- ICH GCP
- Реестр клинических исследований США
- Клиническое испытание NCT00078533
Цитотоксические Т-лимфоциты для профилактики цитомегаловируса после аллогенной трансплантации стволовых клеток (VICTA)
Вирусспецифические цитотоксические Т-лимфоциты для лечения ЦМВ после аллогенной трансплантации стволовых клеток: исследование по подбору дозы
У пациентов есть тип рака клеток крови, другое заболевание крови или генетическое заболевание, для лечения которого им будет проведена трансплантация стволовых клеток. Донором стволовых клеток может быть либо брат, либо сестра, либо другой родственник, либо близкородственный неродственный донор. Мы просим пациентов принять участие в этом исследовании, которое проверяет, могут ли клетки крови донора, выращенные особым образом, предотвратить заражение пациентов вирусом, называемым цитомегаловирусом или ЦМВ.
ЦМВ — это вирус, который может вызывать серьезные инфекции у пациентов с подавленной иммунной системой. Обычно он поражает легкие и может вызвать очень серьезную пневмонию, но также может поражать желудочно-кишечный тракт, печень и глаза. Приблизительно 2/3 нормальных людей содержат этот вирус в своем теле. У здоровых людей ЦМВ редко вызывает какие-либо проблемы, потому что иммунная система может держать его под контролем. Если пациент и/или их донор положительны на ЦМВ, они подвержены риску развития ЦМВ-заболевания, в то время как иммунная система пациента слаба после трансплантации. Обычно этот риск наиболее высок в течение первых 3-4 месяцев после трансплантации.
ЦМВ-заболевание можно предотвратить в этот период у большинства людей с помощью препаратов, убивающих вирус, таких как ганцикловир, фоскарнет или цидофовир. Однако эти лекарства имеют много побочных эффектов и должны вводиться ежедневно в вену в течение примерно 4-5 месяцев после трансплантации. Одним из побочных эффектов является то, что новой иммунной системе требуется гораздо больше времени, чтобы выработать эффективную защиту от вируса. Следовательно, после прекращения приема лекарств у пациентов все еще есть шанс заболеть ЦМВ-заболеванием.
Мы хотим посмотреть, сможем ли мы использовать своего рода лейкоциты, называемые Т-клетками, которые мы вырастили из донора стволовых клеток, вместо обычного лечения ганцикловиром или фоскарнетом, чтобы предотвратить «вспышку» ЦМВ. Эти клетки были обучены атаковать клетки, инфицированные вирусом ЦМВ. Мы будем выращивать эти Т-клетки из крови, взятой у донора перед трансплантацией пациентов. Эти клетки называются ЦМВ-специфичными цитотоксическими Т-лимфоцитами или ЦМВ-ЦТЛ, и их вводят пациенту примерно через 30 дней после трансплантации.
Мы использовали этот вид терапии для лечения другого вируса, который может вызвать проблемы после трансплантации, называемого вирусом Эпштейна-Барра (EBV). Врачи в других местах использовали аналогичные Т-клетки для лечения или профилактики ЦМВ-инфекций после трансплантации и не заметили каких-либо серьезных проблем. Эти ЦМВ-специфические цитотоксические Т-клетки являются экспериментальным продуктом, не одобренным Управлением по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов.
Обзор исследования
Статус
Условия
Вмешательство/лечение
Подробное описание
Если пациент и его донор подходят, мы возьмем 100-120 мл (20-24 чайных ложки) крови донора за 3-4 недели до трансплантации. Мы возьмем столько крови, сколько безопасно для пациента и его донора.
Мы будем использовать эту кровь для выращивания Т-клеток. Сначала мы заразим мононуклеарные клетки периферической крови специально произведенным аденовирусом человеческого вируса, который несет часть гена ЦМВ в моноциты, которые будут стимулировать Т-клетки. Эта стимуляция научит Т-клетки убивать клетки с pp65 вируса ЦМВ на их поверхности. Если этого подхода недостаточно для стимуляции Т-клеток, которые убивают pp65 вируса ЦМВ, тогда мы будем выращивать особый тип клеток, называемых дендритными клетками, которые будут стимулировать Т-клетки, и мы поместим специально продуцируемый вирус человека (аденовирус), который несет части гена CMV (называемые pp65) в дендритные клетки. Затем эти дендритные клетки облучают радиацией, чтобы они не могли расти. Затем они будут использоваться для стимуляции Т-клеток. Эта стимуляция научит Т-клетки убивать клетки с pp65 вируса ЦМВ на их поверхности.
Затем мы будем выращивать эти специфичные для ЦМВ ЦТЛ путем дополнительной стимуляции клетками, инфицированными ВЭБ (которые мы будем получать из крови донора, заражая их ВЭБ в лаборатории). Мы также поместим аденовирус, несущий ген CMV pp65, в эти инфицированные ВЭБ клетки, чтобы они тоже имели CMVpp65. Эти инфицированные ВЭБ клетки будут обработаны радиацией, чтобы они не могли расти. Как только мы получим достаточное количество Т-клеток, мы проверим их, чтобы убедиться, что они убивают клетки с CMVpp65 на своей поверхности. Чтобы убедиться, что эти клетки не будут атаковать ткани пациента, мы тестируем эти клетки против лимфобластов, которые мы выращиваем в лаборатории. Они будут использоваться для проверки того, может ли CMV CTL атаковать их. В качестве альтернативы мы могли бы взять небольшой кусочек кожи пациента, чтобы вырастить клетки кожи, которые также можно использовать для проверки того, могут ли CTL CMV атаковать их. Биопсия кожи может быть сделана одновременно с другой процедурой, такой как забор костного мозга.
CTL-клетки ЦМВ донора размораживают и вводят пациенту внутривенно в течение 10 минут после того, как пациент получил Бенадрил и Тайленол. Пациент получит дозу ЦМВ-клеток ЦТЛ на 30-й день или позже после трансплантации, если он согласен и чувствует себя достаточно хорошо. Мы не будем давать противовирусные препараты во время этого исследования, но будем еженедельно контролировать уровень ЦМВ в течение как минимум 30 дней после трансплантации. Если после начальной дозы ЦТЛ-клеток ЦМВ у пациента развивается вирусная инфекция, то ему может быть назначена одна дополнительная инъекция ЦТЛ в той же дозе, что и первая инъекция. Если уровни ЦМВ в крови продолжают расти после введения дозы Т-клеток, пациенту будет назначено лечение ганцикловиром, фоскарнетом или цидофувиром.
Пациент будет продолжать наблюдаться в клинике ТКМ после инъекции. Они будут осмотрены в клинике, в больнице или с ними свяжется медсестра-исследователь, и еженедельно в течение первых 60 дней после инфузии ЦТЛ будут сдавать анализы крови (для контроля показателей крови, функции почек и печени и контроля на наличие вирусов). затем в 3, 6, 9 и 12 мес. Чтобы узнать больше о том, как Т-клетки работают в организме, перед инфузией, а затем через 24 часа после инфузии будут взяты дополнительные 20-40 мл (4-8 чайных ложек) крови (необязательно, в зависимости от предпочтений пациента). , а затем через 1, 2, 4 и 6 недель после инфузии. После этого кровь будут брать каждые 3 месяца в течение 1 года. Количество крови, взятой в первые 12 месяцев, составит 260-460 мл (1-2 стакана). Общее время участия в этом исследовании составит 1 год.
Тип исследования
Регистрация (Действительный)
Фаза
- Фаза 1
Контакты и местонахождение
Места учебы
-
-
Texas
-
Houston, Texas, Соединенные Штаты, 77030
- Texas Children's Hospital
-
Houston, Texas, Соединенные Штаты, 77030
- Houston Methodist Hospital
-
-
Критерии участия
Критерии приемлемости
Возраст, подходящий для обучения
- Ребенок
- Взрослый
- Пожилой взрослый
Принимает здоровых добровольцев
Полы, имеющие право на обучение
Описание
Критерии включения:
- Реципиенты аллогенных донорских трансплантатов стволовых клеток с риском реактивации ЦМВ с серопозитивным донором стволовых клеток ЦМВ и по крайней мере через 30 дней после трансплантации.
- Реципиенты могут иметь ранние признаки реактивации ЦМВ с более чем 2 лейкоцитами, но менее 10 лейкоцитов, положительных на антиген ЦМВ, на 100 000 клеток.
- Отсутствие признаков болезни «трансплантат против хозяина» (РТПХ)> степени II на момент включения.
- Ожидаемая продолжительность жизни> 30 дней
- Отсутствие тяжелых интеркуррентных инфекций
- Лански/Карновски набирает больше или равно 60
- Отсутствие тяжелой почечной недостаточности (креатинин > x 3 нормы для возраста)
- Отсутствие тяжелого заболевания печени (прямой билирубин > 3 мг/дл или SGOT > 500)
- Отсутствие ганцикловира, фоскарнета или цидофовира или другой противовирусной терапии для реактивации ЦМВ
- Пациент/опекун, способный дать информированное согласие
Критерий исключения:
- Пациенты с ЦМВ-отрицательными донорами стволовых клеток
- Пациенты с РТПХ III-IV степени
- Пациенты, получающие противовирусную терапию по поводу реактивации ЦМВ или других вирусных инфекций, таких как аденовирусы или вирусы герпеса.
- Пациенты со значительной реактивацией ЦМВ. Значительная реактивация ЦМВ определяется как одно показание антигенемии ЦМВ с >10 положительными лейкоцитами на антиген ЦМВ на 100 000 клеток.
- Пациенты с донорским химеризмом менее 50% в периферической крови или костном мозге или пациенты с рецидивом исходного заболевания
Учебный план
Как устроено исследование?
Детали дизайна
- Основная цель: Уход
- Распределение: Н/Д
- Интервенционная модель: Одногрупповое задание
- Маскировка: Нет (открытая этикетка)
Оружие и интервенции
Группа участников / Армия |
Вмешательство/лечение |
|---|---|
|
Экспериментальный: Инфузия ЦМВ ЦТЛ
Субъектам назначается уровень дозы во время регистрации.
|
Будут исследованы три уровня доз.
Самый низкий уровень дозы будет 1x10^7клеток/м2, а самый высокий будет 1x10^8/м2.
На каждом уровне дозы будет введено 3-6 pt (в зависимости от токсичности).
Если нет токсичности и иммунологическая эффективность не наблюдается ни при какой дозе, то дозы будут дополнительно увеличены после дополнительного местного и федерального одобрения.
Дополнительные пациенты будут получать лечение на уровне дозы 1, чтобы оценить вторичную цель вирусспецифического иммунитета от инфузий ЦТЛ.
|
Что измеряет исследование?
Первичные показатели результатов
Мера результата |
Временное ограничение |
|---|---|
|
безопасность, токсичность и максимально переносимая доза (MTD)
Временное ограничение: 30 дней
|
30 дней
|
|
Эффективность восстановления вирусспецифического иммунитета и взаимосвязь с защитой от реактивации/заболевания вируса.
Временное ограничение: 8 недель
|
8 недель
|
Соавторы и исследователи
Публикации и полезные ссылки
Общие публикации
- Keller MD, Darko S, Lang H, Ransier A, Lazarski CA, Wang Y, Hanley PJ, Davila BJ, Heimall JR, Ambinder RF, Barrett AJ, Rooney CM, Heslop HE, Douek DC, Bollard CM. T-cell receptor sequencing demonstrates persistence of virus-specific T cells after antiviral immunotherapy. Br J Haematol. 2019 Oct;187(2):206-218. doi: 10.1111/bjh.16053. Epub 2019 Jun 20.
- Hanley PJ, Cruz CR, Savoldo B, Leen AM, Stanojevic M, Khalil M, Decker W, Molldrem JJ, Liu H, Gee AP, Rooney CM, Heslop HE, Dotti G, Brenner MK, Shpall EJ, Bollard CM. Functionally active virus-specific T cells that target CMV, adenovirus, and EBV can be expanded from naive T-cell populations in cord blood and will target a range of viral epitopes. Blood. 2009 Aug 27;114(9):1958-67. doi: 10.1182/blood-2009-03-213256. Epub 2009 May 14.
Даты записи исследования
Изучение основных дат
Начало исследования
Первичное завершение (Действительный)
Завершение исследования (Действительный)
Даты регистрации исследования
Первый отправленный
Впервые представлено, что соответствует критериям контроля качества
Первый опубликованный (Оценивать)
Обновления учебных записей
Последнее опубликованное обновление (Оценивать)
Последнее отправленное обновление, отвечающее критериям контроля качества
Последняя проверка
Дополнительная информация
Термины, связанные с этим исследованием
Ключевые слова
Дополнительные соответствующие термины MeSH
Другие идентификационные номера исследования
- 12683-VICTA
- VICTA (Другой идентификатор: Baylor College of Medicine)
- PACT 001 (Другой номер гранта/финансирования: NHLBI)
Эта информация была получена непосредственно с веб-сайта clinicaltrials.gov без каких-либо изменений. Если у вас есть запросы на изменение, удаление или обновление сведений об исследовании, обращайтесь по адресу register@clinicaltrials.gov. Как только изменение будет реализовано на clinicaltrials.gov, оно будет автоматически обновлено и на нашем веб-сайте. .