- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT04313231
Inflammation stérile et aberrations moléculaires dans le SMD (InflamGen)
Inflammation stérile et aberrations moléculaires dans le syndrome myélodysplasique : déterminants de la qualité de vie et de la vulnérabilité
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Intervention / Traitement
- Test diagnostique: Séquençage de nouvelle génération
- Test diagnostique: Examens immunologiques tumoraux - dosages multiplex/amplification en chaîne par polymérase quantitative
- Test diagnostique: cytométrie en flux
- Test diagnostique: Métagénomique des échantillons de selles
- Test diagnostique: Données cliniques/démographiques
- Autre: Élicitation de la QVLS
Type d'étude
Inscription (Anticipé)
Contacts et emplacements
Coordonnées de l'étude
- Nom: Domink Wolf, Univ.Prof.
- Numéro de téléphone: 24003 0043512504
- E-mail: dominik.wolf@i-med.ac.at
Sauvegarde des contacts de l'étude
- Nom: Verena Petzer, MD
- Numéro de téléphone: 82979 0043512504
Lieux d'étude
-
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Tyrol
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Innsbruck, Tyrol, L'Autriche, 6020
- Recrutement
- Medical University of Innsbruck
-
Contact:
- Dominik Wolf, Univ.Prof.
- Numéro de téléphone: 24003 0043512504
- E-mail: dominik.wolf@i-med.ac.at
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Contact:
- Verena Petzer, MD
- Numéro de téléphone: 82979 +43-512-504
- E-mail: verena.petzer@i-med.ac.at
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Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
Accepte les volontaires sains
Sexes éligibles pour l'étude
Méthode d'échantillonnage
Population étudiée
La description
Critère d'intégration:
- Patients féminins et masculins > 18 ans
- Diagnostic MDS, MDS/MPN basé sur la classification actuelle de l'OMS. CCUS et CHIP définis par Valent (Valent, Oncotarget, 2018) et par Stauder (Stauder, Blood, 2018)
- Déclaration de consentement signée et datée par le patient conformément aux directives ICH-GCP
Critère d'exclusion:
- Toute autre maladie, physique ou mentale, ou toute anomalie de laboratoire empêchant une déclaration de consentement par le patient
- Patients présentant une infection aiguë et/ou non contrôlée, y compris les patients apyrétiques sous traitement par antibiotique/antifongique/antiviral prophylactique
- Toute maladie auto-immune préexistante nécessitant une immunosuppression systémique
- Corticothérapie (>10 mg de Prednison/jour ou équivalent), quelle que soit sa nécessité jusqu'à 4 semaines avant l'inclusion dans l'étude
- Thérapie anamnestique et/ou en cours avec des agents hypométhylants (HMA) ou des médicaments imides immunomodulateurs (IMiD)
- Statut post allogreffe de cellules souches
- Chimiothérapie antérieure ou en cours
- Période de grossesse ou d'allaitement
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Modèles d'observation: Cohorte
- Perspectives temporelles: Éventuel
Cohortes et interventions
Groupe / Cohorte |
Intervention / Traitement |
|---|---|
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MDS
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Le séquençage des échantillons de patients sera effectué dans les installations de ZIMCL.
Suite à l'extraction de l'ADN, le séquençage des granulocytes ainsi que des lymphocytes (contrôle) sera réalisé.
En plus du séquençage de l'exome entier, un panel de SOPHIA GENETICS (qui est également disponible pour les diagnostics de routine) sera appliqué, y compris les gènes spécifiques MDS suivants : ASXL1, BRAF, CBL, CEBPA, CSF3R, DNMT3A, EZH2, FLT3, HRAS, IDH1 , IDH2, KRAS, MPL, NPM1, NRAS, RUNX1, SF3B1, SRSF2, TET2, TP53, U2AF1, WT1, ZRSR.
Chaque échantillon de patient sera "séquencé en masse", ce qui signifie que les mutations pertinentes sont détectées jusqu'à une fréquence d'allèle de 2 %.
L'activation de l'inflammasome est quantifiée par des analyses des modèles de cytokines associées à l'inflammasome. Des tests multiplex pour la quantification des cytokines spécifiques de l'inflammasome seront effectués à partir du sérum ainsi que des surnageants des cellules sanguines stimulées. La quantification des cytokines est réalisée avec Luminex FlexMap 3D. Les niveaux de cytokines sériques seront quantifiés en parallèle. La quantification des niveaux d'expression d'ARN des produits géniques liés à l'inflammasome sera effectuée par qPCR à partir de cellules sanguines non stimulées et stimulées (= cryotube). L'extraction d'ARN nécessaire sera effectuée à l'aide d'un kit d'extraction d'ARN.
Une évaluation détaillée de l'état immunitaire individuel est menée par l'analyse de deux panels spécialisés : le panel A fournit un large aperçu de diverses populations de cellules immunitaires, tandis que le panel B identifie les sup-populations de lymphocytes T.
L'ADN sera extrait d'échantillons fécaux congelés en appliquant une méthode de perlage à l'aide d'un kit d'isolement d'ADN GNOME (MP Biomedicals).
La qualité de l'ADN sera évaluée à l'aide d'une Agilent 4200 TapeStation (Agilent Technologies).
Après la précipitation finale, les échantillons d'ADN seront remis en suspension dans du tampon TE et stockés à -80 °C pour une analyse de séquençage plus poussée.
À cette fin, des bibliothèques de séquençage seront générées à l'aide d'un kit de préparation d'échantillons d'ADN Nextera XT (Illumina).
La qualité de la bibliothèque sera confirmée à l'aide d'une Agilent 4200 TapeStation.
Le séquençage shotgun du génome entier d'échantillons fécaux sera effectué sur une plateforme HiSeq2500 (Illumina).
Les données démographiques et cliniques comprennent : l'âge, l'âge au moment du diagnostic initial, le sexe, le diagnostic, les comorbidités réelles, la médication à l'inclusion dans l'étude, les profils cytogénétiques et moléculaires et les paramètres de laboratoire standard (numération sanguine, numération leucocytaire différentielle, biochimie, statut en fer, marqueurs inflammatoires comme CRP, albumine, fibrinogène).
L'évaluation de la QVLS, des activités fonctionnelles et de l'état de performance sera effectuée par le patient et/ou le médecin à l'aide de scores validés.
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contrôler
personnes en bonne santé du même âge
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Le séquençage des échantillons de patients sera effectué dans les installations de ZIMCL.
Suite à l'extraction de l'ADN, le séquençage des granulocytes ainsi que des lymphocytes (contrôle) sera réalisé.
En plus du séquençage de l'exome entier, un panel de SOPHIA GENETICS (qui est également disponible pour les diagnostics de routine) sera appliqué, y compris les gènes spécifiques MDS suivants : ASXL1, BRAF, CBL, CEBPA, CSF3R, DNMT3A, EZH2, FLT3, HRAS, IDH1 , IDH2, KRAS, MPL, NPM1, NRAS, RUNX1, SF3B1, SRSF2, TET2, TP53, U2AF1, WT1, ZRSR.
Chaque échantillon de patient sera "séquencé en masse", ce qui signifie que les mutations pertinentes sont détectées jusqu'à une fréquence d'allèle de 2 %.
L'activation de l'inflammasome est quantifiée par des analyses des modèles de cytokines associées à l'inflammasome. Des tests multiplex pour la quantification des cytokines spécifiques de l'inflammasome seront effectués à partir du sérum ainsi que des surnageants des cellules sanguines stimulées. La quantification des cytokines est réalisée avec Luminex FlexMap 3D. Les niveaux de cytokines sériques seront quantifiés en parallèle. La quantification des niveaux d'expression d'ARN des produits géniques liés à l'inflammasome sera effectuée par qPCR à partir de cellules sanguines non stimulées et stimulées (= cryotube). L'extraction d'ARN nécessaire sera effectuée à l'aide d'un kit d'extraction d'ARN.
Une évaluation détaillée de l'état immunitaire individuel est menée par l'analyse de deux panels spécialisés : le panel A fournit un large aperçu de diverses populations de cellules immunitaires, tandis que le panel B identifie les sup-populations de lymphocytes T.
L'ADN sera extrait d'échantillons fécaux congelés en appliquant une méthode de perlage à l'aide d'un kit d'isolement d'ADN GNOME (MP Biomedicals).
La qualité de l'ADN sera évaluée à l'aide d'une Agilent 4200 TapeStation (Agilent Technologies).
Après la précipitation finale, les échantillons d'ADN seront remis en suspension dans du tampon TE et stockés à -80 °C pour une analyse de séquençage plus poussée.
À cette fin, des bibliothèques de séquençage seront générées à l'aide d'un kit de préparation d'échantillons d'ADN Nextera XT (Illumina).
La qualité de la bibliothèque sera confirmée à l'aide d'une Agilent 4200 TapeStation.
Le séquençage shotgun du génome entier d'échantillons fécaux sera effectué sur une plateforme HiSeq2500 (Illumina).
Les données démographiques et cliniques comprennent : l'âge, l'âge au moment du diagnostic initial, le sexe, le diagnostic, les comorbidités réelles, la médication à l'inclusion dans l'étude, les profils cytogénétiques et moléculaires et les paramètres de laboratoire standard (numération sanguine, numération leucocytaire différentielle, biochimie, statut en fer, marqueurs inflammatoires comme CRP, albumine, fibrinogène).
L'évaluation de la QVLS, des activités fonctionnelles et de l'état de performance sera effectuée par le patient et/ou le médecin à l'aide de scores validés.
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Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Délai |
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Définition de la corrélation entre les aberrations moléculaires et le tonus inflammatoire stérile
Délai: ligne de base
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ligne de base
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Définition de l'impact des aberrations génétiques et de l'inflammation stérile associée sur la qualité de vie liée à la santé (HRQoL, par exemple la fatigue) et les activités fonctionnelles chez les patients atteints de SMD, MDS/MPN ou CHIP/CCUS
Délai: ligne de base
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ligne de base
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Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Délai |
|---|---|
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Définition de la corrélation entre le tonus inflammatoire stérile et les variables cliniques (par exemple, la progression vers la leucémie myéloïde aiguë secondaire (LMAs), les complications (par exemple, les infections) et la survie)
Délai: ligne de base
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ligne de base
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Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Domink Wolf, Univ.Prof., Medical University Innsbruck
Publications et liens utiles
Publications générales
- Valent P, Stauder R, Theurl I, Geissler K, Sliwa T, Sperr WR, Bettelheim P, Sill H, Pfeilstocker M. Diagnosis, management and response criteria of iron overload in myelodysplastic syndromes (MDS): updated recommendations of the Austrian MDS platform. Expert Rev Hematol. 2018 Feb;11(2):109-116. doi: 10.1080/17474086.2018.1420473. Epub 2018 Jan 2.
- Stauder R, Valent P, Theurl I. Anemia at older age: etiologies, clinical implications, and management. Blood. 2018 Feb 1;131(5):505-514. doi: 10.1182/blood-2017-07-746446. Epub 2017 Nov 15.
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Réel)
Achèvement primaire (Anticipé)
Achèvement de l'étude (Anticipé)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Réel)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (Réel)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
Plus d'information
Termes liés à cette étude
Mots clés
Termes MeSH pertinents supplémentaires
Autres numéros d'identification d'étude
- 20200129-2183
Plan pour les données individuelles des participants (IPD)
Prévoyez-vous de partager les données individuelles des participants (DPI) ?
Description du régime IPD
Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude
Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine
Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine
Ces informations ont été extraites directement du site Web clinicaltrials.gov sans aucune modification. Si vous avez des demandes de modification, de suppression ou de mise à jour des détails de votre étude, veuillez contacter register@clinicaltrials.gov. Dès qu'un changement est mis en œuvre sur clinicaltrials.gov, il sera également mis à jour automatiquement sur notre site Web .