Corifollitropine Alfa et morphocinétique embryonnaire

Les paramètres morphocinétiques du développement embryonnaire ont été étudiés de manière intensive. Cependant, peu d'attention a été accordée à l'influence de la stimulation ovarienne sur les paramètres morphocinétiques. Gryshenko et al. ont trouvé une différence significative dans le temps de quatrième division cellulaire (t5) des embryons obtenus après hyperstimulation ovarienne contrôlée dans les protocoles longs agonistes de la GnRH et antagonistes de la GnRH. De plus, des doses plus élevées de gonadotrophine ralentissent le développement des embryons.

Par conséquent, le but de cette étude est d'étudier l'influence de la corifollitropine alfa (Elonva) sur la morphocinétique de l'embryon et les résultats du traitement de la fertilité par rapport à un groupe témoin stimulé avec la follitropine bêta (Puregon). Les enquêteurs émettent l'hypothèse qu'il existe des différences dans le comportement morphocinétique des embryons dans les différents protocoles de stimulation.

Un total de 742 embryons de 215 patientes différentes souffrant d'infertilité subissant une stimulation ovarienne avec Elonva et un total de 5148 embryons de 1136 patientes subissant une stimulation ovarienne avec Puregon seront analysés rétrospectivement. Pour exclure les facteurs environnementaux, l'évaluation distinguera les embryons cultivés sous 21 % d'oxygène et les embryons avec des conditions d'oxygène réduites (5 % d'oxygène) dans l'embryoscope. Les groupes seront d'âge et d'IMC appariés.

Toutes les femmes incluses dans l'étude ont subi une hyperstimulation ovarienne contrôlée par le protocole antagoniste de la GnRH (Gonadotropin-releasing hormone). Les patients ont reçu de l'hormone folliculostimulante humaine recombinante (Elonva ; MSD Sharp & Dohme GMBH, Puregon ; MSD Sharp & Dohme GMBH). ELONVA a été administré pendant 7 jours avec administration ultérieure de Puregon (MSD Sharp & Dohme GMBH) en cas de besoin supplémentaire de stimulation. Puregon a été administré pendant 8 à 10 jours en adaptant la posologie en fonction de l'âge, du poids, de la concentration sérique d'hormone anti-mullérienne (sAMH) et du statut hormonal. Une échographie trans-vaginale a été réalisée après 5 jours de stimulation, suivie d'un jour sur deux jusqu'au jour du prélèvement des ovocytes. La mesure échographique a été réalisée à l'aide d'une sonde intravaginale RIC 5-9-D 4D d'un échographe GE Voluson E8 BT09 (tous deux de GE Healthcare Austria GmbH). Un antagoniste de la GnRH (Cetrotide, Merck KGaA) a été injecté pour éviter une ovulation prématurée. Le déclenchement a été initié 35 h avant le prélèvement des ovocytes, administré avec 5 000 à 10 000 UI de gonadotrophine chorionique humaine (hCG) par voie sous-cutanée (Pregnyl, N.V. Organon), avec adaptation de la posologie en fonction du poids corporel de la patiente.

Les follicules de plus de 10 mm de diamètre ont été aspirés sous sédation (Propofol, Fresenius Kabi Austria GmbH ; Rapifen, Janssen-Cilag Pharma GmbH) et sous guidage échographique transvaginal (GE Healthcare Austria GmbH). Le fluide folliculaire (FF) a été examiné pour les ovocytes dans des conditions constantes de 37 ° C dans un poste de travail de FIV L24E avec étage de chauffage (K-SYSTEMS Kivex Biotec A/S). L'injection intracytoplasmique de spermatozoïdes (ICSI) a été réalisée sur tous les ovocytes en métaphase II (MII) 4 à 5 heures après le prélèvement des ovocytes selon notre mode opératoire standard dans les deux groupes de patientes.

Après prélèvement et fécondation des ovocytes, les ovocytes ont été cultivés dans un milieu de culture universel (Gynemed Medizinprodukte GmbH & Co. KG, Allemagne). Après 14-16 h, un contrôle de fécondation a été effectué. Tous les embryons fécondés normaux avec deux pronucléi (PN) ont ensuite été cultivés à l'aide de boîtes Embryoslide dans un incubateur time-lapse Embryoscope® (les deux Vitrolife AB, Suède). Avec la caméra et le microscope intégrés, des images de l'embryon en développement ont été prises toutes les 15 minutes dans sept couches différentes. La définition des paramètres morphocinétiques a été réalisée selon les critères proposés par Ciray et al. et a été analysé avec un logiciel développé pour l'analyse d'images en accéléré (logiciel Embryoviewer® ; Vitrolife AB, Suède).