- ICH GCP
- Registro de ensayos clínicos de EE. UU.
- Ensayo clínico NCT03921710
CAPA-IVM frente a MIV ESTÁNDAR
Estudio de investigación para evaluar el cultivo de capacitación (CAPA) seguido de la maduración in vitro (IVM) de ovocitos humanos: un estudio piloto aleatorizado
Descripción general del estudio
Estado
Condiciones
Intervención / Tratamiento
Descripción detallada
Preparación de pacientes
Los pacientes con PCOM pueden inscribirse en el estudio: (1) mujeres con ciclos menstruales de duración normal (≤35 días) y (2) mujeres con oligomenorrea (menstruación que ocurre a intervalos >35 días con 4-9 períodos/año) o amenorrea total. Las pacientes fueron seguidas hasta el final del embarazo.
Los pacientes tienen su primera visita a la clínica el día 2 del ciclo menstrual. En esta visita se toma muestra de sangre para valoración de FSH (Hormona Folículo Estimulante), LH (Hormona Luteinizante), estradiol y progesterona, y se les inyecta gonadotropina 150 UI (unidad internacional) una vez al día por la tarde. Todos los pacientes regresan en la mañana del día siguiente (día 3 del ciclo) para la ecografía y la dosis final de gonadotropina se administra en la tarde (14:00). Cuando todos los folículos tenían menos de 8 mm de diámetro, se administró otra dosis de gonadotropina y los pacientes regresaron al día siguiente para realizarse una ecografía, análisis de sangre y recibir su dosis final de gonadotropina esa tarde (2 p. m.). El número máximo de inyecciones de gonadotropina son tres, y la extracción de ovocitos se programa a las 42-46 horas de la última inyección de gonadotropina en todas las pacientes. El día de la OPU (Oocyte Pick-up) se realizan ecografías y análisis de sangre para determinar los niveles de FSH, LH, estradiol y progesterona. Durante la OPU, el tamaño del folículo se mide antes de la punción. Los folículos más grandes (≥ 6 mm) se perforan primero, luego se limpia la aguja y luego se perforan los folículos más pequeños (< 6 mm). Por lo tanto, cada tubo contiene AOC (Cumulus-Oocyte Complex) de un tamaño específico (<6 o ≥6 mm).
cultivo de ovocitos
Los ovocitos de pacientes del grupo CAPA-IVM se recolectan y procesan en presencia de CNP (péptido natriurético tipo C) como inhibidor meiótico. En el grupo CAPA-IVM, los AOC se sembraron en una placa de 4 pocillos (Nunc, Dinamarca) a razón de 10 AOC/pocillo usando medio CAPA (Medicult IVM medium; Origio, Dinamarca) suplementado con 1 mUI/ml de rFSH, 5 ng/ml insulina, estradiol 10 nM, albúmina sérica humana 10 mg/ml [SAGE, Dinamarca] y CNP 25 nM (nanoMol) en aceite durante 24 horas a 37 °C, dióxido de carbono al 6 % en el aire). Después de 24 horas, los AOC se lavan y se transfieren a medio IVM (Origio, Dinamarca) que contiene 5 ng/ml de insulina, 10 nM de estradiol, 100 ng/ml de anfiregulina humana recombinante y 100 mUI/ml de rFSH (hormona estimulante del folículo recombinante) y se incuban bajo aceite durante 30 h a 37°C, 6% de dióxido de carbono en el aire.
En el grupo IVM estándar (control), los COC se sembraron en una placa de 4 pocillos a 10 COC/pocillo utilizando medio IVM suplementado con 75 mUI/ml de FSH recombinante (Merck, Suiza), 100 mUI/ml de hCG (MSD, EE. UU.) , 0,01 mg/ml de hormona del crecimiento (Merck, Suiza) y 10 mg/ml de albúmina sérica humana (SAGE, Dinamarca). Los AOC se incuban durante 30 horas en las mismas condiciones físicas y atmosféricas que el grupo CAPA-IVM.
Fertilización y cultivo de embriones
Después de la IVM, los ovocitos maduros se fertilizan mediante inyección intracitoplasmática de espermatozoides (ICSI) y se cultivan en una incubadora a 37 °C, 5 % de dióxido de carbono, 5 % de oxígeno. El control de fertilización se realiza a las 16-18 horas después de la ICSI. Los embriones se cultivan hasta el día 3 en Global Total LP (Life Global, Canadá) en grupos de 2-3 embriones por microgotas de 30 µL. Los embriones que cumplían con los criterios de congelación se vitrificaron (Cryotech, Japón) como embriones del tercer día de escisión. Los embriones de muy mala calidad (consenso de Estambul sobre la evaluación de la calidad del embrión) definidos como fragmentación >30 %, <6 células y multinucleación no se congelan.
Cebado endometrial y transferencia de embriones
No se realizan transferencias de embriones en fresco. Los pacientes reciben estradiol oral 2 mg 4 veces al día desde el día 2 de su ciclo menstrual. Después de un período de tratamiento con estradiol de al menos 10 días y cuando el grosor del endometrio era ≥8 mm, se administran 200 mg de progesterona por vía intravaginal 4 veces al día. La transferencia de embriones se programa 3 días después de iniciar la progesterona. La beta hCG sérica se analiza 14 días después de la transferencia del embrión. Si una mujer queda embarazada, gonadotropina coriónica humana beta (hCG) >5 mIU/mL, la administración de progesterona se mantiene en la misma dosis hasta al menos 11 semanas de embarazo. A las 7 semanas de gestación se realiza una ecografía para determinar la viabilidad del embarazo.
Seguridad del procedimiento ART (Tecnología de reproducción asistida) en PCOS
La seguridad se monitorea en cada visita a la clínica o, si ocurriera algún efecto secundario, interrogando y examinando al paciente, con eventos adversos y eventos adversos graves registrados en formularios de informes de casos. Los eventos adversos se definen como cualquier evento médico inesperado (síntomas o signos, hallazgos de laboratorio anormales o enfermedades) que surgen o empeoran durante el ensayo, en relación con la visita inicial del ensayo. Posibles eventos adversos que incluyen embarazo ectópico, aborto espontáneo, reacciones relacionadas con medicamentos como sobredosis, sensibilidad y toxicidad, y cualquier resultado adverso relacionado con la recolección de óvulos. Los eventos adversos graves se definen como cualquier evento médico inesperado que resultó en la muerte, que puso en peligro la vida, que requirió la hospitalización del paciente o la prolongación de la hospitalización existente, o que resultó en una discapacidad o incapacitación persistente o significativa. Las anomalías congénitas o defectos de nacimiento se consideran eventos adversos graves.
análisis estadístico
Un objetivo clave de este estudio es determinar la viabilidad, la aceptabilidad y la variabilidad de los resultados para ayudar a planificar un ensayo de eficacia más grande y con el poder estadístico adecuado. El tamaño de muestra planificado es de 80 pacientes (40 por grupo), lo que debería permitir conclusiones relativamente precisas con respecto a los resultados de viabilidad. Dado que es la primera vez que CAPA-IVM se utiliza clínicamente en nuestro centro, el objetivo de este estudio piloto es estimar la tasa de nacidos vivos y los intervalos de confianza (IC) del 95% asociados para la nueva intervención en la práctica clínica. Los métodos estadísticos no paramétricos, como la suma de rangos de Wilcoxon, se aplican a resultados continuos u ordinales. Para estimar los intervalos de confianza (IC) del 95 % para la diferencia entre dos medianas, se aplican métodos de muestreo inicial y remuestreo relacionados. La incidencia de los resultados se estima para cada grupo de tratamiento, y la diferencia entre los grupos se analizó mediante el riesgo relativo (RR), el IC del 95% del RR y la prueba exacta de Fisher. Se realiza un análisis de subgrupos basado en el tamaño folicular (<6 versus ≥6 mm). Los datos se presentan como valores medios con desviación estándar (SD), medianas y rangos intercuartílicos (IQR) o proporciones. Todos los análisis se realizan utilizando R (Versión 3.0.1; R Foundation for Statistical Computing, Viena, Austria). La significación estadística se define como p<0,05.
Tipo de estudio
Inscripción (Actual)
Fase
- No aplica
Contactos y Ubicaciones
Ubicaciones de estudio
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Ho Chi Minh City, Vietnam, 70000
- My Duc Hospital
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Criterios de participación
Criterio de elegibilidad
Edades elegibles para estudiar
Acepta Voluntarios Saludables
Géneros elegibles para el estudio
Descripción
Criterios de inclusión:
- < 38 años
- Pacientes con SOP con morfología de ovario poliquístico: al menos 25 folículos (2-9 mm) en todo el ovario y/o volumen ovárico aumentado (>10 ml) (es suficiente que 1 ovario cumpla con estos criterios)
- Sin anomalías uterinas u ováricas importantes
Criterio de exclusión:
- Endometriosis de grado alto (> grado 2)
- Casos con espermatozoides extremadamente pobres (OAT) como azoospermia o criptozoospermia
Plan de estudios
¿Cómo está diseñado el estudio?
Detalles de diseño
- Propósito principal: TRATAMIENTO
- Asignación: ALEATORIZADO
- Modelo Intervencionista: PARALELO
- Enmascaramiento: NINGUNO
Armas e Intervenciones
Grupo de participantes/brazo |
Intervención / Tratamiento |
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COMPARADOR_ACTIVO: CAPA-IVM
Los ovocitos inmaduros se cultivan en el nuevo sistema de capacitación-IVM.
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Los ovocitos inmaduros se sembraron en una placa de 4 pocillos (Nunc, Dinamarca) a 10 COC/pocillo utilizando medio CAPA (Medicult IVM medium; Origio, Dinamarca suplementado con 1 mUI/ml de rFSH, 5 ng/ml de insulina, 10 nM de estradiol, 10 mg/ml de albúmina sérica humana [SAGE, Dinamarca] y CNP 25 nM en aceite durante 24 h a 37 °C, 6 % de dióxido de carbono en el aire).
Después de 24 horas, los AOC se lavaron y transfirieron a medio IVM (Origio, Dinamarca) que contenía 5 ng/mL de insulina, 10 nM de estradiol, 100 ng/mL de anfiregulina humana recombinante y 100 mIU/mL de rFSH, y se incubaron en aceite durante 30 h a 37°C, 6% de dióxido de carbono en el aire.
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COMPARADOR_ACTIVO: Estándar-IVM
Los ovocitos inmaduros se cultivan en el sistema IVM estándar.
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Los ovocitos inmaduros se sembraron en una placa de 4 pocillos a 10 AOC/pocillo utilizando medio IVM suplementado con 75 mUI/ml de FSH recombinante (Merck, Suiza), 100 mUI/ml de hCG (MSD, EE. UU.), 0,01 mg/ml de hormona del crecimiento ( Merck, Suiza) y 10 mg/ml de albúmina sérica humana (SAGE, Dinamarca).
Los AOC se incubaron durante 30 horas a 37 °C, 6 % de dióxido de carbono en el aire.
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¿Qué mide el estudio?
Medidas de resultado primarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
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Tasa de nacidos vivos
Periodo de tiempo: Al menos 24 semanas de gestación hasta el momento del parto
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El nacimiento vivo se define como el nacimiento de al menos un recién nacido después de las 24 semanas de gestación que muestra algún signo de vida (gemelo será un solo conteo).
Para el momento en que esto ocurra, se utilizará el embarazo en curso, es decir, en los cálculos se utilizará el embarazo en curso a las 12 semanas, condicionado al hecho de que este embarazo en curso dé como resultado un nacimiento vivo.
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Al menos 24 semanas de gestación hasta el momento del parto
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Medidas de resultado secundarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
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Tasa de embarazo en curso
Periodo de tiempo: Como mínimo 12 semanas desde el inicio del último ciclo menstrual
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Embarazo con frecuencia cardíaca detectable a las 12 semanas de gestación
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Como mínimo 12 semanas desde el inicio del último ciclo menstrual
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Tasa de embarazo clínico
Periodo de tiempo: Como mínimo 12 semanas desde el inicio del último ciclo menstrual
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Embarazo con saco gestacional detectable a las 7 semanas de gestación
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Como mínimo 12 semanas desde el inicio del último ciclo menstrual
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Número de ovocitos recuperados
Periodo de tiempo: Máximo a los 30 minutos después del procedimiento de recuperación de ovocitos
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El número de ovocitos identificados después de la recuperación de ovocitos.
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Máximo a los 30 minutos después del procedimiento de recuperación de ovocitos
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Tasa de maduración de ovocitos
Periodo de tiempo: Después de al menos 30 horas de cultivo de maduración
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Tasa de ovocitos maduros en ovocitos de cultivo
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Después de al menos 30 horas de cultivo de maduración
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Número de ovocitos fertilizados
Periodo de tiempo: 16-18 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Número de ovocitos fertilizados después de la inseminación de esperma
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16-18 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Número de embriones
Periodo de tiempo: Al menos 3 días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Número de embriones de escisión obtenidos
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Al menos 3 días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Número de embriones de buena calidad.
Periodo de tiempo: Al menos 3 días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Número de embriones de buena segmentación obtenidos
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Al menos 3 días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Número de embriones congelados
Periodo de tiempo: Al menos 3 días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Número de embriones de escisión congelados
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Al menos 3 días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Investigadores
- Investigador principal: Tuong M Ho, MD, Hope Research Center
Fechas de registro del estudio
Fechas importantes del estudio
Inicio del estudio (ACTUAL)
Finalización primaria (ACTUAL)
Finalización del estudio (ACTUAL)
Fechas de registro del estudio
Enviado por primera vez
Primero enviado que cumplió con los criterios de control de calidad
Publicado por primera vez (ACTUAL)
Actualizaciones de registros de estudio
Última actualización publicada (ACTUAL)
Última actualización enviada que cumplió con los criterios de control de calidad
Última verificación
Más información
Términos relacionados con este estudio
Términos MeSH relevantes adicionales
Otros números de identificación del estudio
- 17-2017/QD-CGRH-NCKH&DT
Información sobre medicamentos y dispositivos, documentos del estudio
Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.
Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.
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