczono w WL i delikatnie opiłowano ściany kanału. Z kanału korzeniowego pobrano wstępną próbkę mikrobiologiczną (S1) sterylnymi bibułkami umieszczanymi kolejno w WL. Do kanału korzeniowego wprowadzono trzy sterylne sączki papierowe w celu pobrania próbki. Każdy papierowy punkt pozostawiano w kanale na około 1 minutę. Zarówno sączki papierowe, jak i ręczny instrument endodontyczny, bez rękojeści, przeniesiono do krioprobówek zawierających 300 μl roztworu PBS, przechowywanych w temperaturze -20°C. Próbki zostały przekazane do laboratorium analiz genetycznych w celu dalszej analizy w łańcuchu chłodniczym.
Kanały korzeniowe opracowano przy użyciu pilników Revo S i obfitej irygacji 2,5% NaOCl. Kanały powiększono wierzchołkowo do rozmiaru 35 (AS35) na długości roboczej. Pomiędzy każdą zmianą instrumentu kanał korzeniowy płukano 5 ml 2,5% roztworu NaOCl. W sumie zużyto więc 30 ml roztworu do irygacji. Po zakończeniu instrumentacji warstwę mazistą usunięto za pomocą 17% EDTA, który pozostawiono w kanale na 3 minuty, a następnie 2,5% NaOCl. Kanał korzeniowy osuszono jałowymi sączkami papierowymi i przepłukano 2 ml 10% tiosiarczanu sodu przez 1 min w celu inaktywacji roztworu NaOCl. Następnie z kanałów pobrano próbkę (S2), jak opisano dla S1. Po opracowaniu kanał był leczony żelem Ca(OH)2 lub 2% chlorheksydyną w zależności od grupy badanej. W grupie CH proszek wodorotlenku wapnia (Calxyl; OCO Products, Dirnstein, Niemcy) zmieszano z solą fizjologiczną w stosunku 1:1 i pastę wprowadzono do kanału za pomocą spiral lentulo (Malleifer-Dentsply). W grupie CHX 2% żel chlorheksydyny (Gluco-Chex 2% żel, Cerkamed, Stalowa Wola, Polska) wprowadzano do kanałów korzeni tej grupy za pomocą Ultradent Capillary Tip (produkty Ultradent). Wszystkie kanały korzeniowe z 2 powyższych grup uszczelniono 1-milimetrowym wacikiem i co najmniej 3-milimetrową warstwą tymczasowego materiału wypełniającego (Cavit G; 3M ESPE AG, Seefeld, Niemcy).
Po 7 dniach ząb został odizolowany, usunięto uzupełnienie tymczasowe i przeprowadzono zabiegi dezynfekcji pola operacyjnego według tego samego protokołu co podczas pierwszej wizyty. Uzyskano nową próbkę kontrolną korony zęba i zębiny otaczającej komorę miazgi (SR2). Lek usunięto za pomocą 5 ml roztworu soli fizjologicznej i ostrożnie opiłowano kanał głównym pilnikiem wierzchołkowym. W przypadku grup stosujących Ca(OH)2 działanie przeciwdrobnoustrojowe wodorotlenku wapnia zneutralizowano 0,5% kwasem cytrynowym na okres 1 minuty, który następnie usunięto 5 ml roztworu soli. Tak więc dla grup z żelem CHX lek zobojętniono mieszaniną 0,3% L-α-lecytyny i 3% Tween 80 (Zamany A, Spangberg LS (2002) Skuteczna metoda inaktywacji chlorheksydyny. chirurgia jamy ustnej, medycyna jamy ustnej, patologia jamy ustnej, radiologia jamy ustnej i endodoncja). Następnie kanały korzeniowe przepłukano 2 ml roztworu soli fizjologicznej. Próbkę po podaniu leku (S3) uzyskano w taki sam sposób, jak pobrano próbkę przed podaniem leku i wysłano do analizy PCR.
Po końcowej procedurze pobierania próbek warstwę mazistą usunięto przez irygację 5 ml 17% EDTA, a następnie końcowe płukanie 10 ml wody destylowanej. Zakończenie leczenia kanałowego poprzedzone zostało wypełnieniem korzenia metodą kondensacji bocznej gutaperki. Ubytki dostępu uzupełniono żywicą kompozytową (Z250, 3M Corporation, Saint Paul, MN, USA) i wykonano końcowe zdjęcie rentgenowskie.
Całkowite obciążenie bakteryjne, a także ilość Enterococcus faecalis określono przed instrumentacją, po instrumentacji i zastosowaniu leków dokanałowych za pomocą ddPCR.
Izolacja genomowego DNA i pomiar stężenia DNA DNA ekstrahowano przy użyciu zestawu QIAamp DNA Mini Kit (Qiagen, Niemcy) zgodnie z protokołem zalecanym przez producenta. Przed izolacją DNA próbki (probówki z papierowymi sączkami) trawiono w temperaturze 50-60°C przez worteksowanie przez 30 sekund co 10 minut, aby zapewnić dezagregację wszystkich bakterii do roztworu PBS. Następnie z zawiesiny aseptycznie usunięto sączki papierowe i zawiesinę bakteryjną osadzono przez wirowanie przez 10 minut przy 5000 g. Następnie osad ponownie zawieszono w 180 ul buforu ATL dostarczonego przez QIAamp DNA Mini Kit (QIAGEN GmbH, Hilden, Niemcy) i dodano 20 ul proteinazy K (20 mg/ml). Próbki inkubowano przez 3 godziny w temperaturze 56°C. Następnie wyizolowano całkowity bakteryjny genomowy DNA zgodnie z protokołem zestawu QIAamp DNA Mini Kit. Końcowa objętość roztworu DNA każdej próbki wynosiła 150 μl i została uwzględniona podczas obliczeń. Stężenie DNA (absorbancję przy 260 nm) określono za pomocą spektrofotometru (Promega Quantifluor).
Amplifikacja genów 16S rRNA W tym badaniu zaprojektowano startery dla genów Universal i Enterococcus 16S rRNA. Po ekstrakcji DNA z próbek za pomocą zestawu QIAamp DNA Mini Kit sekwencje 16S rRNA o długości 700–800 pz zamplifikowano przy użyciu uniwersalnego startera do przodu E8F (5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3') i uniwersalnego startera do tyłu E1115R (5'-AGGGTTGCGCTCGTTG-3') 59. Końcową objętość reakcji PCR dla każdego wyizolowanego szczepu bakteryjnego doprowadzono do 25 µl. Reakcje amplifikacji genów 16S rRNA przeprowadzono w następujących warunkach. 1 cykl wstępnej denaturacji w 95°C przez 3 minuty, 35 cykli w 95°C przez 30 sekund, 55°C przez 30 sekund i 72°C przez 30 sekund, które są kontynuowane z końcowym etapem wydłużania w 72°C przez 10 minut .
Produkty PCR analizowano metodą elektroforezy z użyciem 2% żelu agarozowego (zawierającego bromek etydyny) w buforze Tris/BoratE/EDTA (TBE), przy czym żele analizowano w świetle ultrafioletowym (przy 140 V przez 20 minut). Ich obrazy wizualizowano w świetle ultrafioletowym. Ponadto kontrolę i optymalizację starterów do ddPCR przeprowadzono również w konwencjonalnym PCR.
Oczyszczanie i sekwencjonowanie genu 16S rRNA Po reakcjach PCR oczyszczanie produktów PCR odbywa się poprzez hydrolizę nadmiaru starterów i nukleotydów za pomocą ExoSap-IT (Thermo, PN: 78201.1.ML) zawierającego enzymy egzonukleazy I i fosfatazy alkalicznej. 2 µl ExoSap-IT zmieszano z 5 µl produktu PCR dla każdej próbki. Reakcję ExoSap przeprowadza się w temperaturze 37°C przez 15 minut (aktywacja enzymu), a następnie przez 15 minut (inaktywacja) w temperaturze 80°C. Reakcje sekwencjonowania przeprowadzono stosując zestaw do cyklicznego sekwencjonowania Bigdye™ Terminator v3.1 (Thermo). Reakcje przeprowadzono zgodnie z instrukcją zestawu dla wszystkich wyizolowanych szczepów.
Po oczyszczeniu produktów za pomocą Exosap, reakcję sekwencyjną przeprowadzono za pomocą zestawu BigDye Terminator v3.1 Cycle Sequencing Kit (Thermo) w następujących warunkach. Po sekwencji PCR produkty BigDye oczyszczono metodą okrężnicy. Do tego procesu użyto zestawu Zymo ZR DNA Sequencing Clean-up Kit (Zymo Research, USA). Wszystkie próbki oczyszczono zgodnie z protokołem podanym w zestawie i wykonano na analizatorze genetycznym 3130XL.
Droplet Digital PCR (ddPCR) Droplet Digital PCR (ddPCR) przeprowadzono stosując startery zaprojektowane zgodnie z regionem 16S rRNA specyficznym dla wszystkich bakterii i gatunków Enterococcus faecalis, po zsekwencjonowaniu, bezwzględnym oznaczeniu ilościowym gatunków bakterii znalezionych w próbce papierowej. Pary starterów to 16S-F-5'-AGGGAATCTTCSGCAATGGG-3' i 16S-R-5'-ACGCCCAATAAATCCGGACA-'3 dla wszystkich bakterii oraz ENT-F-5'-CGCTTCTTTCCTCCCGAGT-3' i ENT-R-5'-GCCATGCGGCATAAACTG Pary starterów -3' dla Enterococcus Faecalis. W reakcji PCR amplikony zamplifikowane z nieoznakowanymi parami starterów analizowano przez znakowanie barwnikiem Eva-Green. W celu bezwzględnego oznaczenia ilościowego Enterococcus i całkowitego rRNA 16S przeprowadzono PCR z dwiema parami starterów z tej samej próbki. 20 µl mieszaniny PCR zawierającej 10 µl 2X ddPCR EvaGreen Supermix (Bio-Rad, nr kat. NIE. 1864034), 9 µl wody wolnej od nukleaz, 0,25 µl startera do przodu i do tyłu oraz 2 ng DNA z każdej próbki Warunki cykli termicznych były następujące: 95◦C przez 5 min, następnie 40 cykli w 95◦C przez 30 s i 60°C przez 1 min i dwa końcowe etapy w 4°C przez 5 minut i 90°C przez 5 minut z nieskończonym utrzymywaniem w 4°C. Po zakończeniu PCR szczelnie zamkniętą płytkę przeniesiono do uchwytu płytki czytnika kropli QX200 (Bio-Rad, nr kat. NIE. 1864003).
Typ studiów
Zapisy (Rzeczywisty)
Faza
- Nie dotyczy
Kontakty i lokalizacje
Lokalizacje studiów
-
-
Esenler
-
Istanbul, Esenler, Indyk
- Istanbul Medipol University, Faculty of Dentistry
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
Akceptuje zdrowych ochotników
Opis
Kryteria przyjęcia:
- zęby leczone kanałowo wykazujące kliniczne i radiologiczne objawy przewlekłego zapalenia przyzębia wierzchołkowego
- Zęby z pozabiegowym zapaleniem przyzębia wierzchołka miały leczenie endodontyczne zakończone ponad 2 lata wcześniej i wymagały ponownego leczenia.
- Radiologicznie średnica przezierności okołowierzchołkowej wahała się od 2 do 7 mm.
- Końce wypełnień kanałów korzeniowych znajdowały się w odległości 0-4 mm od wierzchołka radiologicznego, bez przepełnienia.
- Zęby miały nienaruszone uzupełnienia koronowe, bez widocznej ekspozycji materiału wypełniającego korzenie na kontakt z jamą ustną.
- Wybrane zęby miały wystarczającą strukturę korony do odpowiedniej izolacji koferdamem i wykazywały brak kieszonek przyzębnych lub poziomu przyczepu głębszego niż 4 mm.
Kryteria wyłączenia:
- zęby pacjentów, którzy otrzymywali antybiotyki w ciągu ostatnich 3 miesięcy lub cierpieli na jakąkolwiek chorobę ogólną, zęby, których nie można było prawidłowo odizolować koferdamem, zęby bez uszczelnienia wieńcowego, zęby z kieszonkami przyzębnymi o głębokości >4 mm; oraz zęby ze złamaniem korony/korzeni. Od każdego pacjenta uwzględniono tylko jeden ząb.
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Główny cel: Leczenie
- Przydział: Randomizowane
- Model interwencyjny: Przydział równoległy
- Maskowanie: Podwójnie
Broń i interwencje
Grupa uczestników / Arm |
Interwencja / Leczenie |
---|---|
Eksperymentalny: wodorotlenek wapnia
Uczestnicy otrzymywali wodorotlenek wapnia jako lek dokanałowy przez okres jednego tygodnia
|
W grupie CH proszek wodorotlenku wapnia (Calxyl; OCO Products, Dirnstein, Niemcy) zmieszano z solą fizjologiczną w stosunku 1:1 i pastę wprowadzono do kanału za pomocą spiral lentulo (Malleifer-Dentsply).
|
Eksperymentalny: chlorheksydyna
Uczestnicy otrzymywali żel chlorheksydyny jako lek dokanałowy przez okres jednego tygodnia
|
, żel chlorheksydyny 2% (Gluco-Chex 2% żel, Cerkamed, Stalowa Wola, Polska) umieszczono w kanałach korzeni tej grupy za pomocą Ultradent Capillary Tip (produkty Ultradent).
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
---|---|---|
analiza sekwencji genów 16S rRNA metodą sekwencjonowania Sangera
Ramy czasowe: zmiana od wartości początkowej do okresu pooperacyjnego 7 dni
|
sekwencjonowanie Sangera
|
zmiana od wartości początkowej do okresu pooperacyjnego 7 dni
|
, oznaczanie ilościowe wszystkich bakterii i E. faecalis w 5 różnych próbkach (SR1, S1, S2, SR2 i S3) pobranych z zębów zmierzono za pomocą ddPCR
Ramy czasowe: zmiana od wartości początkowej do okresu pooperacyjnego 7 dni
|
kroplowy cyfrowy PCR
|
zmiana od wartości początkowej do okresu pooperacyjnego 7 dni
|
Współpracownicy i badacze
Sponsor
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)
Zakończenie podstawowe (Rzeczywisty)
Ukończenie studiów (Rzeczywisty)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Rzeczywisty)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Oszacować)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Dodatkowe istotne warunki MeSH
Inne numery identyfikacyjne badania
- Interventional (Oncolys BioPharma Inc)
Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)
Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?
Opis planu IPD
Ramy czasowe udostępniania IPD
Kryteria dostępu do udostępniania IPD
Typ informacji pomocniczych dotyczących udostępniania IPD
- PROTOKÓŁ BADANIA
- SOK ROŚLINNY
Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze
Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA
Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .