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CAPA-IVM im Vergleich zu STANDARD-IVM

20. April 2019 aktualisiert von: Mỹ Đức Hospital

Forschungsstudie zur Bewertung der Kapazitationskultur (CAPA), gefolgt von der In-vitro-Maturation (IVM) menschlicher Eizellen: Eine randomisierte Pilotstudie

Ziel dieser Studie ist es, die Wirksamkeit und Sicherheit von CAPA-IVM im Vergleich zu Standard-IVM bei Frauen mit polyzystischer Ovarialmorphologie (PCOM) oder polyzystischem Ovarialsyndrom (PCOS) zu bewerten.

Studienübersicht

Status

Abgeschlossen

Detaillierte Beschreibung

Patientenvorbereitung

Patienten mit PCOM dürfen an der Studie teilnehmen: (1) Frauen mit normaler Menstruationszykluslänge (≤ 35 Tage) und (2) Frauen mit Oligomenorrhoe (Menstruation tritt in Intervallen von > 35 Tagen mit 4-9 Perioden/Jahr auf) oder totale Amenorrhoe. Die Patientinnen wurden bis zum Ende der Schwangerschaft nachbeobachtet.

Patientinnen haben ihren ersten Arztbesuch am Tag 2 des Menstruationszyklus. Bei diesem Besuch wurde eine Blutprobe zur Bestimmung von FSH (Follikel-stimulierendes Hormon), LH (Luteinisierendes Hormon), Östradiol und Progesteron entnommen, und sie erhielten ihre Gonadotropin-Injektion von 150 IE (internationale Einheit) einmal täglich am Nachmittag. Alle Patienten kommen am Morgen des nächsten Tages (Zyklustag 3) zum Ultraschall zurück und die letzte Gonadotropindosis wurde am Nachmittag (14 Uhr) verabreicht. Als alle Follikel einen Durchmesser von < 8 mm aufwiesen, wurde eine weitere Gonadotropindosis verabreicht, und die Patienten kehrten am nächsten Tag für Ultraschall und Blutuntersuchungen zurück und erhielten am Nachmittag (14:00 Uhr) ihre letzte Gonadotropindosis. Die maximale Anzahl von Gonadotropin-Injektionen beträgt drei, und die Oozytenentnahme ist bei allen Patientinnen 42–46 Stunden nach der letzten Gonadotropin-Injektion geplant. Am Tag der OPU (Oocyte Pick-up) werden Ultraschall- und Blutuntersuchungen zur Bestimmung der FSH-, LH-, Östradiol- und Progesteronspiegel durchgeführt. Während der OPU wird die Follikelgröße vor der Punktion gemessen. Größere Follikel (≥6 mm) werden zuerst punktiert, dann wird die Nadel gespült, dann werden kleinere Follikel (<6 mm) punktiert. Daher enthält jedes Röhrchen COCs (Cumulus-Oocyte Complex) einer bestimmten Größe (<6 oder ≥6 mm).

Oozytenkultur

Eizellen von Patientinnen der CAPA-IVM-Gruppe werden gesammelt und in Gegenwart von CNP (natriuretisches Peptid vom C-Typ) als Meiose-Inhibitor verarbeitet. In der CAPA-IVM-Gruppe werden COCs in einer Schale mit 4 Vertiefungen (Nunc, Dänemark) mit 10 COCs/Vertiefung unter Verwendung von CAPA-Medium (Medicult IVM-Medium; Origio, Dänemark), ergänzt mit 1 mIU/ml rFSH, 5 ng/ml, ausplattiert Insulin, 10 nM Östradiol, 10 mg/ml Humanserumalbumin [SAGE, Dänemark] und 25 nM (nanoMol) CNP unter Öl für 24 Stunden bei 37 °C, 6 % Kohlendioxid in Luft). Nach 24 Stunden werden die COCs gewaschen und in IVM-Medium (Origio, Dänemark) überführt, das 5 ng/ml Insulin, 10 nM Estradiol, 100 ng/ml humanes rekombinantes Amphiregulin und 100 mIU/ml rFSH (rekombinantes follikelstimulierendes Hormon) enthält, und inkubiert unter Öl für 30 h bei 37 °C, 6 % Kohlendioxid in Luft.

In der Standard-IVM-Gruppe (Kontrolle) wurden COCs in einer 4-Well-Schale mit 10 COCs/Well unter Verwendung von IVM-Medium, ergänzt mit 75 mIU/ml rekombinantem FSH (Merck, Schweiz), 100 mIU/ml hCG (MSD, USA) ausplattiert. B. 0,01 mg/ml Wachstumshormon (Merck, Schweiz) und 10 mg/ml Humanserumalbumin (SAGE, Dänemark). COCs werden 30 Stunden lang unter Verwendung der gleichen physikalischen und atmosphärischen Bedingungen wie die CAPA-IVM-Gruppe inkubiert.

Befruchtung und Embryokultur

Nach IVM werden reife Eizellen mittels intrazytoplasmatischer Spermieninjektion (ICSI) befruchtet und in einem Inkubator bei 37 °C, 5 % Kohlendioxid, 5 % Sauerstoff kultiviert. Die Befruchtungskontrolle wird 16-18 Stunden nach ICSI durchgeführt. Embryonen werden bis Tag 3 in Global Total LP (Life Global, Kanada) in Gruppen von 2–3 Embryonen pro 30 &mgr;l Mikrotröpfchen kultiviert. Embryonen, die die Einfrierkriterien erfüllen, wurden als Tag-3-Embryonen vitrifiziert (Cryotech, Japan). Embryonen von extrem schlechter Qualität (Istanbuler Konsens zur Beurteilung der Embryoqualität), definiert als Fragmentierung > 30 %, < 6 Zellen und Mehrkernigkeit, werden nicht eingefroren.

Endometrium-Priming und Embryotransfer

Es werden keine Transfers frischer Embryonen durchgeführt. Die Patientinnen erhalten ab dem 2. Tag ihres Menstruationszyklus 4-mal täglich 2 mg Östradiol oral. Nach einer Estradiol-Behandlungsdauer von mindestens 10 Tagen und bei einer Endometriumdicke von ≥ 8 mm werden 200 mg Progesteron 4-mal täglich intravaginal verabreicht. Der Embryotransfer ist 3 Tage nach Beginn der Progesterontherapie geplant. Serum-beta-hCG wird 14 Tage nach dem Embryotransfer getestet. Wenn eine Frau schwanger wird, wird die Verabreichung von humanem Beta-Choriongonadotropin (hCG) > 5 mI.E./ml, Progesteron bis mindestens 11 Schwangerschaftswochen in derselben Dosis beibehalten. Eine Ultraschalluntersuchung zur Bestimmung der Lebensfähigkeit einer Schwangerschaft wird in der 7. Schwangerschaftswoche durchgeführt.

Sicherheit des ART-Verfahrens (Assisted Reproductive Technology) bei PCOS

Die Sicherheit wird bei jedem Klinikbesuch oder, falls Nebenwirkungen aufgetreten sind, durch Befragung und Untersuchung des Patienten überwacht, wobei unerwünschte Ereignisse und schwerwiegende unerwünschte Ereignisse auf Fallberichtsformularen aufgezeichnet werden. Unerwünschte Ereignisse sind definiert als unerwartete medizinische Vorkommnisse (Symptome oder Anzeichen, anormale Laborbefunde oder Krankheiten), die während der Studie im Vergleich zum ersten Studienbesuch auftreten oder sich verschlimmern. Mögliche unerwünschte Ereignisse, einschließlich Eileiterschwangerschaft, Fehlgeburt, medikamentenbedingte Reaktionen wie Überdosierung, Empfindlichkeit und Toxizität sowie alle unerwünschten Folgen im Zusammenhang mit der Eizellentnahme. Schwerwiegende unerwünschte Ereignisse sind definiert als jedes unerwartete medizinische Ereignis, das zu einem tödlichen, lebensbedrohlichen, erforderlichen stationären Krankenhausaufenthalt oder einer Verlängerung eines bestehenden Krankenhausaufenthalts oder zu einer anhaltenden oder erheblichen Behinderung oder Arbeitsunfähigkeit führte. Angeborene Anomalien oder Geburtsfehler gelten als schwerwiegende unerwünschte Ereignisse.

statistische Analyse

Ein Hauptziel dieser Studie ist es, Machbarkeit, Akzeptanz und Ergebnisvariabilität zu bestimmen, um bei der Planung einer größeren Wirksamkeitsstudie mit angemessener Power zu helfen. Die geplante Stichprobengröße beträgt 80 Patienten (40 pro Gruppe), was relativ genaue Rückschlüsse auf Machbarkeitsergebnisse zulassen sollte. Da dies das erste Mal ist, dass CAPA-IVM in unserem Zentrum klinisch eingesetzt wurde, besteht das Ziel dieser Pilotstudie darin, die Lebendgeburtenrate und die damit verbundenen 95 %-Konfidenzintervalle (KI) für die neue Intervention in der klinischen Praxis abzuschätzen. Nichtparametrische statistische Methoden wie die Wilcoxon-Rangsumme werden auf stetige oder ordinale Ergebnisse angewendet. Um 95 %-Konfidenzintervalle (KI) für die Differenz zwischen zwei Medianen zu schätzen, werden Bootstrapping und verwandte Resampling-Methoden angewendet. Die Inzidenz der Ergebnisse wird für jede Behandlungsgruppe geschätzt, und der Unterschied zwischen den Gruppen wurde unter Verwendung des relativen Risikos (RR), des 95 %-KI von RR und des exakten Fisher-Tests analysiert. Basierend auf der Follikelgröße (<6 versus ≥6 mm) wird eine Subgruppenanalyse durchgeführt. Die Daten werden als Mittelwerte mit Standardabweichung (SD), Medianen und Interquartilsbereichen (IQRs) oder Anteilen dargestellt. Alle Analysen werden mit R (Version 3.0.1; R Foundation for Statistical Computing, Wien, Österreich). Statistische Signifikanz ist definiert als p < 0,05.

Studientyp

Interventionell

Einschreibung (Tatsächlich)

80

Phase

  • Unzutreffend

Kontakte und Standorte

Dieser Abschnitt enthält die Kontaktdaten derjenigen, die die Studie durchführen, und Informationen darüber, wo diese Studie durchgeführt wird.

Studienorte

      • Ho Chi Minh City, Vietnam, 70000
        • My Duc Hospital

Teilnahmekriterien

Forscher suchen nach Personen, die einer bestimmten Beschreibung entsprechen, die als Auswahlkriterien bezeichnet werden. Einige Beispiele für diese Kriterien sind der allgemeine Gesundheitszustand einer Person oder frühere Behandlungen.

Zulassungskriterien

Studienberechtigtes Alter

Nicht älter als 37 Jahre (ERWACHSENE, KIND)

Akzeptiert gesunde Freiwillige

Nein

Studienberechtigte Geschlechter

Weiblich

Beschreibung

Einschlusskriterien:

  • < 38 Jahre
  • PCOS-Patienten mit polyzystischer Ovarialmorphologie: mindestens 25 Follikel (2-9 mm) im gesamten Ovar und/oder erhöhtes Ovarialvolumen (> 10 ml) (es reicht aus, wenn 1 Ovar diese Kriterien erfüllt)
  • Keine größeren uterinen oder ovariellen Anomalien

Ausschlusskriterien:

  • Hochgradige Endometriose (>Grad 2).
  • Fälle mit extrem schlechtem Sperma (OAT) wie Azoospermie oder Kryptozoospermie

Studienplan

Dieser Abschnitt enthält Einzelheiten zum Studienplan, einschließlich des Studiendesigns und der Messung der Studieninhalte.

Wie ist die Studie aufgebaut?

Designdetails

  • Hauptzweck: BEHANDLUNG
  • Zuteilung: ZUFÄLLIG
  • Interventionsmodell: PARALLEL
  • Maskierung: KEINER

Waffen und Interventionen

Teilnehmergruppe / Arm
Intervention / Behandlung
ACTIVE_COMPARATOR: CAPA-IVM
Unreife Eizellen werden im neuen Kapazitations-IVM-System kultiviert.
Unreife Eizellen wurden in eine Schale mit 4 Vertiefungen (Nunc, Dänemark) mit 10 COCs/Vertiefung unter Verwendung von CAPA-Medium (Medicult IVM-Medium; Origio, Dänemark, ergänzt mit 1 mIU/ml rFSH, 5 ng/ml Insulin, 10 nM Östradiol, 10) ausplattiert mg/ml menschliches Serumalbumin [SAGE, Dänemark] und 25 nM CNP unter Öl für 24 h bei 37 °C, 6 % Kohlendioxid in Luft). Nach 24 Stunden wurden die COCs gewaschen und in IVM-Medium (Origio, Dänemark) überführt, das 5 ng/ml Insulin, 10 nM Östradiol, 100 ng/ml humanes rekombinantes Amphiregulin und 100 mIU/ml rFSH enthielt, und 30 h lang unter Öl inkubiert 37 °C, 6 % Kohlendioxid in der Luft.
ACTIVE_COMPARATOR: Standard-IVM
Unreife Eizellen werden im Standard-IVM-System kultiviert.
Unreife Oozyten werden in eine 4-Well-Schale mit 10 COCs/Well unter Verwendung von IVM-Medium, ergänzt mit 75 mIU/ml rekombinantem FSH (Merck, Schweiz), 100 mIU/ml hCG (MSD, USA), 0,01 mg/ml Wachstumshormon ( Merck, Schweiz) und 10 mg/ml Humanserumalbumin (SAGE, Dänemark). COCs wurden für 30 Stunden bei 37°C, 6 % Kohlendioxid in Luft inkubiert.

Was misst die Studie?

Primäre Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Maßnahmenbeschreibung
Zeitfenster
Lebendgeburtenrate
Zeitfenster: Mindestens 24. Schwangerschaftswoche bis zum Zeitpunkt der Geburt
Als Lebendgeburt gilt die Geburt mindestens eines Neugeborenen nach der 24. Schwangerschaftswoche, das ein Lebenszeichen zeigt (bei Zwillingen wird nur eine gezählt). Für den Zeitpunkt dieses Auftretens wird die anhaltende Schwangerschaft verwendet, d. h. die anhaltende Schwangerschaft nach 12 Wochen wird in Berechnungen verwendet, vorausgesetzt, dass diese anhaltende Schwangerschaft zu einer Lebendgeburt führt.
Mindestens 24. Schwangerschaftswoche bis zum Zeitpunkt der Geburt

Sekundäre Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Maßnahmenbeschreibung
Zeitfenster
Fortlaufende Schwangerschaftsrate
Zeitfenster: Mindestens 12 Wochen nach Beginn des letzten Menstruationszyklus
Schwangerschaft mit nachweisbarer Herzfrequenz in der 12. Schwangerschaftswoche
Mindestens 12 Wochen nach Beginn des letzten Menstruationszyklus
Klinische Schwangerschaftsrate
Zeitfenster: Mindestens 12 Wochen nach Beginn des letzten Menstruationszyklus
Schwangerschaft mit nachweisbarer Fruchtblase in der 7. Schwangerschaftswoche
Mindestens 12 Wochen nach Beginn des letzten Menstruationszyklus
Anzahl der entnommenen Eizellen
Zeitfenster: Maximal 30 Minuten nach der Oozytenentnahme
Die Anzahl der nach der Eizellentnahme identifizierten Eizellen
Maximal 30 Minuten nach der Oozytenentnahme
Oozytenreifungsrate
Zeitfenster: Nach mindestens 30 Stunden Reifekultur
Rate reifer Eizellen auf Kultureizellen
Nach mindestens 30 Stunden Reifekultur
Anzahl der befruchteten Eizellen
Zeitfenster: 16-18 Stunden nach intrazytoplasmatischer Spermieninjektion
Anzahl befruchteter Eizellen nach Spermienbefruchtung
16-18 Stunden nach intrazytoplasmatischer Spermieninjektion
Anzahl der Embryonen
Zeitfenster: Mindestens 3 Tage nach intrazytoplasmatischer Spermieninjektion
Anzahl der erhaltenen Teilungsembryonen
Mindestens 3 Tage nach intrazytoplasmatischer Spermieninjektion
Anzahl Embryonen guter Qualität
Zeitfenster: Mindestens 3 Tage nach intrazytoplasmatischer Spermieninjektion
Anzahl der erhaltenen Embryonen mit guter Spaltung
Mindestens 3 Tage nach intrazytoplasmatischer Spermieninjektion
Anzahl eingefrorener Embryonen
Zeitfenster: Mindestens 3 Tage nach intrazytoplasmatischer Spermieninjektion
Anzahl der eingefrorenen Teilungsembryonen
Mindestens 3 Tage nach intrazytoplasmatischer Spermieninjektion

Mitarbeiter und Ermittler

Hier finden Sie Personen und Organisationen, die an dieser Studie beteiligt sind.

Ermittler

  • Hauptermittler: Tuong M Ho, MD, Hope Research Center

Studienaufzeichnungsdaten

Diese Daten verfolgen den Fortschritt der Übermittlung von Studienaufzeichnungen und zusammenfassenden Ergebnissen an ClinicalTrials.gov. Studienaufzeichnungen und gemeldete Ergebnisse werden von der National Library of Medicine (NLM) überprüft, um sicherzustellen, dass sie bestimmten Qualitätskontrollstandards entsprechen, bevor sie auf der öffentlichen Website veröffentlicht werden.

Haupttermine studieren

Studienbeginn (TATSÄCHLICH)

29. April 2017

Primärer Abschluss (TATSÄCHLICH)

10. Oktober 2018

Studienabschluss (TATSÄCHLICH)

10. Oktober 2018

Studienanmeldedaten

Zuerst eingereicht

15. April 2019

Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat

17. April 2019

Zuerst gepostet (TATSÄCHLICH)

19. April 2019

Studienaufzeichnungsaktualisierungen

Letztes Update gepostet (TATSÄCHLICH)

23. April 2019

Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt

20. April 2019

Zuletzt verifiziert

1. April 2019

Mehr Informationen

Begriffe im Zusammenhang mit dieser Studie

Zusätzliche relevante MeSH-Bedingungen

Andere Studien-ID-Nummern

  • 17-2017/QD-CGRH-NCKH&DT

Arzneimittel- und Geräteinformationen, Studienunterlagen

Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Arzneimittelprodukt

Nein

Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Geräteprodukt

Nein

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