- ICH GCP
- Registro de ensaios clínicos dos EUA
- Ensaio Clínico NCT03626090
Terapia com células-tronco mesenquimais para cirrose hepática
Terapia com células-tronco mesenquimais para cirrose hepática: um estudo de fase I/II
As MSCs foram estudadas para o tratamento de doenças hepáticas, bem como doenças não hepáticas. As MSCs têm sido bem-sucedidas no tratamento de condições como GVHD resistente a esteróides agudos em pacientes com transplante de células-tronco hematopoiéticas e também demonstraram melhorar a pontuação MELD na doença hepática em estágio terminal. Não foram observados efeitos colaterais graves no uso de MSCs autólogas como opção de tratamento. Os resultados dos estudos feitos até agora têm sido positivos e é encorajado a estudar o uso de MSCs como terapia celular para o tratamento de doenças hepáticas.
A taxa estimada de cirrose em pacientes com HBV em Cingapura é de cerca de 1,6% ao ano, a taxa de carcinoma hepatocelular é de cerca de 0,8% ao ano no geral e 3,0% ao ano em pacientes cirróticos. Sabendo que não há muitas opções atualmente disponíveis para pacientes com cirrose hepática e que eles têm um prognóstico ruim com uma expectativa de vida média de < 12 meses, este estudo usa MSCs autólogas para tratar pacientes com cirrose hepática em Cingapura. O objetivo do estudo é demonstrar que a medula óssea autóloga é segura para ser usada em pacientes com cirrose hepática, bem como demonstrar que a medula óssea MSC pode melhorar a função hepática e prolongar a sobrevida do paciente.
Visão geral do estudo
Descrição detalhada
A cirrose hepática refere-se à cicatrização extrema do fígado, resultando em função abaixo do ideal do fígado. Pode resultar de uma variedade de causas, desde infecção por hepatite B e C, consumo excessivo de álcool, causas autoimunes, fígado gorduroso e outros. Independentemente da causa, uma vez que o fígado se torna cirrótico, é um curso descendente.
A cirrose hepática é irreversível e a maioria dos pacientes piora progressivamente com o tempo. Uma vez que a cirrose hepática tenha atingido o estágio de descompensação, ou seja, desenvolvimento de icterícia, ascite, sangramento varicoso, encefalopatia hepática e coagulopatia, a sobrevida em dois anos cai para cerca de 50%.
O tratamento definitivo da cirrose descompensada é o transplante hepático. Embora um transplante de fígado seja potencialmente curativo, os altos custos, a falta de um doador, a mortalidade relacionada ao tratamento e as complicações da imunossupressão tornam essa opção possível apenas para um número limitado de pacientes. A grande maioria não tem nenhuma opção eficaz, daí a necessidade de desenvolver terapias alternativas. Vários tipos de células-tronco foram investigados como uma terapia regenerativa para a cirrose hepática. Essas células-tronco incluem células-tronco mesenquimais da medula óssea (MSC), células mononucleares da medula óssea (MNC) e células CD34 positivas periféricas. Alguns estudos iniciais mostraram resultados encorajadores em pacientes que fizeram transplante autólogo de células-tronco da medula óssea. Houve melhora da função hepática nesses pacientes com fígado cirrótico.
O patrocinador está propondo um estudo para analisar o papel da terapia de MSC para pacientes com cirrose hepática em Cingapura. Este será um estudo de Fase I/II com ênfase principal no perfil de segurança primeiro. O estudo será conduzido em conformidade com o protocolo, GCP e requisitos regulatórios locais.
Tipo de estudo
Inscrição (Antecipado)
Estágio
- Fase 2
- Fase 1
Contactos e Locais
Contato de estudo
- Nome: Clinical Trial Department
- Número de telefone: 63699191
- E-mail: clinicaltrials@stem-med.sg
Locais de estudo
-
-
-
Singapore, Cingapura, 258500
- Recrutamento
- Asian American Liver Centre - Gleneagles Hospital (Annexe Block)
-
Contato:
- Clinical Trial Department
- Número de telefone: 63699191
- E-mail: clinicaltrials@stem-med.sg
-
Investigador principal:
- Lee Kang Hoe
-
Singapore, Cingapura, 258500
- Recrutamento
- Parkway Cancer Centre - Gleneagles Hospital
-
Contato:
- Clinical Trial Department
- Número de telefone: 63699191
- E-mail: clinicaltrials@stem-med.sg
-
Investigador principal:
- Teo Cheng Peng
-
Singapore, Cingapura, 329563
- Recrutamento
- Desmond Wai Liver & Gastrointestinal Disease Centre - Mount Elizabeth Novena Specialist Centre
-
Contato:
- Clinical Trial Department
- Número de telefone: 63699191
- E-mail: clinicaltrials@stem-med.sg
-
Investigador principal:
- Wai Chun Tao, Desmond
-
-
Critérios de participação
Critérios de elegibilidade
Idades elegíveis para estudo
Aceita Voluntários Saudáveis
Gêneros Elegíveis para o Estudo
Descrição
Critério de inclusão:
Os indivíduos devem atender a todos os critérios inclusivos para participar do estudo:
- com cirrose hepática definida, independentemente da etiologia
- deve ter estágio B ou C da criança
- deve ter assinado um formulário de consentimento informado
Critério de exclusão:
Indivíduos com qualquer um dos seguintes critérios são considerados como uma exclusão do estudo e não terão permissão para participar:
- idade ≤21 anos e >70 anos
- com expectativa de vida < 6 meses
- cânceres e malignidades da medula óssea
- pacientes com infecção ativa ou infecções múltiplas
- pacientes com hipertensão e diabetes não controladas
- pacientes imunossuprimidos (IST deve ter parado pelo menos 4 semanas antes da inscrição no estudo)
- pacientes que são HIV positivos
- pacientes grávidas ou lactantes
Plano de estudo
Como o estudo é projetado?
Detalhes do projeto
- Finalidade Principal: TRATAMENTO
- Alocação: N / D
- Modelo Intervencional: SINGLE_GROUP
- Mascaramento: NENHUM
Armas e Intervenções
Grupo de Participantes / Braço |
Intervenção / Tratamento |
|---|---|
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EXPERIMENTAL: Braço de tratamento
Uma dose única de 0,5 a 1 x 10^6/kg de BM MSCs autólogas (volume total: 30 - 50 ml) será infundida via acesso venoso periférico.
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Um total de 100-200ml será colhido do sujeito, em uma única ou múltiplas punções.
Isso será processado para infusão autóloga de MSC.
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O que o estudo está medindo?
Medidas de resultados primários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
|---|---|---|
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Exame clínico
Prazo: Até 34 semanas
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Observar o seguinte:
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Até 34 semanas
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RM Elastografia
Prazo: Até 34 semanas
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Para detectar a rigidez do fígado
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Até 34 semanas
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O nível sérico de alanina aminotransferase (ALT)
Prazo: Até 34 semanas
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Para garantir a ausência de deterioração da função hepática.
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Até 34 semanas
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O nível da taxa de filtração glomerular (TFG)
Prazo: Até 34 semanas
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Para garantir a ausência de deterioração da função renal.
|
Até 34 semanas
|
Medidas de resultados secundários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
|---|---|---|
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O nível de tempo de protrombina sérica (PT)
Prazo: Até 6 meses, pós-infusão
|
Para avaliar a eficácia do tratamento
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Até 6 meses, pós-infusão
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O nível de bilirrubina total sérica (TB)
Prazo: Até 6 meses, pós-infusão
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Para avaliar a eficácia do tratamento
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Até 6 meses, pós-infusão
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O nível de albumina sérica (ALB)
Prazo: Até 6 meses, pós-infusão
|
Para avaliar a eficácia do tratamento
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Até 6 meses, pós-infusão
|
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Pontuação MELD
Prazo: Até 6 meses, pós-infusão
|
Para avaliar a eficácia do tratamento
|
Até 6 meses, pós-infusão
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Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Colaboradores
Investigadores
- Investigador principal: Teo Cheng Peng, Parkway Cancer Centre
- Investigador principal: Wai Chun Tao, Desmond, Desmond Wai Liver & Gastrointestinal Diseases Centre
- Investigador principal: Lee Kang Hoe, Asian American Liver Centre
Publicações e links úteis
Publicações Gerais
- Deeg HJ. How I treat refractory acute GVHD. Blood. 2007 May 15;109(10):4119-26. doi: 10.1182/blood-2006-12-041889. Epub 2007 Jan 18.
- Le Blanc K, Frassoni F, Ball L, Locatelli F, Roelofs H, Lewis I, Lanino E, Sundberg B, Bernardo ME, Remberger M, Dini G, Egeler RM, Bacigalupo A, Fibbe W, Ringden O; Developmental Committee of the European Group for Blood and Marrow Transplantation. Mesenchymal stem cells for treatment of steroid-resistant, severe, acute graft-versus-host disease: a phase II study. Lancet. 2008 May 10;371(9624):1579-86. doi: 10.1016/S0140-6736(08)60690-X.
- Peng L, Xie DY, Lin BL, Liu J, Zhu HP, Xie C, Zheng YB, Gao ZL. Autologous bone marrow mesenchymal stem cell transplantation in liver failure patients caused by hepatitis B: short-term and long-term outcomes. Hepatology. 2011 Sep 2;54(3):820-8. doi: 10.1002/hep.24434. Epub 2011 Jul 14.
- Amer ME, El-Sayed SZ, El-Kheir WA, Gabr H, Gomaa AA, El-Noomani N, Hegazy M. Clinical and laboratory evaluation of patients with end-stage liver cell failure injected with bone marrow-derived hepatocyte-like cells. Eur J Gastroenterol Hepatol. 2011 Oct;23(10):936-41. doi: 10.1097/MEG.0b013e3283488b00.
- Poh Z, Goh BB, Chang PE, Tan CK. Rates of cirrhosis and hepatocellular carcinoma in chronic hepatitis B and the role of surveillance: a 10-year follow-up of 673 patients. Eur J Gastroenterol Hepatol. 2015 Jun;27(6):638-43. doi: 10.1097/MEG.0000000000000341.
- Lyra AC, Soares MB, da Silva LF, Fortes MF, Silva AG, Mota AC, Oliveira SA, Braga EL, de Carvalho WA, Genser B, dos Santos RR, Lyra LG. Feasibility and safety of autologous bone marrow mononuclear cell transplantation in patients with advanced chronic liver disease. World J Gastroenterol. 2007 Feb 21;13(7):1067-73. doi: 10.3748/wjg.v13.i7.1067.
- Terai S, Ishikawa T, Omori K, Aoyama K, Marumoto Y, Urata Y, Yokoyama Y, Uchida K, Yamasaki T, Fujii Y, Okita K, Sakaida I. Improved liver function in patients with liver cirrhosis after autologous bone marrow cell infusion therapy. Stem Cells. 2006 Oct;24(10):2292-8. doi: 10.1634/stemcells.2005-0542. Epub 2006 Jun 15.
- Zhao DC, Lei JX, Chen R, Yu WH, Zhang XM, Li SN, Xiang P. Bone marrow-derived mesenchymal stem cells protect against experimental liver fibrosis in rats. World J Gastroenterol. 2005 Jun 14;11(22):3431-40. doi: 10.3748/wjg.v11.i22.3431.
- Ortiz LA, Gambelli F, McBride C, Gaupp D, Baddoo M, Kaminski N, Phinney DG. Mesenchymal stem cell engraftment in lung is enhanced in response to bleomycin exposure and ameliorates its fibrotic effects. Proc Natl Acad Sci U S A. 2003 Jul 8;100(14):8407-11. doi: 10.1073/pnas.1432929100. Epub 2003 Jun 18.
- Meier RP, Muller YD, Morel P, Gonelle-Gispert C, Buhler LH. Transplantation of mesenchymal stem cells for the treatment of liver diseases, is there enough evidence? Stem Cell Res. 2013 Nov;11(3):1348-64. doi: 10.1016/j.scr.2013.08.011. Epub 2013 Aug 29.
- Amorin B, Alegretti AP, Valim V, Pezzi A, Laureano AM, da Silva MA, Wieck A, Silla L. Mesenchymal stem cell therapy and acute graft-versus-host disease: a review. Hum Cell. 2014 Oct;27(4):137-50. doi: 10.1007/s13577-014-0095-x. Epub 2014 Jun 6.
- Jacobs SA, Roobrouck VD, Verfaillie CM, Van Gool SW. Immunological characteristics of human mesenchymal stem cells and multipotent adult progenitor cells. Immunol Cell Biol. 2013 Jan;91(1):32-9. doi: 10.1038/icb.2012.64.
- Uccelli A, Moretta L, Pistoia V. Mesenchymal stem cells in health and disease. Nat Rev Immunol. 2008 Sep;8(9):726-36. doi: 10.1038/nri2395.
- Di Nicola M, Carlo-Stella C, Magni M, Milanesi M, Longoni PD, Matteucci P, Grisanti S, Gianni AM. Human bone marrow stromal cells suppress T-lymphocyte proliferation induced by cellular or nonspecific mitogenic stimuli. Blood. 2002 May 15;99(10):3838-43. doi: 10.1182/blood.v99.10.3838.
- Krampera M, Glennie S, Dyson J, Scott D, Laylor R, Simpson E, Dazzi F. Bone marrow mesenchymal stem cells inhibit the response of naive and memory antigen-specific T cells to their cognate peptide. Blood. 2003 May 1;101(9):3722-9. doi: 10.1182/blood-2002-07-2104. Epub 2002 Dec 27.
- Meisel R, Zibert A, Laryea M, Gobel U, Daubener W, Dilloo D. Human bone marrow stromal cells inhibit allogeneic T-cell responses by indoleamine 2,3-dioxygenase-mediated tryptophan degradation. Blood. 2004 Jun 15;103(12):4619-21. doi: 10.1182/blood-2003-11-3909. Epub 2004 Mar 4.
- Suva D, Passweg J, Arnaudeau S, Hoffmeyer P, Kindler V. In vitro activated human T lymphocytes very efficiently attach to allogenic multipotent mesenchymal stromal cells and transmigrate under them. J Cell Physiol. 2008 Mar;214(3):588-94. doi: 10.1002/jcp.21244.
- Kisseleva T, Cong M, Paik Y, Scholten D, Jiang C, Benner C, Iwaisako K, Moore-Morris T, Scott B, Tsukamoto H, Evans SM, Dillmann W, Glass CK, Brenner DA. Myofibroblasts revert to an inactive phenotype during regression of liver fibrosis. Proc Natl Acad Sci U S A. 2012 Jun 12;109(24):9448-53. doi: 10.1073/pnas.1201840109. Epub 2012 May 7.
- Sheng H, Wang Y, Jin Y, Zhang Q, Zhang Y, Wang L, Shen B, Yin S, Liu W, Cui L, Li N. A critical role of IFNgamma in priming MSC-mediated suppression of T cell proliferation through up-regulation of B7-H1. Cell Res. 2008 Aug;18(8):846-57. doi: 10.1038/cr.2008.80.
- Dmitrewski J, Olliff S, Buckels JA. Obstructive jaundice associated with polycystic liver disease. HPB Surg. 1996;10(2):117-20. doi: 10.1155/1996/83547.
- Manousou P, Arvaniti V, Tsochatzis E, Isgro G, Jones K, Shirling G, Dhillon AP, O'Beirne J, Patch D, Burroughs AK. Primary biliary cirrhosis after liver transplantation: influence of immunosuppression and human leukocyte antigen locus disparity. Liver Transpl. 2010 Jan;16(1):64-73. doi: 10.1002/lt.21960.
- Mohamadnejad M, Malekzadeh R, Nasseri-Moghaddam S, Hagh-Azali S, Rakhshani N, Tavangar SM, Sedaghat M, Alimohamadi SM. Impact of immunosuppressive treatment on liver fibrosis in autoimmune hepatitis. Dig Dis Sci. 2005 Mar;50(3):547-51. doi: 10.1007/s10620-005-2472-5.
- Yang ZF, Ho DW, Ngai P, Lau CK, Zhao Y, Poon RT, Fan ST. Antiinflammatory properties of IL-10 rescue small-for-size liver grafts. Liver Transpl. 2007 Apr;13(4):558-65. doi: 10.1002/lt.21094.
- Sgroi A, Gonelle-Gispert C, Morel P, Baertschiger RM, Niclauss N, Mentha G, Majno P, Serre-Beinier V, Buhler L. Interleukin-1 receptor antagonist modulates the early phase of liver regeneration after partial hepatectomy in mice. PLoS One. 2011;6(9):e25442. doi: 10.1371/journal.pone.0025442. Epub 2011 Sep 27.
- Bartholomew A, Sturgeon C, Siatskas M, Ferrer K, McIntosh K, Patil S, Hardy W, Devine S, Ucker D, Deans R, Moseley A, Hoffman R. Mesenchymal stem cells suppress lymphocyte proliferation in vitro and prolong skin graft survival in vivo. Exp Hematol. 2002 Jan;30(1):42-8. doi: 10.1016/s0301-472x(01)00769-x.
- Zappia E, Casazza S, Pedemonte E, Benvenuto F, Bonanni I, Gerdoni E, Giunti D, Ceravolo A, Cazzanti F, Frassoni F, Mancardi G, Uccelli A. Mesenchymal stem cells ameliorate experimental autoimmune encephalomyelitis inducing T-cell anergy. Blood. 2005 Sep 1;106(5):1755-61. doi: 10.1182/blood-2005-04-1496. Epub 2005 May 19.
- Gerdoni E, Gallo B, Casazza S, Musio S, Bonanni I, Pedemonte E, Mantegazza R, Frassoni F, Mancardi G, Pedotti R, Uccelli A. Mesenchymal stem cells effectively modulate pathogenic immune response in experimental autoimmune encephalomyelitis. Ann Neurol. 2007 Mar;61(3):219-27. doi: 10.1002/ana.21076.
- Augello A, Tasso R, Negrini SM, Cancedda R, Pennesi G. Cell therapy using allogeneic bone marrow mesenchymal stem cells prevents tissue damage in collagen-induced arthritis. Arthritis Rheum. 2007 Apr;56(4):1175-86. doi: 10.1002/art.22511.
- Urban VS, Kiss J, Kovacs J, Gocza E, Vas V, Monostori E, Uher F. Mesenchymal stem cells cooperate with bone marrow cells in therapy of diabetes. Stem Cells. 2008 Jan;26(1):244-53. doi: 10.1634/stemcells.2007-0267. Epub 2007 Oct 11.
- Lee KD, Kuo TK, Whang-Peng J, Chung YF, Lin CT, Chou SH, Chen JR, Chen YP, Lee OK. In vitro hepatic differentiation of human mesenchymal stem cells. Hepatology. 2004 Dec;40(6):1275-84. doi: 10.1002/hep.20469.
- Li J, Tao R, Wu W, Cao H, Xin J, Li J, Guo J, Jiang L, Gao C, Demetriou AA, Farkas DL, Li L. 3D PLGA scaffolds improve differentiation and function of bone marrow mesenchymal stem cell-derived hepatocytes. Stem Cells Dev. 2010 Sep;19(9):1427-36. doi: 10.1089/scd.2009.0415.
- Ong SY, Dai H, Leong KW. Inducing hepatic differentiation of human mesenchymal stem cells in pellet culture. Biomaterials. 2006 Aug;27(22):4087-97. doi: 10.1016/j.biomaterials.2006.03.022. Epub 2006 Apr 17.
- Sato Y, Araki H, Kato J, Nakamura K, Kawano Y, Kobune M, Sato T, Miyanishi K, Takayama T, Takahashi M, Takimoto R, Iyama S, Matsunaga T, Ohtani S, Matsuura A, Hamada H, Niitsu Y. Human mesenchymal stem cells xenografted directly to rat liver are differentiated into human hepatocytes without fusion. Blood. 2005 Jul 15;106(2):756-63. doi: 10.1182/blood-2005-02-0572. Epub 2005 Apr 7.
- Kuo TK, Hung SP, Chuang CH, Chen CT, Shih YR, Fang SC, Yang VW, Lee OK. Stem cell therapy for liver disease: parameters governing the success of using bone marrow mesenchymal stem cells. Gastroenterology. 2008 Jun;134(7):2111-21, 2121.e1-3. doi: 10.1053/j.gastro.2008.03.015. Epub 2008 Mar 12.
- Seo MJ, Suh SY, Bae YC, Jung JS. Differentiation of human adipose stromal cells into hepatic lineage in vitro and in vivo. Biochem Biophys Res Commun. 2005 Mar 4;328(1):258-64. doi: 10.1016/j.bbrc.2004.12.158.
- Chamberlain J, Yamagami T, Colletti E, Theise ND, Desai J, Frias A, Pixley J, Zanjani ED, Porada CD, Almeida-Porada G. Efficient generation of human hepatocytes by the intrahepatic delivery of clonal human mesenchymal stem cells in fetal sheep. Hepatology. 2007 Dec;46(6):1935-45. doi: 10.1002/hep.21899.
- Natarajan A, Wagner B, Sibilia M. The EGF receptor is required for efficient liver regeneration. Proc Natl Acad Sci U S A. 2007 Oct 23;104(43):17081-6. doi: 10.1073/pnas.0704126104. Epub 2007 Oct 16. Erratum In: Proc Natl Acad Sci U S A. 2007 Dec 4;104(49):19656.
- Parekkadan B, van Poll D, Megeed Z, Kobayashi N, Tilles AW, Berthiaume F, Yarmush ML. Immunomodulation of activated hepatic stellate cells by mesenchymal stem cells. Biochem Biophys Res Commun. 2007 Nov 16;363(2):247-52. doi: 10.1016/j.bbrc.2007.05.150. Epub 2007 May 30.
- Ortiz LA, Dutreil M, Fattman C, Pandey AC, Torres G, Go K, Phinney DG. Interleukin 1 receptor antagonist mediates the antiinflammatory and antifibrotic effect of mesenchymal stem cells during lung injury. Proc Natl Acad Sci U S A. 2007 Jun 26;104(26):11002-7. doi: 10.1073/pnas.0704421104. Epub 2007 Jun 14.
- Tobin LM, Healy ME, English K, Mahon BP. Human mesenchymal stem cells suppress donor CD4(+) T cell proliferation and reduce pathology in a humanized mouse model of acute graft-versus-host disease. Clin Exp Immunol. 2013 May;172(2):333-48. doi: 10.1111/cei.12056.
- Mohamadnejad M, Namiri M, Bagheri M, Hashemi SM, Ghanaati H, Zare Mehrjardi N, Kazemi Ashtiani S, Malekzadeh R, Baharvand H. Phase 1 human trial of autologous bone marrow-hematopoietic stem cell transplantation in patients with decompensated cirrhosis. World J Gastroenterol. 2007 Jun 28;13(24):3359-63. doi: 10.3748/wjg.v13.i24.3359.
- Kharaziha P, Hellstrom PM, Noorinayer B, Farzaneh F, Aghajani K, Jafari F, Telkabadi M, Atashi A, Honardoost M, Zali MR, Soleimani M. Improvement of liver function in liver cirrhosis patients after autologous mesenchymal stem cell injection: a phase I-II clinical trial. Eur J Gastroenterol Hepatol. 2009 Oct;21(10):1199-205. doi: 10.1097/MEG.0b013e32832a1f6c.
- Zhang Z, Lin H, Shi M, Xu R, Fu J, Lv J, Chen L, Lv S, Li Y, Yu S, Geng H, Jin L, Lau GK, Wang FS. Human umbilical cord mesenchymal stem cells improve liver function and ascites in decompensated liver cirrhosis patients. J Gastroenterol Hepatol. 2012 Mar;27 Suppl 2:112-20. doi: 10.1111/j.1440-1746.2011.07024.x.
- Gholamrezanezhad A, Mirpour S, Bagheri M, Mohamadnejad M, Alimoghaddam K, Abdolahzadeh L, Saghari M, Malekzadeh R. In vivo tracking of 111In-oxine labeled mesenchymal stem cells following infusion in patients with advanced cirrhosis. Nucl Med Biol. 2011 Oct;38(7):961-7. doi: 10.1016/j.nucmedbio.2011.03.008. Epub 2011 Jun 22.
- Baertschiger RM, Serre-Beinier V, Morel P, Bosco D, Peyrou M, Clement S, Sgroi A, Kaelin A, Buhler LH, Gonelle-Gispert C. Fibrogenic potential of human multipotent mesenchymal stromal cells in injured liver. PLoS One. 2009 Aug 17;4(8):e6657. doi: 10.1371/journal.pone.0006657.
- Forbes SJ, Russo FP, Rey V, Burra P, Rugge M, Wright NA, Alison MR. A significant proportion of myofibroblasts are of bone marrow origin in human liver fibrosis. Gastroenterology. 2004 Apr;126(4):955-63. doi: 10.1053/j.gastro.2004.02.025.
- Casiraghi F, Remuzzi G, Abbate M, Perico N. Multipotent mesenchymal stromal cell therapy and risk of malignancies. Stem Cell Rev Rep. 2013 Feb;9(1):65-79. doi: 10.1007/s12015-011-9345-4.
- Sundin M, Lindblom A, Orvell C, Barrett AJ, Sundberg B, Watz E, Wikman A, Broliden K, Le Blanc K. Persistence of human parvovirus B19 in multipotent mesenchymal stromal cells expressing the erythrocyte P antigen: implications for transplantation. Biol Blood Marrow Transplant. 2008 Oct;14(10):1172-1179. doi: 10.1016/j.bbmt.2008.08.003.
- Sundin M, Orvell C, Rasmusson I, Sundberg B, Ringden O, Le Blanc K. Mesenchymal stem cells are susceptible to human herpesviruses, but viral DNA cannot be detected in the healthy seropositive individual. Bone Marrow Transplant. 2006 Jun;37(11):1051-9. doi: 10.1038/sj.bmt.1705368.
- Zhou YF, Bosch-Marce M, Okuyama H, Krishnamachary B, Kimura H, Zhang L, Huso DL, Semenza GL. Spontaneous transformation of cultured mouse bone marrow-derived stromal cells. Cancer Res. 2006 Nov 15;66(22):10849-54. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-06-2146.
- Miura M, Miura Y, Padilla-Nash HM, Molinolo AA, Fu B, Patel V, Seo BM, Sonoyama W, Zheng JJ, Baker CC, Chen W, Ried T, Shi S. Accumulated chromosomal instability in murine bone marrow mesenchymal stem cells leads to malignant transformation. Stem Cells. 2006 Apr;24(4):1095-103. doi: 10.1634/stemcells.2005-0403. Epub 2005 Nov 10.
- Dahl JA, Duggal S, Coulston N, Millar D, Melki J, Shahdadfar A, Brinchmann JE, Collas P. Genetic and epigenetic instability of human bone marrow mesenchymal stem cells expanded in autologous serum or fetal bovine serum. Int J Dev Biol. 2008;52(8):1033-42. doi: 10.1387/ijdb.082663jd.
- Karnoub AE, Dash AB, Vo AP, Sullivan A, Brooks MW, Bell GW, Richardson AL, Polyak K, Tubo R, Weinberg RA. Mesenchymal stem cells within tumour stroma promote breast cancer metastasis. Nature. 2007 Oct 4;449(7162):557-63. doi: 10.1038/nature06188.
- Rollin R, Alvarez-Lafuente R, Marco F, Jover JA, Hernandez-Garcia C, Rodriguez-Navas C, Lopez-Duran L, Fernandez-Gutierrez B. Human parvovirus B19, varicella zoster virus, and human herpesvirus-6 in mesenchymal stem cells of patients with osteoarthritis: analysis with quantitative real-time polymerase chain reaction. Osteoarthritis Cartilage. 2007 Apr;15(4):475-8. doi: 10.1016/j.joca.2006.11.007. Epub 2007 Jan 3.
- Salama H, Zekri AR, Medhat E, Al Alim SA, Ahmed OS, Bahnassy AA, Lotfy MM, Ahmed R, Musa S. Peripheral vein infusion of autologous mesenchymal stem cells in Egyptian HCV-positive patients with end-stage liver disease. Stem Cell Res Ther. 2014 May 28;5(3):70. doi: 10.1186/scrt459.
- Neagu M, Suciu E, Ordodi V, Unescu VP. Human Mesenchymal Stem Cells As Basic Tools for Tissue Engineering : Isolation and Culture. October. 2005;15(October):29-34.
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