- ICH GCP
- Yhdysvaltain kliinisten tutkimusten rekisteri
- Kliininen tutkimus NCT04372979
Toipilasplasmaterapian tehokkuus COVID-19-potilaiden varhaisessa hoidossa. (PLASCOSSA)
Arvio COVID-19-toipuvan plasman tehosta verrattuna normaaliin plasmaan COVID-19-potilaiden varhaisessa hoidossa tehohoitoyksiköiden ulkopuolella.
COVID-19 (Corona Virus Disease 2019) sairaalapotilaiden evoluutiota leimaa hengityselinten pahenemisriski taudin toisella viikolla. Tähän mennessä hoitoja arvioidaan parhaillaan, eikä mikään niistä ole osoittautunut tehokkaaksi näiden potilaiden hoidossa. Toipilasplasman käyttö on passiivinen immunoterapia. Sitä on käytetty usein hengitystievirusepidemiatilanteissa (vuoden 1918 tai 2009 influenssapandemian aikana tai SARS-CoV-1- tai MERS-CoV-pandemian aikana). Kirjallisuudessa raportoidut vaikutukset puoltavat näiden plasman verensiirron suotuisaa vaikutusta ilman, että vakavia haittavaikutuksia on raportoitu.
PlasCoSSA on satunnaistettu, kontrolloitu, kolmoissokkoutettu, rinnakkainen kliininen tutkimus. Tämä tutkimus testaa toipuvan plasmansiirtohoidon tehokkuutta COVID-19-potilaiden varhaisessa hoidossa tehohoitoyksiköiden ulkopuolella.
Tutkimuksen yleiskatsaus
Tila
Ehdot
Interventio / Hoito
Yksityiskohtainen kuvaus
SARS-CoV-2-infektion aikana voidaan havaita kaksi kliinis-biologista vaihetta: ensimmäinen virusvaihe, jota seuraa immunologinen vaihe, jonka alkamiseen on liittynyt vakavampi ennuste. Sairaalahoidossa olevilla potilailla, joilla on samanaikaisia sairauksia tai kliinisiä riskitekijöitä, on suurempi riski hengitystoimintojen heikkenemisestä ja merkittävä riski saada tehohoitoa.
Varhainen toipilasplasman siirto (2 yksikköä 200-230 ml afereesiplasmaa, joka on inaktivoitu amotosaleenilla) estäisi tämän sekundaarisen pahenemisen ja vähentäisi riskiä siirtyä tehohoitoon, oleskelun kestoa ja kuolleisuutta. Ottaen huomioon taudin kliiniset ja biologiset ilmenemismuodot, mukaan lukien hyytymishäiriöt, endoteelimuutokset, immunologiset häiriöt, näyttää mielenkiintoiselta verrata tätä toipuvaa plasmaa SARS-CoV-2-plasmaan, josta puuttuu vasta-aineita.
Opintotyyppi
Ilmoittautuminen (Todellinen)
Vaihe
- Vaihe 3
Yhteystiedot ja paikat
Opiskelupaikat
-
-
-
Clamart, Ranska, 92140
- Hia Percy
-
Marseille, Ranska, 13013
- Hia Laveran
-
Saint-Mandé, Ranska, 94160
- Hia Begin
-
Toulon, Ranska, 83000
- HIA Sainte Anne
-
-
Osallistumiskriteerit
Kelpoisuusvaatimukset
Opintokelpoiset iät
Hyväksyy terveitä vapaaehtoisia
Sukupuolet, jotka voivat opiskella
Kuvaus
Sisällyttämiskriteerit:
- Ikä 18-90 vuotta;
- COVID-19 vahvistettu tapaus ;
Tapaukset, joissa on hengitystieoireita, tarkista vähintään yksi seuraavista kriteereistä:
- Yskä, hengenahdistus, hengitystiheys > 24 hengitystä/min
- Happisaturaatio < 95 % levossa ympäröivässä ilmassa
- PaO2 < 70 mmHg
- Skanografinen keuhko-yhteensopiva COVIDin kanssa ilman muuta etiologiaa
Heikkenemisvaara, tarkistamalla vähintään yksi seuraavista komorbiditeettikriteereistä:
- Krooninen hengityselinten patologia
- Diabetes
- Syövän patologia
- Sydän-ja verisuonitauti
- Krooninen munuaisten vajaatoiminta
- Synnynnäinen tai hankittu immuunipuutos
- Kirroosi vaiheessa B
- Suuri sirppisolusyndrooma
- BMI > 30 kg/m2
TAI yksi biologisista kriteereistä:
- D-dimeeri 1 µg/ml,
- Lymfosyytit < 0,8 G/l,
- ferritiini > 300 µg/l,
- Troponiini I > 11 pg/ml tai troponiini T > 24,8 pg/ml
Poissulkemiskriteerit:
- Potilaat, jotka on otettu tehohoitoon ensimmäisten 6 tunnin aikana sairaalahoidosta,
- Potilaat 10 päivän kuluttua oireiden alkamisesta
- Ikä < 18 vuotta ja > 90 vuotta
- Pitkäaikaiset happiriippuvaiset potilaat (kotona),
- Dekompensoitunut krooninen sydämen, hengityselinten, urologinen patologia
- Potilas kieltäytyy antamasta verituotteita,
- allerginen reaktio plasmatuotteille,
- IgA-puutos,
- Verensiirron vasta-aihe
- Ig-siirto 30 päivän kuluessa,
- Potilas, joka osallistuu parhaillaan toiseen kliiniseen tutkimukseen,
- Raskaana olevat naiset,
- Ei kuulu sosiaaliturvaan,
- Laillisella tai hallinnollisella päätöksellä vapautensa menetetty henkilö, edunvalvoja
Opintosuunnitelma
Miten tutkimus on suunniteltu?
Suunnittelun yksityiskohdat
- Ensisijainen käyttötarkoitus: Hoito
- Jako: Satunnaistettu
- Inventiomalli: Rinnakkaistehtävä
- Naamiointi: Kolminkertaistaa
Aseet ja interventiot
Osallistujaryhmä / Arm |
Interventio / Hoito |
|---|---|
|
Kokeellinen: SARS-CoV-2-potilaat, joita hoidettiin toipilasplasmalla
Koehenkilöt saavat suonensisäisen SARS-CoV-2 Convalescent Plasman injektion.
|
2 toipilasplasmayksikköä, kukin 200-230 ml, inaktivoitu amotosaleenilla.
|
|
Active Comparator: SARS-CoV-2-potilaat, joita hoidettiin tavallisella plasmalla
Koehenkilöt saavat suonensisäisen injektion standardiplasmaa.
|
2 tavallista plasmayksikköä, kukin 200-230 ml, inaktivoitu amotosaleenilla.
|
Mitä tutkimuksessa mitataan?
Ensisijaiset tulostoimenpiteet
Tulosmittaus |
Toimenpiteen kuvaus |
Aikaikkuna |
|---|---|---|
|
Selviytymisaika ilman hengityslaitteen tarvetta.
Aikaikkuna: Päivä 30
|
Eloonjäämisaika ilman hengityslaitteen tarvetta eli aika hapen saantiin (potilas aiemmin ulkoilmassa) tai O2:n lisääntymiseen yli 6 l/min yli 24 tunnin ajan tai ei-invasiivisen ventilaation tai intuboinnin käyttöön, tai kuolema.
|
Päivä 30
|
Toissijaiset tulostoimenpiteet
Tulosmittaus |
Toimenpiteen kuvaus |
Aikaikkuna |
|---|---|---|
|
Sairastavuus
Aikaikkuna: Päivä 15
|
Potilaiden prosenttiosuus i) ei sairaalahoidossa, rajoituksetta, ii) ei sairaalahoidossa, toimintarajoitteinen, iii) sairaalassa ilman happihoitoa, iv) sairaalassa happiterapialla, v) sairaalassa intensiivisellä happihoidolla tai ei-invasiivisella ventilaatiolla ( NIV), vi) sairaalahoidossa ja intuboituna tai kehonulkoisella kalvohapetuksella (ECMO), vii) Kuollut.
|
Päivä 15
|
|
Sairastavuus
Aikaikkuna: Päivä 30
|
SOFA (Sequential Organ Failure Assessment) -keskiarvopisteiden ero potilasta kohti näiden kahden ryhmän välillä.
|
Päivä 30
|
|
Kuolleisuus
Aikaikkuna: Päivä 30
|
Päivä 30
|
|
|
Oleskelun kesto
Aikaikkuna: Päivä 30
|
Päivä 30
|
|
|
Vaikutus viruksen nielun näytteen puhdistumiseen
Aikaikkuna: Mukana ja 7. päivänä
|
Kvantitatiivinen SARS-CoV2 PCR suoritettiin nielunäytteestä.
|
Mukana ja 7. päivänä
|
|
Vaikutus viruksen verinäytteen puhdistumiseen
Aikaikkuna: Mukana ja 7. päivänä
|
Kvantitatiivinen SARS-CoV2 PCR suoritettiin verinäytteestä.
|
Mukana ja 7. päivänä
|
|
Vaikutus hemostaasihäiriöihin
Aikaikkuna: Mukaanoton yhteydessä 1. päivänä ja 48 tunnin välein
|
Vaikutukset biologisiin hemostaasiparametrien häiriöihin.
|
Mukaanoton yhteydessä 1. päivänä ja 48 tunnin välein
|
|
Neutraloivien vasta-aineiden esiintymisen kinetiikka
Aikaikkuna: Mukana, päivä 7
|
Anti-SARS-Cov2-immunoglobuliini G/A-taso ja anti-SARS-Cov2-neutraloiva vasta-ainetaso.
|
Mukana, päivä 7
|
|
Transfuusioendoteliopatiavaikutus
Aikaikkuna: Mukana, päivä 1, päivä 7
|
Biologisten endoteliopatian parametrien kehitys
|
Mukana, päivä 1, päivä 7
|
|
Biologinen verensiirto Tulehdusvaikutus
Aikaikkuna: Mukana, päivä 1, päivä 7
|
Biologisten annosten arviointi tulehdusvaikutuksista
|
Mukana, päivä 1, päivä 7
|
|
Verensiirron hemovigilance
Aikaikkuna: 30 päivää
|
Verensiirron haittatapahtumien määrä
|
30 päivää
|
|
Antibioottien kulutuksen väheneminen
Aikaikkuna: 30 päivää
|
30 päivää
|
Yhteistyökumppanit ja tutkijat
Yhteistyökumppanit
Tutkijat
- Opintojohtaja: Catherine VERRET, Service de Santé des Armées-Direction de la Formation de la Recherche et de l'Innovation
- Päätutkija: Christophe MARTINAUD, Centre de Transfusion Sanguine des Armées
Julkaisuja ja hyödyllisiä linkkejä
Yleiset julkaisut
- Huang C, Wang Y, Li X, Ren L, Zhao J, Hu Y, Zhang L, Fan G, Xu J, Gu X, Cheng Z, Yu T, Xia J, Wei Y, Wu W, Xie X, Yin W, Li H, Liu M, Xiao Y, Gao H, Guo L, Xie J, Wang G, Jiang R, Gao Z, Jin Q, Wang J, Cao B. Clinical features of patients infected with 2019 novel coronavirus in Wuhan, China. Lancet. 2020 Feb 15;395(10223):497-506. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30183-5. Epub 2020 Jan 24. Erratum In: Lancet. 2020 Jan 30;:
- Wang D, Hu B, Hu C, Zhu F, Liu X, Zhang J, Wang B, Xiang H, Cheng Z, Xiong Y, Zhao Y, Li Y, Wang X, Peng Z. Clinical Characteristics of 138 Hospitalized Patients With 2019 Novel Coronavirus-Infected Pneumonia in Wuhan, China. JAMA. 2020 Mar 17;323(11):1061-1069. doi: 10.1001/jama.2020.1585. Erratum In: JAMA. 2021 Mar 16;325(11):1113.
- Zhou F, Yu T, Du R, Fan G, Liu Y, Liu Z, Xiang J, Wang Y, Song B, Gu X, Guan L, Wei Y, Li H, Wu X, Xu J, Tu S, Zhang Y, Chen H, Cao B. Clinical course and risk factors for mortality of adult inpatients with COVID-19 in Wuhan, China: a retrospective cohort study. Lancet. 2020 Mar 28;395(10229):1054-1062. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30566-3. Epub 2020 Mar 11. Erratum In: Lancet. 2020 Mar 28;395(10229):1038. Lancet. 2020 Mar 28;395(10229):1038.
- Shen C, Wang Z, Zhao F, Yang Y, Li J, Yuan J, Wang F, Li D, Yang M, Xing L, Wei J, Xiao H, Yang Y, Qu J, Qing L, Chen L, Xu Z, Peng L, Li Y, Zheng H, Chen F, Huang K, Jiang Y, Liu D, Zhang Z, Liu Y, Liu L. Treatment of 5 Critically Ill Patients With COVID-19 With Convalescent Plasma. JAMA. 2020 Apr 28;323(16):1582-1589. doi: 10.1001/jama.2020.4783.
- Ahn DG, Shin HJ, Kim MH, Lee S, Kim HS, Myoung J, Kim BT, Kim SJ. Current Status of Epidemiology, Diagnosis, Therapeutics, and Vaccines for Novel Coronavirus Disease 2019 (COVID-19). J Microbiol Biotechnol. 2020 Mar 28;30(3):313-324. doi: 10.4014/jmb.2003.03011.
- Zhang B, Liu S, Tan T, Huang W, Dong Y, Chen L, Chen Q, Zhang L, Zhong Q, Zhang X, Zou Y, Zhang S. Treatment With Convalescent Plasma for Critically Ill Patients With Severe Acute Respiratory Syndrome Coronavirus 2 Infection. Chest. 2020 Jul;158(1):e9-e13. doi: 10.1016/j.chest.2020.03.039. Epub 2020 Mar 31.
- Walls AC, Park YJ, Tortorici MA, Wall A, McGuire AT, Veesler D. Structure, Function, and Antigenicity of the SARS-CoV-2 Spike Glycoprotein. Cell. 2020 Apr 16;181(2):281-292.e6. doi: 10.1016/j.cell.2020.02.058. Epub 2020 Mar 9. Erratum In: Cell. 2020 Dec 10;183(6):1735.
- Zhang JS, Chen JT, Liu YX, Zhang ZS, Gao H, Liu Y, Wang X, Ning Y, Liu YF, Gao Q, Xu JG, Qin C, Dong XP, Yin WD. A serological survey on neutralizing antibody titer of SARS convalescent sera. J Med Virol. 2005 Oct;77(2):147-50. doi: 10.1002/jmv.20431.
- Subbarao K, McAuliffe J, Vogel L, Fahle G, Fischer S, Tatti K, Packard M, Shieh WJ, Zaki S, Murphy B. Prior infection and passive transfer of neutralizing antibody prevent replication of severe acute respiratory syndrome coronavirus in the respiratory tract of mice. J Virol. 2004 Apr;78(7):3572-7. doi: 10.1128/jvi.78.7.3572-3577.2004.
- Ko JH, Seok H, Cho SY, Ha YE, Baek JY, Kim SH, Kim YJ, Park JK, Chung CR, Kang ES, Cho D, Muller MA, Drosten C, Kang CI, Chung DR, Song JH, Peck KR. Challenges of convalescent plasma infusion therapy in Middle East respiratory coronavirus infection: a single centre experience. Antivir Ther. 2018;23(7):617-622. doi: 10.3851/IMP3243. Epub 2018 Jun 20.
- Guo L, Ren L, Yang S, Xiao M, Chang D, Yang F, Dela Cruz CS, Wang Y, Wu C, Xiao Y, Zhang L, Han L, Dang S, Xu Y, Yang QW, Xu SY, Zhu HD, Xu YC, Jin Q, Sharma L, Wang L, Wang J. Profiling Early Humoral Response to Diagnose Novel Coronavirus Disease (COVID-19). Clin Infect Dis. 2020 Jul 28;71(15):778-785. doi: 10.1093/cid/ciaa310.
- Thevarajan I, Nguyen THO, Koutsakos M, Druce J, Caly L, van de Sandt CE, Jia X, Nicholson S, Catton M, Cowie B, Tong SYC, Lewin SR, Kedzierska K. Breadth of concomitant immune responses prior to patient recovery: a case report of non-severe COVID-19. Nat Med. 2020 Apr;26(4):453-455. doi: 10.1038/s41591-020-0819-2. No abstract available.
- Bouadma L, Lescure FX, Lucet JC, Yazdanpanah Y, Timsit JF. Severe SARS-CoV-2 infections: practical considerations and management strategy for intensivists. Intensive Care Med. 2020 Apr;46(4):579-582. doi: 10.1007/s00134-020-05967-x. Epub 2020 Feb 26. No abstract available.
- To KK, Tsang OT, Leung WS, Tam AR, Wu TC, Lung DC, Yip CC, Cai JP, Chan JM, Chik TS, Lau DP, Choi CY, Chen LL, Chan WM, Chan KH, Ip JD, Ng AC, Poon RW, Luo CT, Cheng VC, Chan JF, Hung IF, Chen Z, Chen H, Yuen KY. Temporal profiles of viral load in posterior oropharyngeal saliva samples and serum antibody responses during infection by SARS-CoV-2: an observational cohort study. Lancet Infect Dis. 2020 May;20(5):565-574. doi: 10.1016/S1473-3099(20)30196-1. Epub 2020 Mar 23.
- Liu L, Wei Q, Lin Q, Fang J, Wang H, Kwok H, Tang H, Nishiura K, Peng J, Tan Z, Wu T, Cheung KW, Chan KH, Alvarez X, Qin C, Lackner A, Perlman S, Yuen KY, Chen Z. Anti-spike IgG causes severe acute lung injury by skewing macrophage responses during acute SARS-CoV infection. JCI Insight. 2019 Feb 21;4(4):e123158. doi: 10.1172/jci.insight.123158. eCollection 2019 Feb 21.
- Tirado SM, Yoon KJ. Antibody-dependent enhancement of virus infection and disease. Viral Immunol. 2003;16(1):69-86. doi: 10.1089/088282403763635465.
- Chaichana P, Okabayashi T, Puiprom O, Sasayama M, Sasaki T, Yamashita A, Ramasoota P, Kurosu T, Ikuta K. Low levels of antibody-dependent enhancement in vitro using viruses and plasma from dengue patients. PLoS One. 2014 Mar 18;9(3):e92173. doi: 10.1371/journal.pone.0092173. eCollection 2014.
- Houser KV, Broadbent AJ, Gretebeck L, Vogel L, Lamirande EW, Sutton T, Bock KW, Minai M, Orandle M, Moore IN, Subbarao K. Enhanced inflammation in New Zealand white rabbits when MERS-CoV reinfection occurs in the absence of neutralizing antibody. PLoS Pathog. 2017 Aug 17;13(8):e1006565. doi: 10.1371/journal.ppat.1006565. eCollection 2017 Aug.
- van Griensven J, Edwards T, de Lamballerie X, Semple MG, Gallian P, Baize S, Horby PW, Raoul H, Magassouba N, Antierens A, Lomas C, Faye O, Sall AA, Fransen K, Buyze J, Ravinetto R, Tiberghien P, Claeys Y, De Crop M, Lynen L, Bah EI, Smith PG, Delamou A, De Weggheleire A, Haba N; Ebola-Tx Consortium. Evaluation of Convalescent Plasma for Ebola Virus Disease in Guinea. N Engl J Med. 2016 Jan 7;374(1):33-42. doi: 10.1056/NEJMoa1511812.
- Dufour-Gaume F, Delaune D, Martinaud C, Sailliol A. Early and repeated use of plasma for the management of Ebola patients: Reflection around a case. Transfus Clin Biol. 2017 Feb;24(1):5-8. doi: 10.1016/j.tracli.2016.08.005. Epub 2016 Sep 14.
- Tirumalai RS, Chan KC, Prieto DA, Issaq HJ, Conrads TP, Veenstra TD. Characterization of the low molecular weight human serum proteome. Mol Cell Proteomics. 2003 Oct;2(10):1096-103. doi: 10.1074/mcp.M300031-MCP200. Epub 2003 Aug 13.
- Tang N, Li D, Wang X, Sun Z. Abnormal coagulation parameters are associated with poor prognosis in patients with novel coronavirus pneumonia. J Thromb Haemost. 2020 Apr;18(4):844-847. doi: 10.1111/jth.14768. Epub 2020 Mar 13.
- Lippi G, Plebani M. Laboratory abnormalities in patients with COVID-2019 infection. Clin Chem Lab Med. 2020 Jun 25;58(7):1131-1134. doi: 10.1515/cclm-2020-0198. No abstract available.
- Sperry JL, Guyette FX, Brown JB, Yazer MH, Triulzi DJ, Early-Young BJ, Adams PW, Daley BJ, Miller RS, Harbrecht BG, Claridge JA, Phelan HA, Witham WR, Putnam AT, Duane TM, Alarcon LH, Callaway CW, Zuckerbraun BS, Neal MD, Rosengart MR, Forsythe RM, Billiar TR, Yealy DM, Peitzman AB, Zenati MS; PAMPer Study Group. Prehospital Plasma during Air Medical Transport in Trauma Patients at Risk for Hemorrhagic Shock. N Engl J Med. 2018 Jul 26;379(4):315-326. doi: 10.1056/NEJMoa1802345.
- Chen L, Li X, Chen M, Feng Y, Xiong C. The ACE2 expression in human heart indicates new potential mechanism of heart injury among patients infected with SARS-CoV-2. Cardiovasc Res. 2020 May 1;116(6):1097-1100. doi: 10.1093/cvr/cvaa078. Erratum In: Cardiovasc Res. 2020 Oct 1;116(12):1994.
- Recalcati S. Cutaneous manifestations in COVID-19: a first perspective. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2020 May;34(5):e212-e213. doi: 10.1111/jdv.16387. No abstract available.
- Wu F, Peng Z, Park PW, Kozar RA. Loss of Syndecan-1 Abrogates the Pulmonary Protective Phenotype Induced by Plasma After Hemorrhagic Shock. Shock. 2017 Sep;48(3):340-345. doi: 10.1097/SHK.0000000000000832.
- Whitney JE, Zhang B, Koterba N, Chen F, Bush J, Graham K, Lacey SF, Melenhorst JJ, Teachey DT, Mensinger JL, Yehya N, Weiss SL. Systemic Endothelial Activation Is Associated With Early Acute Respiratory Distress Syndrome in Children With Extrapulmonary Sepsis. Crit Care Med. 2020 Mar;48(3):344-352. doi: 10.1097/CCM.0000000000004091.
- Garraud O, Heshmati F, Pozzetto B, Lefrere F, Girot R, Saillol A, Laperche S. Plasma therapy against infectious pathogens, as of yesterday, today and tomorrow. Transfus Clin Biol. 2016 Feb;23(1):39-44. doi: 10.1016/j.tracli.2015.12.003. Epub 2016 Jan 6.
- Dinsdale RJ, Hazeldine J, Al Tarrah K, Hampson P, Devi A, Ermogenous C, Bamford AL, Bishop J, Watts S, Kirkman E, Dalle Lucca JJ, Midwinter M, Woolley T, Foster M, Lord JM, Moiemen N, Harrison P. Dysregulation of the actin scavenging system and inhibition of DNase activity following severe thermal injury. Br J Surg. 2020 Mar;107(4):391-401. doi: 10.1002/bjs.11310. Epub 2019 Sep 10.
- Squizzato A, Hunt BJ, Kinasewitz GT, Wada H, Ten Cate H, Thachil J, Levi M, Vicente V, D'Angelo A, Di Nisio M. Supportive management strategies for disseminated intravascular coagulation. An international consensus. Thromb Haemost. 2016 May 2;115(5):896-904. doi: 10.1160/TH15-09-0740. Epub 2015 Dec 17.
- Di Nisio M, Thachil J, Squizzato A. Management of disseminated intravascular coagulation: a survey of the International Society on Thrombosis and Haemostasis. Thromb Res. 2015 Aug;136(2):239-42. doi: 10.1016/j.thromres.2015.05.022. Epub 2015 May 23.
- Garraud O, Malot S, Herbrecht R, Ojeda-Uribe M, Lin JS, Veyradier A, Payrat JM, Liu K, Corash L, Coppo P. Amotosalen-inactivated fresh frozen plasma is comparable to solvent-detergent inactivated plasma to treat thrombotic thrombocytopenic purpura. Transfus Apher Sci. 2019 Dec;58(6):102665. doi: 10.1016/j.transci.2019.10.007. Epub 2019 Nov 5.
- van Griensven J, De Weiggheleire A, Delamou A, Smith PG, Edwards T, Vandekerckhove P, Bah EI, Colebunders R, Herve I, Lazaygues C, Haba N, Lynen L. The Use of Ebola Convalescent Plasma to Treat Ebola Virus Disease in Resource-Constrained Settings: A Perspective From the Field. Clin Infect Dis. 2016 Jan 1;62(1):69-74. doi: 10.1093/cid/civ680. Epub 2015 Aug 10.
- Brown JF, Dye JM, Tozay S, Jeh-Mulbah G, Wohl DA, Fischer WA 2nd, Cunningham CK, Rowe K, Zacharias P, van Hasselt J, Norwood DA, Thielman NM, Zak SE, Hoover DL. Anti-Ebola Virus Antibody Levels in Convalescent Plasma and Viral Load After Plasma Infusion in Patients With Ebola Virus Disease. J Infect Dis. 2018 Jul 13;218(4):555-562. doi: 10.1093/infdis/jiy199.
- Di Minno G, Navarro D, Perno CF, Canaro M, Gurtler L, Ironside JW, Eichler H, Tiede A. Pathogen reduction/inactivation of products for the treatment of bleeding disorders: what are the processes and what should we say to patients? Ann Hematol. 2017 Aug;96(8):1253-1270. doi: 10.1007/s00277-017-3028-4. Epub 2017 Jun 18.
- Ahn JY, Sohn Y, Lee SH, Cho Y, Hyun JH, Baek YJ, Jeong SJ, Kim JH, Ku NS, Yeom JS, Roh J, Ahn MY, Chin BS, Kim YS, Lee H, Yong D, Kim HO, Kim S, Choi JY. Use of Convalescent Plasma Therapy in Two COVID-19 Patients with Acute Respiratory Distress Syndrome in Korea. J Korean Med Sci. 2020 Apr 13;35(14):e149. doi: 10.3346/jkms.2020.35.e149.
- Duan K, Liu B, Li C, Zhang H, Yu T, Qu J, Zhou M, Chen L, Meng S, Hu Y, Peng C, Yuan M, Huang J, Wang Z, Yu J, Gao X, Wang D, Yu X, Li L, Zhang J, Wu X, Li B, Xu Y, Chen W, Peng Y, Hu Y, Lin L, Liu X, Huang S, Zhou Z, Zhang L, Wang Y, Zhang Z, Deng K, Xia Z, Gong Q, Zhang W, Zheng X, Liu Y, Yang H, Zhou D, Yu D, Hou J, Shi Z, Chen S, Chen Z, Zhang X, Yang X. Effectiveness of convalescent plasma therapy in severe COVID-19 patients. Proc Natl Acad Sci U S A. 2020 Apr 28;117(17):9490-9496. doi: 10.1073/pnas.2004168117. Epub 2020 Apr 6.
- Hung IF, To KK, Lee CK, Lee KL, Chan K, Yan WW, Liu R, Watt CL, Chan WM, Lai KY, Koo CK, Buckley T, Chow FL, Wong KK, Chan HS, Ching CK, Tang BS, Lau CC, Li IW, Liu SH, Chan KH, Lin CK, Yuen KY. Convalescent plasma treatment reduced mortality in patients with severe pandemic influenza A (H1N1) 2009 virus infection. Clin Infect Dis. 2011 Feb 15;52(4):447-56. doi: 10.1093/cid/ciq106. Epub 2011 Jan 19.
- Cheng Y, Wong R, Soo YO, Wong WS, Lee CK, Ng MH, Chan P, Wong KC, Leung CB, Cheng G. Use of convalescent plasma therapy in SARS patients in Hong Kong. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2005 Jan;24(1):44-6. doi: 10.1007/s10096-004-1271-9.
- Soo YO, Cheng Y, Wong R, Hui DS, Lee CK, Tsang KK, Ng MH, Chan P, Cheng G, Sung JJ. Retrospective comparison of convalescent plasma with continuing high-dose methylprednisolone treatment in SARS patients. Clin Microbiol Infect. 2004 Jul;10(7):676-8. doi: 10.1111/j.1469-0691.2004.00956.x.
- Mair-Jenkins J, Saavedra-Campos M, Baillie JK, Cleary P, Khaw FM, Lim WS, Makki S, Rooney KD, Nguyen-Van-Tam JS, Beck CR; Convalescent Plasma Study Group. The effectiveness of convalescent plasma and hyperimmune immunoglobulin for the treatment of severe acute respiratory infections of viral etiology: a systematic review and exploratory meta-analysis. J Infect Dis. 2015 Jan 1;211(1):80-90. doi: 10.1093/infdis/jiu396. Epub 2014 Jul 16.
- Shi Y, Wang Y, Shao C, Huang J, Gan J, Huang X, Bucci E, Piacentini M, Ippolito G, Melino G. COVID-19 infection: the perspectives on immune responses. Cell Death Differ. 2020 May;27(5):1451-1454. doi: 10.1038/s41418-020-0530-3. Epub 2020 Mar 23. No abstract available.
- Chang L, Yan Y, Wang L. Coronavirus Disease 2019: Coronaviruses and Blood Safety. Transfus Med Rev. 2020 Apr;34(2):75-80. doi: 10.1016/j.tmrv.2020.02.003. Epub 2020 Feb 21.
- Hashem AM, Hassan AM, Tolah AM, Alsaadi MA, Abunada Q, Damanhouri GA, El-Kafrawy SA, Picard-Maureau M, Azhar EI, Hindawi SI. Amotosalen and ultraviolet A light efficiently inactivate MERS-coronavirus in human platelet concentrates. Transfus Med. 2019 Dec;29(6):434-441. doi: 10.1111/tme.12638. Epub 2019 Nov 6.
- Lin L, Hanson CV, Alter HJ, Jauvin V, Bernard KA, Murthy KK, Metzel P, Corash L. Inactivation of viruses in platelet concentrates by photochemical treatment with amotosalen and long-wavelength ultraviolet light. Transfusion. 2005 Apr;45(4):580-90. doi: 10.1111/j.0041-1132.2005.04316.x.
- Chang L, Zhao L, Gong H, Wang L, Wang L. Severe Acute Respiratory Syndrome Coronavirus 2 RNA Detected in Blood Donations. Emerg Infect Dis. 2020 Jul;26(7):1631-1633. doi: 10.3201/eid2607.200839. Epub 2020 Jun 21.
Hyödyllisiä linkkejä
- Anticoagulant treatment for the prevention of thrombotic risk in a patient hospitalized with COVID-19 and monitoring of hemostasis.
- Efficacy and Safety Human Coronavirus Immune Plasma (HCIP) vs. Control (SARS-CoV-2 Non-immune Plasma) Among Adults Exposed to COVID-19 - Full Text View - ClinicalTrials.gov
- Transfusion of therapeutic plasma: products, indications (Haute Autorité de Santé, France)
- Coronavirus SARS-CoV-2 management of people at risk of severe forms (Haut Conseil de la Santé Publique; 2020)
Opintojen ennätyspäivät
Opi tärkeimmät päivämäärät
Opiskelun aloitus (Todellinen)
Ensisijainen valmistuminen (Todellinen)
Opintojen valmistuminen (Todellinen)
Opintoihin ilmoittautumispäivät
Ensimmäinen lähetetty
Ensimmäinen toimitettu, joka täytti QC-kriteerit
Ensimmäinen Lähetetty (Todellinen)
Tutkimustietojen päivitykset
Viimeisin päivitys julkaistu (Todellinen)
Viimeisin lähetetty päivitys, joka täytti QC-kriteerit
Viimeksi vahvistettu
Lisää tietoa
Tähän tutkimukseen liittyvät termit
Avainsanat
Muita asiaankuuluvia MeSH-ehtoja
Muut tutkimustunnusnumerot
- 2020-A01166-33
Yksittäisten osallistujien tietojen suunnitelma (IPD)
Aiotko jakaa yksittäisten osallistujien tietoja (IPD)?
Lääke- ja laitetiedot, tutkimusasiakirjat
Tutkii yhdysvaltalaista FDA sääntelemää lääkevalmistetta
Tutkii yhdysvaltalaista FDA sääntelemää laitetuotetta
Yhdysvalloissa valmistettu ja sieltä viety tuote
Nämä tiedot haettiin suoraan verkkosivustolta clinicaltrials.gov ilman muutoksia. Jos sinulla on pyyntöjä muuttaa, poistaa tai päivittää tutkimustietojasi, ota yhteyttä register@clinicaltrials.gov. Heti kun muutos on otettu käyttöön osoitteessa clinicaltrials.gov, se päivitetään automaattisesti myös verkkosivustollemme .