- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT03026972
Une étude de phase Ⅰ du vaccin recombinant Mycobacterium Tuberculosis lyophilisé (AEC/BC02)
Une étude de phase Ⅰ de la recherche sur la tolérance du corps humain du vaccin recombinant Mycobacterium Tuberculosis lyophilisé
Il existe quatre populations dans la recherche clinique de phase I sur le vaccin recombinant Mycobacterium tuberculosis lyophilisé (AEC/BC02). L'étude clinique adopte une conception de recherche ouverte.
La population I a 25 sujets qui ont reçu un test cutané de dérivé de protéine purifiée à la tuberculine (TB-PPD) et une détection spécifique de l'interféron gamma (γ-IFN) dont les résultats sont tous deux négatifs ; la population II a 30 sujets qui ont reçu un dérivé de protéine purifiée à la tuberculine (TB-PPD) ) et test cutané ESAT6-CFP10 dans différents bras, détection spécifique de l'interféron gamma (γ-IFN) dont les résultats sont tous négatifs. Nous appelons la population III comme population positive TB PPD non infectée. Ce groupe a dépisté 30 sujets dont le test cutané ESAT6-CFP10 et les résultats de détection spécifiques de l'interféron gamma (γ-IFN) sont tous deux négatifs, mais le test cutané du dérivé de protéine purifiée à la tuberculine (TB-PPD) est positif.50 les sujets dont les trois types de résultats de détection sont tous positifs γ-IFN,TB-PPD et ESAT6-CFP10) sont nommés comme population IV.
Après filtrage, injection de population je commence en premier.Après s'être assuré de la sécurité de la population I, la population II~polulation IV effectue à son tour la mise en œuvre en même temps.
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Description détaillée
Considérez la sécurité de l'inoculation, l'essai est mené dans l'ordre suivant :
La population I commence d'abord, la population II ~ la population IV est démarrée lorsque la population I a terminé l'ensemble de la sécurité immunitaire et d'observation. La population II et la population III doivent procéder simultanément, et ces deux types de population finissent d'injecter les premières doses du groupe placebo après 4 semaines, début de la population IV.
Tous les participants du groupe placebo et du groupe adjuvant effectuent la première injection intramusculaire à l'aiguille.5 les sujets du groupe vaccin à faible dose sont injectés après s'être assurés de la sécurité des groupes placebo et adjuvant après 3 jours. Lorsque ces sujets vaccinés à faible dose sont sûrs de l'innocuité en 2h, les 5 autres sujets sont injectés. Chaque participant immunise un type de placebo, d'adjuvant ou de vaccination toutes les deux semaines, au total six points de suture. Dans la recherche, chaque sujet ne reçoit qu'une seule dose de médicament et ne peut pas être soumis à des expériences sur l'escalade de dose.
La population Ⅰ sujets reçoit 6 injections de placebo ou d'adjuvant à faible dose ou de vaccin à faible dose par injection intramusculaire profonde dans le cuissot pour fournir une base de sécurité. Les sujets doivent accepter certains examens physiques au cours de la recherche clinique. Signes vitaux (respiration, pouls, tension artérielle, température corporelle) de chaque volontaire avant chaque injection à l'aiguille et 30min ; et réaction locale de chaque volontaire 30 minutes après l'injection ; sang de routine, urine de routine, fonction hépatique et rénale, et ECG avant la première dose, la troisième dose, la quatrième dose et la sixième dose, 7 jours après la sixième injection à l'aiguille ; L'HCG femelle est testée avant chaque injection à l'aiguille et 7 jours après la sixième dose injectée ; détection par radiographie pulmonaire avant la première injection et 7 jours après la sixième injection à l'aiguille. Tous les sujets doivent évaluer les modifications des indices immunologiques avant la première injection, la quatrième fois avant l'injection et 7 jours après la sixième injection à l'aiguille. Les ordres d'injection spécifiques sont les suivants :
①Tous les sujets du groupe placebo (5 cas) et du groupe adjuvant à faible dose (10 cas) seront injectés le même jour, les sujets du groupe adjuvant doivent être injectés après que tout le groupe placebo ait terminé et observé deux heures de sécurité ;
② Tous les sujets du vaccin à faible dose (10 cas) seront injectés le troisième jour si l'innocuité des sujets du groupe placebo et du groupe adjuvant est observée.
③L'étude clinique de la population Ⅱ et de la population Ⅲ sera réalisée 3 jours plus tard si les sujets du groupe vacciné à faible dose de la population Ⅰ sont observés en matière de sécurité ; Chaque sujet inocule une dose de médicament toutes les deux semaines, soit un total de six agents. En conclusion, le résultat de l'étude clinique de phase I de la population I évalue l'innocuité de différentes doses de vaccin recombinant Mycobacterium tuberculosis lyophilisé (AEC/BCO2) dans différentes populations, mais fournit également une base sûre pour l'étude clinique de phase I.
La populationⅠsujets reçoit la première injection à l'aiguille et observe l'innocuité au bout de 3 jours, puis mène des recherches cliniques sur la population Ⅱ et Ⅲ en phase I clinique. La population d'étude Ⅱ/Ⅲ sera injectée dans un placebo ou un adjuvant ou une vaccination et recueillera tous les événements indésirables et les événements indésirables graves pour évaluer son innocuité pendant la période de recherche clinique. Lorsque les deux types de population ci-dessus reçoivent les premières doses de placebo après 4 semaines, le groupe à faible dose de la population IV continue. Le groupe à forte dose de la population IV mène l'essai après que le groupe à faible dose a injecté la première dose de placebo plus tard 1 semaine.
Les 30 sujets de la population d'étude Ⅱ et 30 sujets de la population III qui répondent aux critères d'inclusion et ne sont pas conformes à la norme d'exclusion sont divisés en groupe placebo, groupe adjuvant à forte dose et groupe vaccin à forte dose, chaque groupe compte 10 participants. 50 sujets de la population IV sont divisés en groupe à faible dose et groupe à forte dose, chaque groupe de 25 sujets. Le groupe à faible dose se compose de 5 sujets placebo, 10 sujets adjuvants et 10 sujets vaccinés. Le groupe à forte dose est le même en tant que groupe à faible dose. Chaque sujet doit accepter un examen physique pendant la recherche clinique, et tous les éléments de l'examen physique sont les mêmes que ceux de la population I. Les ordres d'injection spécifiques sont les suivants :
①La population II et la population III doivent procéder simultanément, et ces deux types de population finissent d'injecter les premières doses du groupe placebo après 4 semaines, la population IV commence ;
②Le groupe à forte dose de la population IV mène un essai après que le groupe à faible dose a injecté la première dose de placebo plus tard 1 semaine ;
③Chaque pupolation reçoit d'abord un placebo et un adjuvant; 5 sujets du groupe de vaccin à faible dose sont injectés après s'être assurés de la sécurité des groupes placebo et adjuvant après 3 jours. Lorsque ces sujets vaccinés à faible dose sont sûrs de l'innocuité en 2h, les 5 autres sujets sont injectés.
Tous les sujets sont vaccinés une fois toutes les deux semaines, soit un total de six vaccinations.
Type d'étude
Inscription (Réel)
Phase
- La phase 1
Contacts et emplacements
Lieux d'étude
-
-
Shanghai
-
Shanghai, Shanghai, Chine
- Shanghai Public Health Clinical Center
-
-
Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
Accepte les volontaires sains
Sexes éligibles pour l'étude
La description
Critère d'intégration:
- Accepté de participer au test et de signer le consentement éclairé ;
- Les sujets doivent se conformer aux exigences du protocole d'essai clinique et être suivis ;
- Forme âgée de 18 à 45 ans. L'indice de masse corporelle doit être compris entre 18 et 30. Indice de masse corporelle IMC : poids (Kg)/ [taille (m)*taille (m)] ;
- État physique : la température corporelle, la pression artérielle, la fréquence cardiaque et l'état respiratoire sont des anomalies mineures normales, mais aucun symptôme ou signe anormal ;
- Les tests de laboratoire, y compris les fonctions sanguines, urinaires, hépatiques et rénales, sont des anomalies mineures normales, mais aucun symptôme ou signe anormal ;
- L'ECG, la radiographie thoracique aux rayons X sont des anomalies mineures normales, mais aucun symptôme ou signe anormal ;
- Les sujets n'ont aucun antécédent de tuberculose;
- Les sujets n'ont pas de maladie aiguë ou chronique, de maladies infectieuses aiguës, de dermatoses ou d'allergies cutanées causées par diverses raisons ;
- Le sujet n'a pas participé à d'autres essais cliniques de médicaments ou inoculé contre d'autres globulines prophylactiques et immunitaires au cours des près de 3 mois.
Critère d'exclusion:
- Souffrant d'une autre maladie grave, par ex. tumeur, maladie auto-immune, athérosclérose évolutive, diabète accompagné de complications, maladie pulmonaire obstructive chronique (MPOC) nécessitant une oxygénothérapie, maladie hépatique ou rénale aiguë ou évolutive, insuffisance cardiaque congestive, etc.
- Les sujets avaient des antécédents de TB ;
- Les sujets présentent un dysfonctionnement immunitaire ou sont anormaux, par ex. les patients reçoivent des agents immunosuppresseurs ou des agents immunosuppresseurs, reçoivent des préparations d'immunoglobulines en dehors des produits gastro-intestinaux ou sanguins dans les 3 mois, du plasma extrait ou sont infectés par le virus de l'immunodéficience ou une maladie apparentée ;
- Handicapé mental ou physique et ayant des antécédents familiaux de convulsions, d'épilepsie, d'encéphalopathie ou de maladie mentale.
- Les sujets ont participé à d'autres essais cliniques au cours des près de 3 mois ou ont vacciné un prophylactique ;
- Constitution allergique, par ex. les patients ont des antécédents allergiques à au moins deux types de médicaments ou d'aliments ou de composants de médicaments ;
- Toxicomanie, toxicomanie ou alcoolisme ;
- Femme enceinte ou allaitante ;
- les gens ont un plan de naissance pendant l'étude ou dans six lunes après une immunité totale ;
- Tout autre cas susceptible d'influencer l'évaluation du test.
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Objectif principal: La prévention
- Répartition: Non randomisé
- Modèle interventionnel: Affectation parallèle
- Masquage: Aucun (étiquette ouverte)
Armes et Interventions
Groupe de participants / Bras |
Intervention / Traitement |
|---|---|
|
Expérimental: Population I
La population I compte 25 sujets, et elle est considérée comme un test cutané au dérivé de protéine purifiée à la tuberculine (TB-PPD) et un résultat de détection spécifique de l'interféron gamma (γ-IFN), tous négatifs.Population
Je suis une injection dans le muscle coxal d'un placebo ou d'un adjuvant à faible dose ou d'un vaccin à faible dose.
|
Le médicament placebo contient 20 mg de mannitol et 10 millimoles (mM) de tampon phosphate (PB).
I~population IV sont l'injection de placebo dans le muscle coxal.
La population I et la population IV sont des injections dans le muscle coxal d'adjuvant à faible dose.
La population I et la population IV sont des injections musculaires coxales de vaccin à faible dose.
|
|
Expérimental: PopulationII
La population II est considérée comme un test cutané dérivé de la protéine purifiée à la tuberculine (TB-PPD), un test cutané ESAT6-CFP10 et un résultat de détection spécifique de l'interféron gamma (γ-IFN) tous négatifs. Elle compte 30 sujets. La population II est une injection de placebo dans le muscle coxal ou un adjuvant à forte dose ou un vaccin à forte dose.
|
Le médicament placebo contient 20 mg de mannitol et 10 millimoles (mM) de tampon phosphate (PB).
I~population IV sont l'injection de placebo dans le muscle coxal.
La population II, la population III et la population IV sont des injections musculaires coxales d'adjuvant à haute dose.
La population II, la population III et la population IV sont des injections dans le muscle coxal d'un vaccin à forte dose.
|
|
Expérimental: Population 3
La population III est considérée comme un test cutané ESAT6-CFP10 et un résultat de détection de l'interféron gamma spécifique (γ-IFN) négatif, mais le test cutané du dérivé de la protéine purifiée à la tuberculine (TB-PPD) est positif. La population IV nécessite 30 sujets. Ces sujets sont des muscles coxaux. injection d'un placebo ou d'un adjuvant à forte dose ou d'un vaccin à forte dose.
|
Le médicament placebo contient 20 mg de mannitol et 10 millimoles (mM) de tampon phosphate (PB).
I~population IV sont l'injection de placebo dans le muscle coxal.
La population II, la population III et la population IV sont des injections musculaires coxales d'adjuvant à haute dose.
La population II, la population III et la population IV sont des injections dans le muscle coxal d'un vaccin à forte dose.
|
|
Expérimental: Population IV
La population IV est considérée comme un test cutané dérivé de la protéine purifiée à la tuberculine (TB-PPD) et un test cutané ESAT6-CFP10 et un résultat de détection spécifique de l'interféron gamma (γ-IFN) tous positifs. Nous sommes appelés population d'infection latente et devons dépister 50 sujets par ces trois méthodes de sélection. La population III est l'injection dans le muscle coxal d'un placebo ou d'un adjuvant (y compris un adjuvant à faible dose ou un adjuvant à forte dose) ou d'un vaccin (y compris un vaccin à faible dose et un vaccin à forte dose).
|
Le médicament placebo contient 20 mg de mannitol et 10 millimoles (mM) de tampon phosphate (PB).
I~population IV sont l'injection de placebo dans le muscle coxal.
La population I et la population IV sont des injections dans le muscle coxal d'adjuvant à faible dose.
La population I et la population IV sont des injections musculaires coxales de vaccin à faible dose.
La population II, la population III et la population IV sont des injections musculaires coxales d'adjuvant à haute dose.
La population II, la population III et la population IV sont des injections dans le muscle coxal d'un vaccin à forte dose.
|
Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
|
Le nombre de participants avec des événements indésirables après l'injection du muscle coxal
Délai: Jusqu'à une semaine après la sixième injection
|
Les événements indésirables observés principalement à partir d'examens de laboratoire (y compris les signes vitaux/le sang de routine/l'urine de routine/la fonction hépatique et rénale/la détection d'électrocardiographie et de radiographie pulmonaire), la réactivité cutanée et la réaction locale après l'injection de drogue. Signes vitaux (respiration, pouls, tension artérielle , température corporelle) de chaque volontaire avant chaque injection de dose et 30 minutes après l'injection. Sang de routine, urine de routine, fonction hépatique et rénale et ECG avant la première dose, la troisième dose, la sixième dose et 7 jours après la sixième injection; peau réactivité et réaction locale du volontaire rach 30min avant et après chaque injection.
|
Jusqu'à une semaine après la sixième injection
|
Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
|
Marqueurs de laboratoire de l'immunité
Délai: Jusqu'à une semaine après la sixième injection
|
Évaluation de l'IFN-γ et du niveau d'anticorps avant et après la coloration des cytokines intracellulaires immunitaires dans le sang.
|
Jusqu'à une semaine après la sixième injection
|
Collaborateurs et enquêteurs
Collaborateurs
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Shuihua Lu, Shanghai Public Health Clinical Center
Publications et liens utiles
Publications générales
- Pulendran B, Ahmed R. Immunological mechanisms of vaccination. Nat Immunol. 2011 Jun;12(6):509-17. doi: 10.1038/ni.2039.
- Mostowy S, Onipede A, Gagneux S, Niemann S, Kremer K, Desmond EP, Kato-Maeda M, Behr M. Genomic analysis distinguishes Mycobacterium africanum. J Clin Microbiol. 2004 Aug;42(8):3594-9. doi: 10.1128/JCM.42.8.3594-3599.2004.
- Chen L, Xu M, Wang ZY, Chen BW, Du WX, Su C, Shen XB, Zhao AH, Dong N, Wang YJ, Wang GZ. The development and preliminary evaluation of a new Mycobacterium tuberculosis vaccine comprising Ag85b, HspX and CFP-10:ESAT-6 fusion protein with CpG DNA and aluminum hydroxide adjuvants. FEMS Immunol Med Microbiol. 2010 Jun 1;59(1):42-52. doi: 10.1111/j.1574-695X.2010.00660.x. Epub 2010 Feb 17.
- Young D, Dye C. The development and impact of tuberculosis vaccines. Cell. 2006 Feb 24;124(4):683-7. doi: 10.1016/j.cell.2006.02.013.
- Lalvani A, Nagvenkar P, Udwadia Z, Pathan AA, Wilkinson KA, Shastri JS, Ewer K, Hill AV, Mehta A, Rodrigues C. Enumeration of T cells specific for RD1-encoded antigens suggests a high prevalence of latent Mycobacterium tuberculosis infection in healthy urban Indians. J Infect Dis. 2001 Feb 1;183(3):469-77. doi: 10.1086/318081. Epub 2000 Dec 21.
- Pathan AA, Wilkinson KA, Klenerman P, McShane H, Davidson RN, Pasvol G, Hill AV, Lalvani A. Direct ex vivo analysis of antigen-specific IFN-gamma-secreting CD4 T cells in Mycobacterium tuberculosis-infected individuals: associations with clinical disease state and effect of treatment. J Immunol. 2001 Nov 1;167(9):5217-25. doi: 10.4049/jimmunol.167.9.5217.
- Targeted tuberculin testing and treatment of latent tuberculosis infection. This official statement of the American Thoracic Society was adopted by the ATS Board of Directors, July 1999. This is a Joint Statement of the American Thoracic Society (ATS) and the Centers for Disease Control and Prevention (CDC). This statement was endorsed by the Council of the Infectious Diseases Society of America. (IDSA), September 1999, and the sections of this statement. Am J Respir Crit Care Med. 2000 Apr;161(4 Pt 2):S221-47. doi: 10.1164/ajrccm.161.supplement_3.ats600. No abstract available.
- Taylor Z, Nolan CM, Blumberg HM; American Thoracic Society; Centers for Disease Control and Prevention; Infectious Diseases Society of America. Controlling tuberculosis in the United States. Recommendations from the American Thoracic Society, CDC, and the Infectious Diseases Society of America. MMWR Recomm Rep. 2005 Nov 4;54(RR-12):1-81. Erratum In: MMWR Morb Mortal Wkly Rep. 2005 Nov 18;54(45):1161.
- Horsburgh CR Jr. Priorities for the treatment of latent tuberculosis infection in the United States. N Engl J Med. 2004 May 13;350(20):2060-7. doi: 10.1056/NEJMsa031667.
- Tyagi AK, Nangpal P, Satchidanandam V. Development of vaccines against tuberculosis. Tuberculosis (Edinb). 2011 Sep;91(5):469-78. doi: 10.1016/j.tube.2011.01.003. Epub 2011 Feb 18.
- Brandt L, Feino Cunha J, Weinreich Olsen A, Chilima B, Hirsch P, Appelberg R, Andersen P. Failure of the Mycobacterium bovis BCG vaccine: some species of environmental mycobacteria block multiplication of BCG and induction of protective immunity to tuberculosis. Infect Immun. 2002 Feb;70(2):672-8. doi: 10.1128/IAI.70.2.672-678.2002.
- McShane H, Hill A. Prime-boost immunisation strategies for tuberculosis. Microbes Infect. 2005 May;7(5-6):962-7. doi: 10.1016/j.micinf.2005.03.009. Epub 2005 Apr 15.
- Murray JF. [Current clinical manifestations of tuberculosis]. Rev Prat. 1996 Jun 1;46(11):1344-9. French.
- Turner OC, Roberts AD, Frank AA, Phalen SW, McMurray DM, Content J, Denis O, D'Souza S, Tanghe A, Huygen K, Orme IM. Lack of protection in mice and necrotizing bronchointerstitial pneumonia with bronchiolitis in guinea pigs immunized with vaccines directed against the hsp60 molecule of Mycobacterium tuberculosis. Infect Immun. 2000 Jun;68(6):3674-9. doi: 10.1128/IAI.68.6.3674-3679.2000.
- Taylor JL, Turner OC, Basaraba RJ, Belisle JT, Huygen K, Orme IM. Pulmonary necrosis resulting from DNA vaccination against tuberculosis. Infect Immun. 2003 Apr;71(4):2192-8. doi: 10.1128/IAI.71.4.2192-2198.2003.
- Olsen AW, Williams A, Okkels LM, Hatch G, Andersen P. Protective effect of a tuberculosis subunit vaccine based on a fusion of antigen 85B and ESAT-6 in the aerosol guinea pig model. Infect Immun. 2004 Oct;72(10):6148-50. doi: 10.1128/IAI.72.10.6148-6150.2004.
- Andersen P, Doherty TM. TB subunit vaccines--putting the pieces together. Microbes Infect. 2005 May;7(5-6):911-21. doi: 10.1016/j.micinf.2005.03.013. Epub 2005 Apr 14.
- Torres M, Herrera T, Villareal H, Rich EA, Sada E. Cytokine profiles for peripheral blood lymphocytes from patients with active pulmonary tuberculosis and healthy household contacts in response to the 30-kilodalton antigen of Mycobacterium tuberculosis. Infect Immun. 1998 Jan;66(1):176-80. doi: 10.1128/IAI.66.1.176-180.1998.
- Alexander DC, Liu J. Mycobacteria Genomes. Bacterial Genomes and InfecDis.2003,7(2):153-154.
- Mostowy S, Cousins D, Brinkman J, Aranaz A, Behr MA. Genomic deletions suggest a phylogeny for the Mycobacterium tuberculosis complex. J Infect Dis. 2002 Jul 1;186(1):74-80. doi: 10.1086/341068. Epub 2002 May 30.
- Didierlaurent AM, Morel S, Lockman L, Giannini SL, Bisteau M, Carlsen H, Kielland A, Vosters O, Vanderheyde N, Schiavetti F, Larocque D, Van Mechelen M, Garcon N. AS04, an aluminum salt- and TLR4 agonist-based adjuvant system, induces a transient localized innate immune response leading to enhanced adaptive immunity. J Immunol. 2009 Nov 15;183(10):6186-97. doi: 10.4049/jimmunol.0901474. Epub 2009 Oct 28.
- He Q, Mitchell A, Morcol T, Bell SJ. Calcium phosphate nanoparticles induce mucosal immunity and protection against herpes simplex virus type 2. Clin Diagn Lab Immunol. 2002 Sep;9(5):1021-4. doi: 10.1128/cdli.9.5.1021-1024.2002.
- Vollmer J, Krieg AM. Immunotherapeutic applications of CpG oligodeoxynucleotide TLR9 agonists. Adv Drug Deliv Rev. 2009 Mar 28;61(3):195-204. doi: 10.1016/j.addr.2008.12.008. Epub 2009 Jan 13.
- Weeratna RD, McCluskie MJ, Xu Y, Davis HL. CpG DNA induces stronger immune responses with less toxicity than other adjuvants. Vaccine. 2000 Mar 6;18(17):1755-62. doi: 10.1016/s0264-410x(99)00526-5.
- Stewart VA, McGrath S, Krieg AM, Larson NS, Angov E, Smith CL, Brewer TG, Heppner DG Jr. Activation of innate immunity in healthy Macaca mulatta macaques by a single subcutaneous dose of GMP CpG 7909: safety data and interferon-inducible protein-10 kinetics for humans and macaques. Clin Vaccine Immunol. 2008 Feb;15(2):221-6. doi: 10.1128/CVI.00420-07. Epub 2007 Dec 12.
- Cooper CL, Davis HL, Morris ML, Efler SM, Krieg AM, Li Y, Laframboise C, Al Adhami MJ, Khaliq Y, Seguin I, Cameron DW. Safety and immunogenicity of CPG 7909 injection as an adjuvant to Fluarix influenza vaccine. Vaccine. 2004 Aug 13;22(23-24):3136-43. doi: 10.1016/j.vaccine.2004.01.058.
- Halperin SA, Van Nest G, Smith B, Abtahi S, Whiley H, Eiden JJ. A phase I study of the safety and immunogenicity of recombinant hepatitis B surface antigen co-administered with an immunostimulatory phosphorothioate oligonucleotide adjuvant. Vaccine. 2003 Jun 2;21(19-20):2461-7. doi: 10.1016/s0264-410x(03)00045-8.
- Jones TR, Obaldia N 3rd, Gramzinski RA, Charoenvit Y, Kolodny N, Kitov S, Davis HL, Krieg AM, Hoffman SL. Synthetic oligodeoxynucleotides containing CpG motifs enhance immunogenicity of a peptide malaria vaccine in Aotus monkeys. Vaccine. 1999 Aug 6;17(23-24):3065-71. doi: 10.1016/s0264-410x(99)00145-0.
- Tokunaga T, Yamamoto H, Shimada S, Abe H, Fukuda T, Fujisawa Y, Furutani Y, Yano O, Kataoka T, Sudo T, et al. Antitumor activity of deoxyribonucleic acid fraction from Mycobacterium bovis BCG. I. Isolation, physicochemical characterization, and antitumor activity. J Natl Cancer Inst. 1984 Apr;72(4):955-62.
- Krieg AM, Yi AK, Matson S, Waldschmidt TJ, Bishop GA, Teasdale R, Koretzky GA, Klinman DM. CpG motifs in bacterial DNA trigger direct B-cell activation. Nature. 1995 Apr 6;374(6522):546-9. doi: 10.1038/374546a0.
- Hornung V, Rothenfusser S, Britsch S, Krug A, Jahrsdorfer B, Giese T, Endres S, Hartmann G. Quantitative expression of toll-like receptor 1-10 mRNA in cellular subsets of human peripheral blood mononuclear cells and sensitivity to CpG oligodeoxynucleotides. J Immunol. 2002 May 1;168(9):4531-7. doi: 10.4049/jimmunol.168.9.4531.
- Thomas LJ, Hammond RA, Forsberg EM, Geoghegan-Barek KM, Karalius BH, Marsh HC Jr, Rittershaus CW. Co-administration of a CpG adjuvant (VaxImmune, CPG 7909) with CETP vaccines increased immunogenicity in rabbits and mice. Hum Vaccin. 2009 Feb;5(2):79-84. doi: 10.4161/hv.5.2.6521. Epub 2009 Mar 1.
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Réel)
Achèvement primaire (Réel)
Achèvement de l'étude (Réel)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Estimation)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (Réel)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
Plus d'information
Termes liés à cette étude
Termes MeSH pertinents supplémentaires
Autres numéros d'identification d'étude
- LTao-AEC/BC02-Ⅰ-healthy
- LTao (Identificateur de registre: AnhuiZhifei)
Plan pour les données individuelles des participants (IPD)
Prévoyez-vous de partager les données individuelles des participants (DPI) ?
Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude
Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine
Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine
Ces informations ont été extraites directement du site Web clinicaltrials.gov sans aucune modification. Si vous avez des demandes de modification, de suppression ou de mise à jour des détails de votre étude, veuillez contacter register@clinicaltrials.gov. Dès qu'un changement est mis en œuvre sur clinicaltrials.gov, il sera également mis à jour automatiquement sur notre site Web .