- ICH GCP
- Registro de ensayos clínicos de EE. UU.
- Ensayo clínico NCT05343611
Chocolate y ejercicio físico para reducir la desnutrición en ancianos predemencia (Choko-AGE)
Combinación de chocolate funcionalizado con vitamina E con ejercicio físico para reducir el riesgo de desnutrición proteico-energética en personas ancianas con predemencia
Descripción general del estudio
Estado
Condiciones
Descripción detallada
ANTECEDENTES Los adultos mayores son particularmente vulnerables a la desnutrición, un estado resultante de una ingesta o absorción de alimentos defectuosa (deficiencias de nutrientes) que conduce a una composición corporal alterada y pérdida de peso. La pérdida de masa muscular es un inconveniente importante de esta afección y un síntoma de desnutrición proteico-energética (PEM, por sus siglas en inglés) y reprogramación metabólica de los tejidos que aumentan el proceso de envejecimiento. Estos cambios mantienen la resistencia a la insulina y el metabolismo mitocondrial deteriorado de órganos y tejidos críticos, incluido el músculo esquelético. La prevención de la desnutrición es fundamental. La desnutrición se correlaciona con un deterioro acelerado y general de las condiciones de salud (empeorando tanto los aspectos físicos como cognitivos/mentales), aumentando así el riesgo de fragilidad y, finalmente, acelerando el deterioro físico y cognitivo. Bajo estas circunstancias, la mayoría de las personas experimentan una pérdida significativa de la función locomotora, con una disminución significativa en la calidad de vida y un alto riesgo de caídas que a menudo representa el evento terminal en la vida. Estos factores pueden reducir el umbral de fragilidad de los mayores, con la consiguiente pérdida de adaptabilidad, característica esencial del envejecimiento exitoso. Este proceso de deterioro de la movilidad es multifactorial y también incluye la disminución de la función cognitiva, el aumento de la fragilidad ósea y la reducción de la flexibilidad de las articulaciones.
Fuerte evidencia sugiere que el envejecimiento y el deterioro cognitivo están asociados con la desregulación del eje hipotálamo-pituitario-suprarrenal (eje HPA), con un claro aumento en los niveles de cortisol. Los efectos del hipercortisolismo son de largo alcance y afectan ampliamente al músculo esquelético, lo que lleva a una sarcopenia y fragilidad significativas. Es bien sabido que la actividad del eje HPA está alterada en pacientes con enfermedad de Alzheimer (EA). Esta desregulación induce un aumento en los niveles de cortisol. Los altos niveles de cortisol, una de las hormonas más catabólicas, también conducen a una sarcopenia notable. Los aspectos mecanicistas incluyen efectos antagónicos sobre el eje de la insulina (resistencia secundaria a la insulina) y la consiguiente reprogramación metabólica de los tejidos para la gluconeogénesis sostenida por precursores no carbohidratos que incluyen aminoácidos derivados de la degradación proteolítica de las proteínas musculares. La comorbilidad en personas frágiles puede sostener aún más la secreción y los efectos metabólicos del cortisol, especialmente la desnutrición y la PEM. Algunos de nosotros mostramos previamente que los niveles de cortisol son significativamente más altos en pacientes con EA y la gravedad de los síntomas conductuales y, lo que es más importante, los cambios en la masa corporal, se correlacionan significativamente con los niveles de cortisol. Por lo tanto, los niveles de cortisol, que no se evalúan regularmente en pacientes con EA, ayudarían a predecir pacientes con riesgo de pérdida de peso.
Además, hallazgos recientes revelaron una disminución significativa en los niveles de cortisol en respuesta a la actividad física crónica en individuos sanos y pacientes con demencia. El tratamiento con actividad física (PT) es un tratamiento no farmacológico con gran potencial para atenuar el deterioro cognitivo en ancianos sanos. En pacientes con Deterioro Cognitivo Leve (DCL) se observó que 6 meses de PT mejoran significativamente el IMC, la Prueba de Marcha de 6' (6MWT), la presión arterial sistólica y diastólica, la glucosa, el colesterol y los triglicéridos. Es importante destacar que el PT se puede realizar preferentemente como intervalos de alta intensidad aeróbica (85-95% de la frecuencia cardíaca máxima) (HIT), ya que esto produce efectos superiores sobre el sistema cardiovascular en comparación con el PT de intensidad moderada o baja. El HIT se ha aplicado con éxito en personas mayores (8,9) y en poblaciones frágiles, como pacientes con insuficiencia cardíaca.
Junto con la actividad física, se informa que los macro y micronutrientes interactúan con la actividad del eje HPA y ayudan a reducir los niveles de cortisol. Los polifenoles del chocolate parecen tener efectos significativos tanto en el bienestar mental como en los síntomas metaboinflamatorios de la exposición crónica a dicha hormona del estrés (3,11-13). Los flavonoides derivados del cacao pueden reducir los niveles de la hormona activa cortisol. Mecánicamente, estas moléculas naturales inhiben la 11β-hidroxiesteroide deshidrogenasa (11β-HSD) tipo 1, una enzima involucrada en la reducción de la cortisona a la forma activa de cortisol. La ingesta de estos y muchos otros micronutrientes y factores homeostáticos disminuye con el envejecimiento debido al empeoramiento general de la cantidad y calidad de la ingesta de alimentos. Junto con los micronutrientes, la ingesta de proteínas es un aspecto crítico y un factor de riesgo importante para PEM y fragilidad. Se ha demostrado que la suplementación nutricional para personas frágiles ralentiza su declive funcional, mejorando tanto la masa muscular como la fuerza, especialmente si se combina con actividad física. Ahora se establece que las recomendaciones nutricionales, incluida la ingesta adecuada de proteínas y micronutrientes, son importantes para una mejor calidad de vida en los ancianos, que es un enfoque de manejo común de las personas mayores frágiles o en riesgo de desarrollar fragilidad.
La vitamina E es un micronutriente esencial liposoluble con propiedades únicas como antioxidante y factor de protección celular. Está presente en las membranas celulares de todos los tejidos para eliminar los radicales peroxilo formados por el ataque de los radicales libres a los ácidos grasos poliinsaturados. Esta función es particularmente importante para prevenir el daño mitocondrial y la liberación incontrolada de radicales libres de estos orgánulos en el músculo. Su ingesta y función como factor de protección celular y modulador del sistema inmunitario puede verse comprometida en el adulto mayor (20); además, estudios preclínicos y experimentales en humanos muestran que la vitamina E influye positivamente en la proliferación, diferenciación, supervivencia, reparación de membranas, eficiencia mitocondrial, masa muscular, propiedades contráctiles de los músculos y capacidad de ejercicio de los mioblastos. Además, estudios recientes sobre el metabolismo humano de la vitamina E demostraron que la biotransformación de esta vitamina en los tejidos humanos forma metabolitos de cadena larga biodisponibles con un papel como desintoxicante tisular (actividad agonista de PXR y PPAR-gamma) y antiinflamatorio (LOX-5 inhibición) mediadores. Por lo tanto, por múltiples razones, vale la pena investigar la suplementación con vitamina E en la dieta como una medida para apoyar el entrenamiento físico en la prevención de la PEM asociada con la edad.
OBJETIVOS El estudio tiene como objetivo investigar si el consumo regular de chocolate rico en polifenoles y funcionalizado con vitamina E puede ayudar al ejercicio físico con una dieta alta en proteínas para ralentizar la progresión de la desnutrición proteico-energética en personas mayores con predemencia. Específicamente, el objetivo principal es investigar si el consumo regular de chocolate rico en polifenoles y funcionalizado con vitamina E y la práctica regular de ejercicio aumentan la masa muscular de las extremidades inferiores en personas mayores con predemencia. Los objetivos secundarios son investigar el efecto del consumo regular de chocolate rico en polifenoles y funcionalizado con vitamina E y la práctica regular de ejercicio sobre la fuerza muscular, la función cognitiva, la función vascular, las funciones metabólicas y físicas, así como la respiración mitocondrial, la curva circadiana de cortisol, hormonas sanguíneas y estado inflamatorio en sangre y ARNm en personas mayores con pre-demencia.
PROCEDIMIENTO El estudio será un ensayo aleatorizado, doble ciego, controlado con grupos paralelos que incluyen grupos de control activo y de vergüenza. Ciento cincuenta individuos con DCL y deterioro cognitivo subjetivo sin déficits funcionales serán evaluados para elegibilidad y aquellos que cumplan con los criterios de inclusión y exclusión serán confirmados y el consentimiento informado se asignará para la prueba y se someterá a evaluaciones preliminares (T00). Después de la evaluación preliminar, todos los individuos incluidos en el estudio se someterán a una fase de "inicio" de 4 a 6 semanas durante la cual se introducirá la dieta alta en proteínas (HPro) y todos los sujetos serán entrenados para implementar el entrenamiento de alta intensidad. programa de ejercicio físico (HIT) que se desarrollará durante el estudio. Inmediatamente después del "Run-in", se realizará una evaluación previa a la intervención (T0). En consecuencia, los participantes estabilizados con HPro Diet + HIT, que será el tratamiento común para todos los participantes, serán asignados aleatoriamente (utilizando un programa web de computación estadística en línea) a uno de los tres brazos de la intervención nutricional en los que el efecto de la vitamina E (VE) se investigará por separado o combinado con el efecto de los polifenoles del chocolate (HPP) en comparación con el tratamiento de control. La intervención tendrá una duración de seis meses; las valoraciones se realizarán a los tres meses (a la mitad de la intervención) y al final de la intervención (T1 y T2, respectivamente). Se realizará una evaluación de seguimiento a los tres meses de finalizada la intervención tras el restablecimiento de las condiciones basales de alimentación y actividad física (T3). Cada grupo incluirá 27 participantes; se ha estimado una deserción del 20% en base a estudios previos.
CÁLCULO DEL TAMAÑO DE LA MUESTRA El tamaño de muestra propuesto es de 75 (25 para cada grupo), según alfa = 0,05 y potencia = 0,8. El resultado principal es la "masa muscular", y para todos los grupos la duración del tratamiento será de 6 meses. En 6 meses en la población diana, se supone que la pérdida de masa muscular es del 1,0-1,5 % (+/- 0,5 %) [5]. En el grupo Control (Grupo A), que incluye a las personas que realizan ejercicio dirigido, el aumento esperado es del 2% (+-0,5%) [5]. En los grupos de tratamiento (Grupos B y C), la mediana del aumento esperado en el segundo seguimiento es del 4 % (+-0,5 %) y del 1,5 % (+-0,5 %) a los 6 meses [6]. La tasa de pérdidas en el seguimiento, derivada de estudios previos, es del 20% (+-2%) [7]. Se supone que la correlación entre medidas repetidas es 0,5, la varianza explicada por el efecto entre sujetos 6,25 y la varianza del error 65. Todas las estimaciones se realizaron utilizando Stata v.16.1 (StataCorp LP, College Station, TX, EE. UU.) mediante el comando "potencia repetida". 14
ANÁLISIS ESTADÍSTICO El análisis estadístico se realizará bajo la supervisión de un experto en bioestadística (dr. Gili, en la Unidad Coordinadora) y con el apoyo del software LIPOSTAR proporcionado por el colaborador externo C2. Se utilizará un ANOVA bidireccional de medidas repetidas, que incluye la edad y el sexo como covariables, con "tiempo" como factor dentro del grupo y "tratamiento" como factor entre grupos para calcular la diferencia entre grupos. En presencia de efectos significativos, se realizarán pruebas de comparaciones múltiples con la corrección de Bonferroni. El nivel alfa familiar de significación se establecerá en 0,05 (dos colas), con la corrección de Bonferroni cuando sea necesario, para todos los análisis.
EFECTOS SECUNDARIOS Los efectos secundarios pueden estar relacionados con los procedimientos de evaluación: las pruebas de fuerza, activación voluntaria y potencial evocado eléctricamente pueden causar dolor muscular y molestias durante los procedimientos. En caso de malestar persistente, el procedimiento se detendrá de inmediato. Además, los efectos secundarios pueden ser causados por la extracción de sangre y la biopsia muscular: los sujetos pueden experimentar algunos efectos secundarios relacionados con la extracción de sangre en el lugar de la extracción, que normalmente ocurre entre los días siguientes. Además, los sujetos pueden experimentar algo de dolor en el sitio de la biopsia, tensión muscular y fatiga en los pocos días posteriores a la toma de la biopsia. En el caso de estos eventos, se realizará un seguimiento del sujeto y se informará al médico de familia.
COMITÉ DE SEGUIMIENTO DE DATOS Y SEGURIDAD Cada participante llevará un diario de registro que será revisado semanalmente por los investigadores y colaboradores. En el diario los participantes incluirán información sobre posibles eventos adversos causados por los procedimientos de evaluación o relacionados con la dieta y el entrenamiento, cualquier punto importante sobre la respuesta a las intervenciones, cualquier posible malestar experimentado durante o después del entrenamiento, o notas sobre la dieta y la suplementación. El Prof. Gianluca-Svegliati Baroni de la División de Gastroenterología del Hospital Universitario de Ancona, Italia, actuará como supervisor científico externo del ensayo clínico. Es experto en estudios clínicos y preclínicos de nutrición y metabolismo humanos. Asesorará sobre tareas específicas y supervisará las diferentes fases del ensayo clínico desde la organización hasta la implementación de actividades, recopilación de datos y evaluación/interpretación. Se adoptarán los estándares de garantía de calidad de la Universidad de Verona para monitorear el ensayo clínico. Se nombrará un delegado de esta Universidad para realizar el seguimiento de las diferentes fases del ensayo utilizando SOP internos. Todo el conjunto de procedimientos clínicos, la actividad del operador y la recopilación de datos experimentales se verificará durante una serie de visitas del monitor que ocurrirán al principio y al final de cada punto de tiempo en el estudio (Tiempo T00 a T3).
Tipo de estudio
Inscripción (Estimado)
Fase
- No aplica
Contactos y Ubicaciones
Estudio Contacto
- Nombre: Roberto Modena, PhD
- Número de teléfono: 00390464483508
- Correo electrónico: roberto.modena@univr.it
Ubicaciones de estudio
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Mantova, Italia, 46100
- Reclutamiento
- Fondazione Mons. A. Mazzali ONLUS
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Contacto:
- Ettore Muti, M.D.
- Correo electrónico: ettore.muti@fondazionemazzali.it
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Verona, Italia, 37131
- Reclutamiento
- University of Verona
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Contacto:
- Roberto Modena, PhD
- Número de teléfono: +390464483508
- Correo electrónico: roberto.modena@univr.it
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Sub-Investigador:
- Anna Pedrinolla, PhD
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Sub-Investigador:
- Claudia Baschirotto, MSc
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Investigador principal:
- Massimo Venturelli, PhD
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Trento
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Rovereto, Trento, Italia, 38068
- Reclutamiento
- CeRiSM (Sport Mountain and Health Research Center)
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Contacto:
- Roberto Modena, PhD
- Número de teléfono: +390464483508
- Correo electrónico: roberto.modena@univr.it
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Verona
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Peschiera Del Garda, Verona, Italia, 37019
- Reclutamiento
- Clinica Pederzoli
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Contacto:
- Sandro Caffi, M.D.
- Correo electrónico: sandro.caffi@centroservizipederzoli.it
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Criterios de participación
Criterio de elegibilidad
Edades elegibles para estudiar
Acepta Voluntarios Saludables
Descripción
Criterios de inclusión:
- Presencia de Deterioro Cognitivo Leve o Demencia Leve. Las personas reclutadas serán evaluadas mediante pruebas Neuropsicológicas (Mini Examen del Estado Mental, criterios de evaluación del Manual Diagnóstico y Estadístico del Trastorno Mental-5) que serán realizadas por un Neuropsicólogo experto
Criterio de exclusión:
- Presencia de insuficiencia renal o hepática, o cualquier otra enfermedad hepática o renal;
- Presencia de trastornos gastrointestinales (es decir, síndrome del intestino irritable);
- Presencia de intolerancia alimentaria;
- Presencia de insuficiencia cardíaca, angina, enfermedad pulmonar, cáncer y caquexia relacionada con el cáncer;
- Presencia de trastornos de la coagulación;
- Conducta adictiva o adictiva previa, definida como el abuso de cannabis, opioides u otras drogas, portador de enfermedades infecciosas;
- Presencia de enfermedades musculoesqueléticas;
- Sufrir de enfermedad mental, incapacidad para cooperar;
- Sufrir de afecciones cardíacas conocidas (p. marcapasos, arritmias y alteraciones de la conducción cardíaca) o neuropatía periférica;
- Usuarios habituales de cualquier inhibidor de la bomba de protones (p. ej., omeprazol, lansoprazol, pantoprazol), antibióticos, medicamentos anticoagulantes o medicamentos antiplaquetarios en dosis altas (p. ej., ácido acetilsalicílico >200 mg x día);
- Mini Estado Mental (MMSE): resultados >= 24 puntos
Plan de estudios
¿Cómo está diseñado el estudio?
Detalles de diseño
- Propósito principal: Tratamiento
- Asignación: Aleatorizado
- Modelo Intervencionista: Asignación paralela
- Enmascaramiento: Cuadruplicar
Armas e Intervenciones
Grupo de participantes/brazo |
Intervención / Tratamiento |
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Comparador activo: Grupo A (Controles: dieta HPro y HIT)
Los sujetos incluidos en este grupo servirán como controles y mantendrán el programa HPro Diet + HIT prescrito a todos los participantes incluidos en la etapa de aleatorización del estudio.
La dieta de los sujetos se ajustará para recibir la misma ingesta total de calorías (+ 180 kcal) y macronutrientes (+ 3 g de proteínas, 4 g de carbohidratos, +11 g de grasa, + 4 g de fibras) que los productos de chocolate. proporcionará a los grupos B y C.
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Se proporcionará una dieta alta en proteínas (HPro) para mantener el punto final calórico individual y para ajustar la ingesta de proteínas a 0.9-1.0 g/kg de peso corporal ideal. Cada participante recibirá una dieta personalizada (teniendo en cuenta las preferencias personales) que seguirá pautas generales comunes. Las porciones de alimentos ricos en polifenoles se limitarán a una por día. Se realizará ejercicio físico tres veces por semana durante unos 50 minutos por sesión. La intervención consistirá en ejercicios tanto aeróbicos como de fuerza. El ejercicio aeróbico consistirá en caminar en cinta ergométrica con 4 x 4 minutos al (85-95% de la FCmáx), interrumpidos por periodos de recuperación activa de 3 minutos (60-70% de la FCmáx). El ejercicio de fuerza consiste en un entrenamiento de fuerza máxima, utilizando una prensa de piernas sentado con 4 series de 4 repeticiones a ~90% de la fuerza máxima (1RM). Los descansos entre series serán de 3-4 min. |
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Comparador falso: Grupo B (Caso 1: HPP Choko)
Los individuos incluidos en este grupo realizarán la misma dieta y ejercicio físico que el grupo A y además añadirán a su dieta 30g de chocolate negro al 85% alto en PP (HPP ≥ 500 mg de PP y correspondiente a ≥ 60 mg de epicatequina).
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Se proporcionará una dieta alta en proteínas (HPro) para mantener el punto final calórico individual y para ajustar la ingesta de proteínas a 0.9-1.0 g/kg de peso corporal ideal. Cada participante recibirá una dieta personalizada (teniendo en cuenta las preferencias personales) que seguirá pautas generales comunes. Las porciones de alimentos ricos en polifenoles se limitarán a una por día. Se realizará ejercicio físico tres veces por semana durante unos 50 minutos por sesión. La intervención consistirá en ejercicios tanto aeróbicos como de fuerza. El ejercicio aeróbico consistirá en caminar en cinta ergométrica con 4 x 4 minutos al (85-95% de la FCmáx), interrumpidos por periodos de recuperación activa de 3 minutos (60-70% de la FCmáx). El ejercicio de fuerza consiste en un entrenamiento de fuerza máxima, utilizando una prensa de piernas sentado con 4 series de 4 repeticiones a ~90% de la fuerza máxima (1RM). Los descansos entre series serán de 3-4 min.
Los participantes añaden a su dieta 30 g/día de chocolate negro 85% alto en polifenoles
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Experimental: Grupo C (Caso 2: HPP/VE Chocolate)
Las personas incluidas en este grupo realizarán la misma dieta y ejercicio físico que el grupo A y además añadirán a su dieta 30 gramos de chocolate negro HPP al 85% funcionalizado con 100 mg de vitamina E al día.
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Se proporcionará una dieta alta en proteínas (HPro) para mantener el punto final calórico individual y para ajustar la ingesta de proteínas a 0.9-1.0 g/kg de peso corporal ideal. Cada participante recibirá una dieta personalizada (teniendo en cuenta las preferencias personales) que seguirá pautas generales comunes. Las porciones de alimentos ricos en polifenoles se limitarán a una por día. Se realizará ejercicio físico tres veces por semana durante unos 50 minutos por sesión. La intervención consistirá en ejercicios tanto aeróbicos como de fuerza. El ejercicio aeróbico consistirá en caminar en cinta ergométrica con 4 x 4 minutos al (85-95% de la FCmáx), interrumpidos por periodos de recuperación activa de 3 minutos (60-70% de la FCmáx). El ejercicio de fuerza consiste en un entrenamiento de fuerza máxima, utilizando una prensa de piernas sentado con 4 series de 4 repeticiones a ~90% de la fuerza máxima (1RM). Los descansos entre series serán de 3-4 min.
Los participantes añaden a su dieta 30 gramos de chocolate negro 85% alto en polifenoles, funcionalizado con 100 mg de vitamina E al día.
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¿Qué mide el estudio?
Medidas de resultado primarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
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Cambio en la masa de tejido blando libre de grasa (g)
Periodo de tiempo: Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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El cambio en la masa de tejido blando libre de grasa (FFSTM, g) se evaluará mediante una exploración de todo el cuerpo en un escáner de absorciometría de rayos X de energía dual.
También se considerarán valores a nivel regional (miembros superiores, miembros inferiores y tronco).
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Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Medidas de resultado secundarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
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Cambio en el torque (Nm) y la tasa de desarrollo del torque (Nm/s) de los cuádriceps durante la Activación Voluntaria Máxima y el potencial evocado eléctricamente
Periodo de tiempo: Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Las contracciones musculares máximas voluntarias y provocadas eléctricamente del músculo cuádriceps de la pierna dominante se medirán utilizando una configuración personalizada. El torque (Nm) y la tasa de desarrollo del torque (Nm/s) durante una contracción voluntaria máxima y una estimulación tetánica se compararán para estimar el papel del flujo de comando central al músculo en el cambio de la eficiencia del desarrollo de la tensión en el músculo. tendón. |
Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Cambio en la carga máxima de una repetición (kg)
Periodo de tiempo: Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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La fuerza máxima se obtendrá como 1 repetición máxima (1RM) en la máquina de ejercicios de sentadillas (Prensa de piernas) 1RM se registrará como la carga levantada más pesada, en kilogramos, lograda dentro de 4-8 levantamientos, aplicando períodos de descanso de ~4 min y incrementos de 5 kg entre cada ensayo hasta el fallo
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Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Cambio en la Tasa de Desarrollo de la Fuerza (N/s)
Periodo de tiempo: Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Inmediatamente después de la prueba de 1RM, utilizando el mismo aparato, se evaluará la tasa de desarrollo de la fuerza (N/s) y la fuerza máxima (N) utilizando una plataforma de fuerza y aplicando una carga correspondiente al 75 % de la 1RM previa a la prueba del participante.
Los análisis de RFD de fase temprana y tardía pueden proporcionar información útil sobre la contribución neural y muscular relativa, respectivamente, al desarrollo de la fuerza muscular.
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Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Cambio en el consumo de oxígeno submáximo y máximo (ml/kg/min)
Periodo de tiempo: Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Los individuos realizarán una prueba de caminata de 3 velocidades, en una caminadora. En primer lugar, se les pedirá a los sujetos que permanezcan en reposo durante 2 minutos mientras se registra el consumo de oxígeno en reposo. Luego se les pedirá que caminen tres períodos de 5 minutos al 80 %, 100 % y 120 % de la velocidad seleccionada por ellos mismos, respectivamente. El consumo de oxígeno (ml/kg/min) a estas tres velocidades se considerará para el análisis. Progresando continuamente desde la prueba submáxima, se medirá el consumo máximo de oxígeno (ml/kg/min) durante una prueba de ejercicio de protocolo en rampa empleando incrementos cada minuto hasta el agotamiento. |
Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Cambio en la puntuación del miniexamen del estado mental (puntos)
Periodo de tiempo: Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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El funcionamiento cognitivo global será evaluado mediante Mini-Examen del Estado Mental por un Neuropsicólogo experto
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Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Cambio en la dilatación mediada por flujo (%)
Periodo de tiempo: Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Se tomarán imágenes de la arteria braquial utilizando un sistema Doppler de ultrasonido de alta resolución.
Después de la toma de imágenes de la arteria braquial de referencia (medición basal), se colocará un manguito de presión arterial alrededor del antebrazo y se inflará a 250 mmHg durante 5 min.
Las imágenes de la arteria braquial y la velocidad de la sangre se obtendrán continuamente 30 s antes y 2 min después de la liberación del manguito.
La dilatación mediada por flujo se calculará como un cambio porcentual del diámetro máximo en respuesta a la hiperemia reactiva en relación con el diámetro de referencia.
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Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Cambio en el pico del delta del flujo sanguíneo (ml/min) durante una prueba de movimiento pasivo de una sola pierna
Periodo de tiempo: Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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El protocolo de movimiento pasivo único de la pierna consta de 30 segundos de recopilación de datos de flujo sanguíneo femoral de referencia en reposo, seguidos de 1 sola flexión y extensión pasiva de la rodilla con la misma medida durante los siguientes 60 segundos.
La velocidad media de la sangre (Vmedia) se analizará con una resolución de 1 Hz en el sistema de ultrasonido Doppler durante 30 s en reposo y segundo a segundo durante los 60 s siguientes al movimiento pasivo único.
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Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Cambio en la velocidad de la onda del pulso (m/s)
Periodo de tiempo: Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Se tomarán medidas de ultrasonido Doppler en la carótida, la arteria femoral común y la arteria braquial, para evaluar la rigidez arterial periférica.
Se calculará PWV.
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Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Cambio en la distancia (metros) durante la prueba de caminata de 6 minutos
Periodo de tiempo: Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Durante la prueba de marcha de 6 minutos, una persona tiene que caminar lo más rápido posible durante 6 minutos.
Se registrará la distancia (metros) recorrida en 6 minutos.
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Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Cambio en el tiempo (min) durante la prueba Time-up and go (TUG)
Periodo de tiempo: Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Se le pedirá al individuo que se siente en una silla y a la palabra "Go" tiene que ponerse de pie, caminar hasta un marcador de 3 metros de distancia, dar la vuelta y caminar de regreso a la silla y sentarse de nuevo.
Esta prueba se repetirá 3 veces y se registrará la mejor puntuación (tiempo).
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Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Cambio en la puntuación (número de aumentos) durante la prueba de 30 segundos de pararse en una silla
Periodo de tiempo: Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Se le pedirá al individuo que se siente en una silla, para mantener cada mano en el hombro opuesto cruzado en las muñecas.
Cuando comience la prueba, se les pedirá a las personas que se pongan de pie y luego se vuelvan a sentar, repitiendo este movimiento durante 30 segundos.
La puntuación será el número de subidas realizadas en 30 segundos.
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Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Cambios en la curva de cortisol circadiano (niveles en 4 momentos específicos a lo largo del día, ng/mL)
Periodo de tiempo: Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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El cortisol salival se medirá utilizando dispositivos simples de recolección Sarstedt Salivette (Nürmbrecht, Alemania). Inmediatamente después de la recolección de la muestra, los tubos Salivette se centrifugarán durante 2 minutos a 1000 rpm y se almacenarán a -80 °C hasta el análisis. Los niveles de cortisol se determinarán mediante un inmunoensayo de fluorescencia de resolución temporal. Para evaluar la curva circadiana de cortisol se tomarán muestras a las 7, 11, 15 y 20 horas. |
Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Respuesta aguda de cortisol al ejercicio (porcentaje delta entre antes y después de una sesión de entrenamiento, %)
Periodo de tiempo: Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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La respuesta aguda de cortisol al ejercicio se derivará del cortisol salival recolectado justo antes y justo después de una sola sesión de ejercicio.
El cortisol salival se medirá utilizando dispositivos simples de recolección Sarstedt Salivette (Nürmbrecht, Alemania).
Inmediatamente después de la recolección de la muestra, los tubos Salivette se centrifugarán durante 2 minutos a 1000 rpm y se almacenarán a -80 °C hasta el análisis.
Los niveles de cortisol se determinarán mediante un inmunoensayo de fluorescencia de resolución temporal.
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Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Cambio en las concentraciones de IL-6 (pg/mL) e IGF-1 (ng/mL).
Periodo de tiempo: Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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De una muestra de sangre se obtendrán 100 microlitros de plasma con EDTA como anticoagulante, y se almacenará a -80ºC hasta su análisis.
La concentración de IL-6 e IGF1 se medirá mediante un kit Elisa específico.
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Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Cambio en malondialdehído (MDA, μM)
Periodo de tiempo: Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Para la determinación de la peroxidación lipídica (medida como malondialdehído) por HPLC, utilizaremos el método descrito por Wong et al. (1987).
Se cuantificará el aducto tiobarbitúrico-MDA y esto da una estimación de la peroxidación lipídica.
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Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Cambio en la expresión de ARNm
Periodo de tiempo: Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Las muestras de ARN se procesarán siguiendo los protocolos específicos de la plataforma y los resultados finales se analizarán bioinformáticamente.
Se utilizarán canalizaciones y software de análisis de expresión para analizar los perfiles de expresión diferencial de los genes seleccionados.
También analizaremos SUB-REDES, esto es para ver las relaciones que existen entre los diferentes transcritos para tratar de encontrar rutas moleculares comunes.
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Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Cambio en la composición de la microbiota
Periodo de tiempo: Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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El ADN bacteriano se extraerá de muestras fecales y luego se amplificará y secuenciará utilizando una plataforma de secuenciación de próxima generación (NGS) de alto rendimiento capaz de generar millones de secuencias cortas (lecturas) por cada ejecución.
Luego, las secuencias se procesarán utilizando una canalización bioinformática cuyos pasos se pueden resumir de la siguiente manera: recopilación de datos sin procesar, limpieza de datos, ensamblaje, predicción de genes, anotación taxonómica, estimación de abundancia de genes y proteínas.
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Línea de base (T00), Pre-intervención (T0) después de 2-4 semanas, Intervención media (T1) después de 3 meses, Post-intervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Cambio en la histología muscular y tipificación de fibras
Periodo de tiempo: Preintervención (T0), Intervención media (T1) después de 3 meses, Postintervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Después de la biopsia, una porción del músculo se orientará transversalmente y se sumergirá en una solución de isopentano sumergida en nitrógeno líquido, y posteriormente se almacenará a -80°C. Para su análisis, se cortarán en criosecciones de 10 μm de espesor con un criostato mantenido a - 20°C y montado en portaobjetos de vidrio.
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Preintervención (T0), Intervención media (T1) después de 3 meses, Postintervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Cambio en la respiración mitocondrial del músculo
Periodo de tiempo: Preintervención (T0), Intervención media (T1) después de 3 meses, Postintervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Después de la biopsia, los haces de fibras musculares se transferirán inmediatamente al respirómetro.
Las muestras de biopsia de 2-5 mg se procesarán por duplicado en el sistema de dos cámaras calibrado.
La respirometría se realizará a una temperatura de cámara de 37 °C aplicando un protocolo de titulación de inhibidor desacoplador de sustrato (SUIT) optimizado para fibras musculares esqueléticas
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Preintervención (T0), Intervención media (T1) después de 3 meses, Postintervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Cambio en el músculo Características de fuerza in vitro
Periodo de tiempo: Preintervención (T0), Intervención media (T1) después de 3 meses, Postintervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Después de la biopsia, se disecarán haces de fibras de 4-6 mm de longitud y 0,5 mm de diámetro de las muestras y se sumergirán en una solución de descortezado a la que se ha añadido el detergente no iónico Brij 58.
A continuación, los haces de fibra se colocarán en una solución de almacenamiento y se mantendrán durante 24 horas a 4 °C, seguido de almacenamiento y transporte a -20 °C.
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Preintervención (T0), Intervención media (T1) después de 3 meses, Postintervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Cambio en las medidas de una sola fibra muscular
Periodo de tiempo: Preintervención (T0), Intervención media (T1) después de 3 meses, Postintervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Se retirará un manojo de fibras permeabilizadas de la solución de almacenamiento y se colocará en una solución relajante sobre hielo.
Un extremo de la fibra se asegurará a un transductor de fuerza, el otro extremo se unirá al brazo de palanca de un servomotor.
Se ajustará la longitud de la fibra para obtener una longitud media de sarcómero de 2,5-2,6 um.
El área de la sección transversal de la fibra se medirá y las fibras individuales relajadas se activarán sumergiéndolas primero en una cámara que contiene una solución preactivadora de baja concentración de Ca2+ durante 3 minutos y luego sumergiéndolas en una cámara que contiene una solución activadora de alta [Ca2+].
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Preintervención (T0), Intervención media (T1) después de 3 meses, Postintervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Cambio en el ARNm de citoquinas musculares
Periodo de tiempo: Preintervención (T0), Intervención media (T1) después de 3 meses, Postintervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Una parte de la muestra de músculo congelada se descongelará en hielo.
El ARNm para un panel de citocinas proinflamatorias se examinará mediante PCR cuantitativa en tiempo real (qPCR).
El ARN se aislará mediante el método de extracción estándar Trizol® y se purificará mediante el kit de limpieza RNeasy; El ADNc se sintetizará utilizando el kit de primera hebra iScript a partir de 1 μg de ARN aislado.
El panel de citoquinas a examinar incluirá CCL2, CCL5, CXCL1 e IL-6 y S29.
Los objetivos se amplificarán a partir de 1 μg de ADNc con el reactivo de mezcla maestra SYBR Green y se amplificarán con un termociclador Bio-Rad.
El ciclo de umbral para los genes diana de interés se normalizará a s29 y se expresará como cambio de pliegue utilizando el método delta-delta ct (2-ΔΔct).
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Preintervención (T0), Intervención media (T1) después de 3 meses, Postintervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Cambio en el estado redox del músculo
Periodo de tiempo: Preintervención (T0), Intervención media (T1) después de 3 meses, Postintervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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La evaluación del estado redox del músculo se llevará a cabo mediante el análisis del contenido de glutatión oxidado y reducido de la biopsia junto con el análisis del estado redox de las mitocondrias mediante el análisis de la proporción de peroxirredoxina 3 en forma oxidada, y el citosol mediante el análisis de la proporción de peroxirredoxina 2 en forma oxidada.
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Preintervención (T0), Intervención media (T1) después de 3 meses, Postintervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Cambio en la proteómica muscular
Periodo de tiempo: Preintervención (T0), Intervención media (T1) después de 3 meses, Postintervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Una porción del músculo congelado se descongelará en hielo y se preparará para el análisis proteómico como se describió anteriormente.
Se utilizará un enfoque proteómico global sin etiquetas utilizando un sistema nano Ultimate 3000 RSLC acoplado a un espectrómetro de masas QExactive.
El análisis de datos se realizará utilizando el software Proteome Discover y Peaks7.
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Preintervención (T0), Intervención media (T1) después de 3 meses, Postintervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Cambio en el volumen del cuádriceps y el área de la sección transversal
Periodo de tiempo: Preintervención (T0), Intervención media (T1) después de 3 meses, Postintervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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El volumen del cuádriceps y el área de la sección transversal (CSA) se medirán mediante el método de ultrasonido. Todas las imágenes de ultrasonido serán adquiridas por un operador experto con el mismo dispositivo de ultrasonido durante todo el estudio utilizando un transductor lineal de 50 mm. Se pedirá a los participantes que se acuesten boca abajo en una cama y descansen con la rodilla extendida, y que se relajen por completo durante la adquisición de imágenes. Se proporcionarán cinco minutos de descanso en esta posición para la estabilización del cambio de fluidos corporales. Para las ecografías panorámicas, se determinará y marcará la región de interés (ROI). El transductor se mantendrá en contacto con la guía durante toda la adquisición de CSA, por lo que nos aseguramos de seguir el camino correcto de CSA mientras mantenemos el transductor perpendicular a la piel. |
Preintervención (T0), Intervención media (T1) después de 3 meses, Postintervención (T2) después de 3 meses y Seguimiento (T3) después de 3 meses
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Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Colaboradores
Investigadores
- Investigador principal: Massimo Venturelli, PhD, Universita di Verona
Publicaciones y enlaces útiles
Publicaciones Generales
- Helgerud J, Hoydal K, Wang E, Karlsen T, Berg P, Bjerkaas M, Simonsen T, Helgesen C, Hjorth N, Bach R, Hoff J. Aerobic high-intensity intervals improve VO2max more than moderate training. Med Sci Sports Exerc. 2007 Apr;39(4):665-71. doi: 10.1249/mss.0b013e3180304570.
- Wisloff U, Stoylen A, Loennechen JP, Bruvold M, Rognmo O, Haram PM, Tjonna AE, Helgerud J, Slordahl SA, Lee SJ, Videm V, Bye A, Smith GL, Najjar SM, Ellingsen O, Skjaerpe T. Superior cardiovascular effect of aerobic interval training versus moderate continuous training in heart failure patients: a randomized study. Circulation. 2007 Jun 19;115(24):3086-94. doi: 10.1161/CIRCULATIONAHA.106.675041. Epub 2007 Jun 4.
- Roberts SB, Rosenberg I. Nutrition and aging: changes in the regulation of energy metabolism with aging. Physiol Rev. 2006 Apr;86(2):651-67. doi: 10.1152/physrev.00019.2005.
- Grassi D, Lippi C, Necozione S, Desideri G, Ferri C. Short-term administration of dark chocolate is followed by a significant increase in insulin sensitivity and a decrease in blood pressure in healthy persons. Am J Clin Nutr. 2005 Mar;81(3):611-4. doi: 10.1093/ajcn/81.3.611.
- Anderson RM, Weindruch R. Metabolic reprogramming, caloric restriction and aging. Trends Endocrinol Metab. 2010 Mar;21(3):134-41. doi: 10.1016/j.tem.2009.11.005. Epub 2009 Dec 7.
- Venturelli M, Ce E, Limonta E, Muti E, Scarsini R, Brasioli A, Schena F, Esposito F. Possible Predictors of Involuntary Weight Loss in Patients with Alzheimer's Disease. PLoS One. 2016 Jun 27;11(6):e0157384. doi: 10.1371/journal.pone.0157384. eCollection 2016.
- Venturelli M, Sollima A, Ce E, Limonta E, Bisconti AV, Brasioli A, Muti E, Esposito F. Effectiveness of Exercise- and Cognitive-Based Treatments on Salivary Cortisol Levels and Sundowning Syndrome Symptoms in Patients with Alzheimer's Disease. J Alzheimers Dis. 2016 Jul 14;53(4):1631-40. doi: 10.3233/JAD-160392.
- Cavedon V, Milanese C, Laginestra FG, Giuriato G, Pedrinolla A, Ruzzante F, Schena F, Venturelli M. Bone and skeletal muscle changes in oldest-old women: the role of physical inactivity. Aging Clin Exp Res. 2020 Feb;32(2):207-214. doi: 10.1007/s40520-019-01352-x. Epub 2019 Sep 18.
- Wang E, Naess MS, Hoff J, Albert TL, Pham Q, Richardson RS, Helgerud J. Exercise-training-induced changes in metabolic capacity with age: the role of central cardiovascular plasticity. Age (Dordr). 2014 Apr;36(2):665-76. doi: 10.1007/s11357-013-9596-x. Epub 2013 Nov 16.
- Storen O, Helgerud J, Saebo M, Stoa EM, Bratland-Sanda S, Unhjem RJ, Hoff J, Wang E. The Effect of Age on the V O2max Response to High-Intensity Interval Training. Med Sci Sports Exerc. 2017 Jan;49(1):78-85. doi: 10.1249/MSS.0000000000001070.
- Sumiyoshi E, Matsuzaki K, Sugimoto N, Tanabe Y, Hara T, Katakura M, Miyamoto M, Mishima S, Shido O. Sub-Chronic Consumption of Dark Chocolate Enhances Cognitive Function and Releases Nerve Growth Factors: A Parallel-Group Randomized Trial. Nutrients. 2019 Nov 16;11(11):2800. doi: 10.3390/nu11112800.
- Smith DF. Benefits of flavanol-rich cocoa-derived products for mental well-being: A review. Journal of Functional Foods. 2013; 5 (1): 10-15.
- Mao T, Van De Water J, Keen CL, Schmitz HH, Gershwin ME. Cocoa procyanidins and human cytokine transcription and secretion. J Nutr. 2000 Aug;130(8S Suppl):2093S-9S. doi: 10.1093/jn/130.8.2093S.
- Tsang C, Hodgson L, Bussu A, Farhat G, Al-Dujaili E. Effect of Polyphenol-Rich Dark Chocolate on Salivary Cortisol and Mood in Adults. Antioxidants (Basel). 2019 May 29;8(6):149. doi: 10.3390/antiox8060149.
- Isanejad M, Mursu J, Sirola J, Kroger H, Rikkonen T, Tuppurainen M, Erkkila AT. Dietary protein intake is associated with better physical function and muscle strength among elderly women. Br J Nutr. 2016 Apr 14;115(7):1281-91. doi: 10.1017/S000711451600012X. Epub 2016 Feb 9.
- Sastre J, Pallardo FV, Pla R, Pellin A, Juan G, O'Connor JE, Estrela JM, Miquel J, Vina J. Aging of the liver: age-associated mitochondrial damage in intact hepatocytes. Hepatology. 1996 Nov;24(5):1199-205. doi: 10.1002/hep.510240536.
- Miller CJ, Gounder SS, Kannan S, Goutam K, Muthusamy VR, Firpo MA, Symons JD, Paine R 3rd, Hoidal JR, Rajasekaran NS. Disruption of Nrf2/ARE signaling impairs antioxidant mechanisms and promotes cell degradation pathways in aged skeletal muscle. Biochim Biophys Acta. 2012 Jun;1822(6):1038-50. doi: 10.1016/j.bbadis.2012.02.007. Epub 2012 Feb 15.
- McArdle A, Jackson MJ. Exercise, oxidative stress and ageing. J Anat. 2000 Nov;197 Pt 4(Pt 4):539-41. doi: 10.1046/j.1469-7580.2000.19740539.x.
- Galli F, Azzi A, Birringer M, Cook-Mills JM, Eggersdorfer M, Frank J, Cruciani G, Lorkowski S, Ozer NK. Vitamin E: Emerging aspects and new directions. Free Radic Biol Med. 2017 Jan;102:16-36. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2016.09.017. Epub 2016 Nov 2.
- Wu D, Meydani SN. Age-associated changes in immune function: impact of vitamin E intervention and the underlying mechanisms. Endocr Metab Immune Disord Drug Targets. 2014;14(4):283-9. doi: 10.2174/1871530314666140922143950.
- Khor SC, Abdul Karim N, Ngah WZ, Yusof YA, Makpol S. Vitamin E in sarcopenia: current evidences on its role in prevention and treatment. Oxid Med Cell Longev. 2014;2014:914853. doi: 10.1155/2014/914853. Epub 2014 Jul 6.
- Chung E, Mo H, Wang S, Zu Y, Elfakhani M, Rios SR, Chyu MC, Yang RS, Shen CL. Potential roles of vitamin E in age-related changes in skeletal muscle health. Nutr Res. 2018 Jan;49:23-36. doi: 10.1016/j.nutres.2017.09.005. Epub 2017 Sep 21.
- Schubert M, Kluge S, Schmolz L, Wallert M, Galli F, Birringer M, Lorkowski S. Long-Chain Metabolites of Vitamin E: Metabolic Activation as a General Concept for Lipid-Soluble Vitamins? Antioxidants (Basel). 2018 Jan 12;7(1):10. doi: 10.3390/antiox7010010.
- Bartolini D, De Franco F, Torquato P, Marinelli R, Cerra B, Ronchetti R, Schon A, Fallarino F, De Luca A, Bellezza G, Ferri I, Sidoni A, Walton WG, Pellock SJ, Redinbo MR, Mani S, Pellicciari R, Gioiello A, Galli F. Garcinoic Acid Is a Natural and Selective Agonist of Pregnane X Receptor. J Med Chem. 2020 Apr 9;63(7):3701-3712. doi: 10.1021/acs.jmedchem.0c00012. Epub 2020 Mar 20.
- Wong SH, Knight JA, Hopfer SM, Zaharia O, Leach CN Jr, Sunderman FW Jr. Lipoperoxides in plasma as measured by liquid-chromatographic separation of malondialdehyde-thiobarbituric acid adduct. Clin Chem. 1987 Feb;33(2 Pt 1):214-20.
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