- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT04489056
Microbiome dans l'accouchement prématuré
Le microbiome humain dans la pPROM, la naissance prématurée et le nouveau-né : une étude pilote longitudinale prospective
Les objectifs de cette étude pilote longitudinale prospective cas-témoins sont (1) de caractériser les changements du microbiome vaginal, utérin et placentaire chez les femmes enceintes en situation de pROM avec hospitalisation immédiate et césarienne consécutive à terme, par rapport aux naissances à terme sans incident avec césarienne élective, ainsi que (2) pour évaluer l'influence de la mère sur le microbiome néonatal et le résultat néonatal précoce dans les cas de pPROM prématurés, par rapport aux naissances à terme sans incident.
Le premier objectif sera atteint en collectant des écouvillons vaginaux et rectaux pour l'analyse du microbiome chez les femmes souffrant de pPROM, suivis d'écouvillons utérins et placentaires qui sont collectés lors de la césarienne. Des échantillons de contrôle seront prélevés aux mêmes moments chez les femmes subissant une césarienne élective à terme. Le deuxième objectif sera atteint par l'analyse du microbiome d'écouvillons rectaux, oraux/buccaux et cutanés prélevés sur des nouveau-nés nés avant terme après pPROM ou à terme, tous deux par césarienne.
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Intervention / Traitement
Description détaillée
Un total de 100 participants à l'étude seront inclus, affectés à l'un des groupes suivants :
Groupe d'étude:
• Ce groupe sera composé de 50 femmes enceintes, qui ont subi une pPROM entre 22+5 et 28+0 semaines de gestation, soit se présentant sur le site d'étude primaire, soit référées par d'autres hôpitaux, et accouché avant terme par césarienne.
Groupe de contrôle:
• Ce groupe sera composé de 50 femmes enceintes, qui doivent subir une césarienne élective au service ambulatoire du site principal de l'étude, entre 32+0 et 37+0 semaines de gestation, et accoucher à terme par césarienne.
Recrutement:
Le recrutement de tous les patients aura lieu à l'Université médicale de Vienne, Département d'obstétrique et de gynécologie. Les femmes du groupe d'étude seront référées par des hôpitaux extérieurs ou se présenteront pour une raison quelconque à notre service. La vérification de la pPROM sera effectuée par un examen au spéculum et la détection de l'accumulation de liquide amniotique. En cas de résultats incertains, un test enzymatique (par exemple, Amnisure®, QUIAGEN Sciences, LLC ; Germantown, MD 20874, USA) sera effectué. Suite à la vérification de la pPROM, les femmes qui répondent aux critères d'inclusion se verront proposer de participer à l'étude. Ceux qui subissent un accouchement vaginal spontané au lieu d'une césarienne pour une raison quelconque, seront considérés comme des abandons. Les femmes du groupe témoin seront recrutées lors de leur présentation de routine pour une césarienne élective (pour toute raison ne répondant pas aux critères d'exclusion de l'étude) qui sera programmée à terme. Celles qui accouchent avant terme bien qu'elles soient programmées pour une césarienne élective à terme seront considérées comme des abandons. Lors de leur consultation en ambulatoire, ces femmes se verront proposer de participer à l'étude.
Échantillonnage:
Tous les écouvillons seront collectés auprès des sous-investigateurs de cette étude en utilisant une procédure standardisée. Pour l'anonymat, seuls le moment, l'emplacement et le service de collecte seront marqués sur les tubes d'écouvillonnage. Après consentement éclairé, des écouvillons vaginaux seront prélevés lors de l'examen au spéculum de la paroi vaginale latérale et du fornix vaginal postérieur à l'aide d'un coton-tige stérile combiné à une brosse épithéliale. Un écouvillon rectal sera prélevé par insertion d'un écouvillon stérile dans le sphincter anal. Des écouvillons peropératoires du placenta et de la cavité utérine seront prélevés pendant la césarienne dans des conditions stériles. Des écouvillons néonataux (muqueuse buccale et peau) seront prélevés directement après l'accouchement et en période néonatale. Des échantillons de selles seront prélevés dans le méconium, défini comme les premières selles du nourrisson et les selles du nouveau-né pendant la période néonatale. Tous les échantillons seront immédiatement stockés à -80°C après le prélèvement. La brosse épithéliale sera placée dans une solution de stabilisation d'ARN RNAlater® et stockée à -80°C.
Analyse du microbiome :
L'analyse du microbiome sera effectuée au Joint Microbiome Facility (JMF) de l'Université de médecine de Vienne et de l'Université de Vienne. Les tests seront effectués par des sous-chercheurs du JMF. La composition de la communauté microbienne dans les échantillons de selles prélevés sur écouvillon sera déterminée par séquençage de l'amplicon du gène de l'ARNr 16S. En bref, l'ADN sera extrait avec le kit QIAamp Microbiome ou le kit QIAamp DNA Mini (pour les échantillons d'écouvillon et de selles, respectivement), suivi d'une amplification du gène ARNr 16S et d'un code-barres comme décrit précédemment. Échantillons d'amplicons multiplexés séquencés sur la plateforme Illumina MiSeq au JMF. Les contrôles négatifs effectués pendant l'extraction de l'ADN et l'amplification du gène de l'ARNr 16S sont systématiquement inclus dans le flux de travail de traitement des échantillons. Les données de séquence obtenues seront filtrées par qualité et démultiplexées, suivies d'une inférence de variant de séquençage d'amplicon (ASV) avec DADA2,16 permettant une analyse à la résolution taxonomique la plus élevée possible. Les séquences ASV résultantes seront classées taxonomiquement à l'aide de SINA avec la dernière version de la base de données d'ARNr SILVA SSU. Si nécessaire, les contaminants seront éliminés in silico à l'aide du progiciel decontam.
Données périnatales :
En plus de l'échantillonnage et de l'analyse par écouvillonnage, les paramètres périnataux suivants seront collectés à l'aide de la base de données fœtale PIA, version 5.6.16.917 (GE Viewpoint, Munich, Allemagne) : âge maternel [nombre], parité [nombre], éducation tertiaire [oui /non], origine ethnique [catégorie], statut relationnel [catégorie], indice de masse corporelle [nombre], abus de nicotine [oui/non], antécédents de pPROM [oui/non], antécédents de TBP [oui/non], maladies préexistantes [catégorie], dépistage des infections vaginales [oui/non], insuffisance cervicale [oui/non], prééclampsie [oui/non], saignement [oui/non], prophylaxie anténatale aux stéroïdes [oui/non], traitement antibiotique en cours [oui/ non], tocolyse [oui/non], prophylaxie au magnésium [oui/non], semaine de gestation à l'accouchement [nombre], poids de naissance [nombre], score d'Apgar à 1/5/10 minutes [nombre], pH artériel du cordon ombilical [nombre ], transfert en unité de soins intensifs néonatals [oui/non].
Type d'étude
Inscription (Anticipé)
Contacts et emplacements
Lieux d'étude
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Vienna, L'Autriche, 1090
- Recrutement
- Medical University of Vienna, Dept. of Obstetrics and Gynecology
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Contact:
- Philipp Foessleitner, MD BSc
- Numéro de téléphone: 28220 +43140400
- E-mail: philipp.foessleitner@muv.ac.at
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Contact:
- Alex Farr, MD PhD
- Numéro de téléphone: 28220 +43140400
- E-mail: alex.farr@muv.ac.at
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Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
- Enfant
- Adulte
- Adulte plus âgé
Accepte les volontaires sains
Sexes éligibles pour l'étude
Méthode d'échantillonnage
Population étudiée
Un total de 100 participants à l'étude, répondant à tous les critères d'inclusion et de non-exclusion, seront inclus, affectés à l'un des groupes suivants :
Groupe d'étude:
• Ce groupe sera composé de 50 femmes enceintes, qui ont subi une pPROM entre 22+5 et 28+0 semaines de gestation, soit se présentant sur le site d'étude primaire, soit référées par d'autres hôpitaux, et accouché avant terme par césarienne.
Groupe de contrôle:
• Ce groupe sera composé de 50 femmes enceintes, qui doivent subir une césarienne élective au service ambulatoire du site principal de l'étude, entre 32+0 et 37+0 semaines de gestation, et accoucher à terme par césarienne.
La description
Critère d'intégration:
- Âge maternel ≥ 18 ans au moment de l'inscription à l'étude
- Grossesse unique
- Consentement éclairé signé
- Rupture prématurée des membranes avant terme confirmée (pPROM) ou césarienne élective pour un accouchement à terme (selon le groupe d'étude)
- Âge gestationnel au moment de la pPROM entre 22 + 5 et 28 + 0 semaines ou ≥ 37 + 0 semaines de gestation au moment de la césarienne à terme (selon le groupe d'étude)
Critère d'exclusion:
- Âge maternel
- Grossesse multiple
- Incapacité de consentir à la participation à l'étude
- Traitement antibiotique en cours ou traitement antibiotique ≤ 2 semaines avant l'inscription à l'étude
- Rapports sexuels vaginaux dans les 48 heures précédant l'inscription à l'étude
- Saignements vaginaux frais dans les 48 heures précédant l'inscription à l'étude
- Infection maternelle par l'hépatite B ou l'hépatite C (c'est-à-dire, positif à la PCR)
- Infection maternelle par le VIH (c'est-à-dire positive à la PCR)
- Diabète sucré maternel ou diabète gestationnel
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Modèles d'observation: Cas-témoins
- Perspectives temporelles: Éventuel
Cohortes et interventions
Groupe / Cohorte |
Intervention / Traitement |
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Groupe d'étude
Ce groupe sera composé de 50 femmes enceintes, qui ont subi une pPROM entre 22 + 5 et 28 + 0 semaines de gestation, soit se présentant sur le site principal de l'étude, soit référées par d'autres hôpitaux, et ayant accouché prématurément par césarienne.
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Après consentement éclairé, des écouvillons vaginaux seront prélevés lors de l'examen au spéculum de la paroi vaginale latérale et du fornix vaginal postérieur à l'aide d'un coton-tige stérile combiné à une brosse épithéliale.
Un écouvillon rectal sera prélevé par insertion d'un écouvillon stérile dans le sphincter anal.
Des écouvillons peropératoires du placenta et de la cavité utérine seront prélevés pendant la césarienne dans des conditions stériles.
Des écouvillons néonataux (muqueuse buccale et peau) seront prélevés directement après l'accouchement et en période néonatale.
Des échantillons de selles seront prélevés dans le méconium, défini comme les premières selles du nourrisson et les selles du nouveau-né pendant la période néonatale.
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Groupe de contrôle
Ce groupe sera composé de 50 femmes enceintes, qui doivent subir une césarienne élective au service ambulatoire du site d'étude principal, entre 32+0 et 37+0 semaines de gestation, et accoucher à terme par césarienne.
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Après consentement éclairé, des écouvillons vaginaux seront prélevés lors de l'examen au spéculum de la paroi vaginale latérale et du fornix vaginal postérieur à l'aide d'un coton-tige stérile combiné à une brosse épithéliale.
Un écouvillon rectal sera prélevé par insertion d'un écouvillon stérile dans le sphincter anal.
Des écouvillons peropératoires du placenta et de la cavité utérine seront prélevés pendant la césarienne dans des conditions stériles.
Des écouvillons néonataux (muqueuse buccale et peau) seront prélevés directement après l'accouchement et en période néonatale.
Des échantillons de selles seront prélevés dans le méconium, défini comme les premières selles du nourrisson et les selles du nouveau-né pendant la période néonatale.
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Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Changements du microbiome vaginal après pPROM par rapport aux naissances à terme
Délai: Jusqu'en juillet 2021
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Les mesures d'abondance (comptes) des variantes de séquence d'amplicon (ASV), ainsi que les comptes de somme ASV à des niveaux taxonomiques plus élevés seront évalués, pour tester un chevauchement ou des différences significatifs dans la composition de la communauté microbienne dans différents groupes d'échantillons.
Ces paramètres seront analysés au sein de chacun des groupes d'étude, y compris des analyses longitudinales pour détecter une différence potentielle entre le début de la pPROM et le moment de l'accouchement ou plus tard (groupe d'étude), ou entre la grossesse et le moment de l'accouchement ou plus tard (groupe témoin ).
De plus, les comptes ASV et ASV seront comparés entre le groupe d'étude et le groupe témoin à des moments prédéterminés.
La détection de variants de séquence d'amplicon significativement plus abondants entre les groupes sera effectuée, et les valeurs P ajustées seront calculées à l'aide de la méthode Benjamini-Hochberg et les différences prises en charge avec les valeurs P
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Jusqu'en juillet 2021
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Changements du microbiome rectal après pPROM par rapport aux naissances à terme
Délai: Jusqu'en juillet 2021
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Les mesures d'abondance (comptes) des variantes de séquence d'amplicon (ASV), ainsi que les comptes de somme ASV à des niveaux taxonomiques plus élevés seront évalués, pour tester un chevauchement ou des différences significatifs dans la composition de la communauté microbienne dans différents groupes d'échantillons.
Ces paramètres seront analysés au sein de chacun des groupes d'étude, y compris des analyses longitudinales pour détecter une différence potentielle entre le début de la pPROM et le moment de l'accouchement ou plus tard (groupe d'étude), ou entre la grossesse et le moment de l'accouchement ou plus tard (groupe témoin ).
De plus, les comptes ASV et ASV seront comparés entre le groupe d'étude et le groupe témoin à des moments prédéterminés.
La détection de variants de séquence d'amplicon significativement plus abondants entre les groupes sera effectuée, et les valeurs P ajustées seront calculées à l'aide de la méthode Benjamini-Hochberg et les différences prises en charge avec les valeurs P
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Jusqu'en juillet 2021
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Changements du microbiome placentaire après pPROM par rapport aux naissances à terme
Délai: Jusqu'en juillet 2021
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Les mesures d'abondance (comptes) des variantes de séquence d'amplicon (ASV), ainsi que les comptes de somme ASV à des niveaux taxonomiques plus élevés seront évalués, pour tester un chevauchement ou des différences significatifs dans la composition de la communauté microbienne dans différents groupes d'échantillons.
Ces paramètres seront analysés au sein de chacun des groupes d'étude, y compris des analyses longitudinales pour détecter une différence potentielle entre le début de la pPROM et le moment de l'accouchement ou plus tard (groupe d'étude), ou entre la grossesse et le moment de l'accouchement ou plus tard (groupe témoin ).
De plus, les comptes ASV et ASV seront comparés entre le groupe d'étude et le groupe témoin à des moments prédéterminés.
La détection de variants de séquence d'amplicon significativement plus abondants entre les groupes sera effectuée, et les valeurs P ajustées seront calculées à l'aide de la méthode Benjamini-Hochberg et les différences prises en charge avec les valeurs P
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Jusqu'en juillet 2021
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Changements du microbiome utérin après pPROM par rapport aux naissances à terme
Délai: Jusqu'en juillet 2021
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Les mesures d'abondance (comptes) des variantes de séquence d'amplicon (ASV), ainsi que les comptes de somme ASV à des niveaux taxonomiques plus élevés seront évalués, pour tester un chevauchement ou des différences significatifs dans la composition de la communauté microbienne dans différents groupes d'échantillons.
Ces paramètres seront analysés au sein de chacun des groupes d'étude, y compris des analyses longitudinales pour détecter une différence potentielle entre le début de la pPROM et le moment de l'accouchement ou plus tard (groupe d'étude), ou entre la grossesse et le moment de l'accouchement ou plus tard (groupe témoin ).
De plus, les comptes ASV et ASV seront comparés entre le groupe d'étude et le groupe témoin à des moments prédéterminés.
La détection de variants de séquence d'amplicon significativement plus abondants entre les groupes sera effectuée, et les valeurs P ajustées seront calculées à l'aide de la méthode Benjamini-Hochberg et les différences prises en charge avec les valeurs P
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Jusqu'en juillet 2021
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Modifications du microbiome néonatal des nouveau-nés nés après pPROM par rapport aux nouveau-nés accouchés à terme
Délai: Jusqu'en juillet 2021
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Les mesures d'abondance (comptes) des variantes de séquence d'amplicon (ASV), ainsi que les comptes de somme ASV à des niveaux taxonomiques plus élevés seront évalués, pour tester un chevauchement ou des différences significatifs dans la composition de la communauté microbienne dans différents groupes d'échantillons.
Ces paramètres seront analysés au sein de chacun des groupes d'étude, y compris des analyses longitudinales pour détecter une différence potentielle entre le début de la pPROM et le moment de l'accouchement ou plus tard (groupe d'étude), ou entre la grossesse et le moment de l'accouchement ou plus tard (groupe témoin ).
De plus, les comptes ASV et ASV seront comparés entre le groupe d'étude et le groupe témoin à des moments prédéterminés.
La détection de variants de séquence d'amplicon significativement plus abondants entre les groupes sera effectuée, et les valeurs P ajustées seront calculées à l'aide de la méthode Benjamini-Hochberg et les différences prises en charge avec les valeurs P
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Jusqu'en juillet 2021
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Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Collaborateurs
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Alex Farr, MD PhD, Medical University of Vienna
- Chaise d'étude: Herbert Kiss, MD MBA, Medical University of Vienna
- Chaise d'étude: Angelika Berger, MD MBA, Medical University of Vienna
Publications et liens utiles
Publications générales
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- Jovel J, Patterson J, Wang W, Hotte N, O'Keefe S, Mitchel T, Perry T, Kao D, Mason AL, Madsen KL, Wong GK. Characterization of the Gut Microbiome Using 16S or Shotgun Metagenomics. Front Microbiol. 2016 Apr 20;7:459. doi: 10.3389/fmicb.2016.00459. eCollection 2016.
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- Brown RG, Marchesi JR, Lee YS, Smith A, Lehne B, Kindinger LM, Terzidou V, Holmes E, Nicholson JK, Bennett PR, MacIntyre DA. Vaginal dysbiosis increases risk of preterm fetal membrane rupture, neonatal sepsis and is exacerbated by erythromycin. BMC Med. 2018 Jan 24;16(1):9. doi: 10.1186/s12916-017-0999-x.
- Chu DM, Ma J, Prince AL, Antony KM, Seferovic MD, Aagaard KM. Maturation of the infant microbiome community structure and function across multiple body sites and in relation to mode of delivery. Nat Med. 2017 Mar;23(3):314-326. doi: 10.1038/nm.4272. Epub 2017 Jan 23.
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- Gosmann C, Anahtar MN, Handley SA, Farcasanu M, Abu-Ali G, Bowman BA, Padavattan N, Desai C, Droit L, Moodley A, Dong M, Chen Y, Ismail N, Ndung'u T, Ghebremichael MS, Wesemann DR, Mitchell C, Dong KL, Huttenhower C, Walker BD, Virgin HW, Kwon DS. Lactobacillus-Deficient Cervicovaginal Bacterial Communities Are Associated with Increased HIV Acquisition in Young South African Women. Immunity. 2017 Jan 17;46(1):29-37. doi: 10.1016/j.immuni.2016.12.013. Epub 2017 Jan 10.
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- Callahan BJ, DiGiulio DB, Goltsman DSA, Sun CL, Costello EK, Jeganathan P, Biggio JR, Wong RJ, Druzin ML, Shaw GM, Stevenson DK, Holmes SP, Relman DA. Replication and refinement of a vaginal microbial signature of preterm birth in two racially distinct cohorts of US women. Proc Natl Acad Sci U S A. 2017 Sep 12;114(37):9966-9971. doi: 10.1073/pnas.1705899114. Epub 2017 Aug 28.
- Brown RG, Al-Memar M, Marchesi JR, Lee YS, Smith A, Chan D, Lewis H, Kindinger L, Terzidou V, Bourne T, Bennett PR, MacIntyre DA. Establishment of vaginal microbiota composition in early pregnancy and its association with subsequent preterm prelabor rupture of the fetal membranes. Transl Res. 2019 May;207:30-43. doi: 10.1016/j.trsl.2018.12.005. Epub 2018 Dec 27.
- Stout MJ, Zhou Y, Wylie KM, Tarr PI, Macones GA, Tuuli MG. Early pregnancy vaginal microbiome trends and preterm birth. Am J Obstet Gynecol. 2017 Sep;217(3):356.e1-356.e18. doi: 10.1016/j.ajog.2017.05.030. Epub 2017 May 23.
- Thorsen J, Brejnrod A, Mortensen M, Rasmussen MA, Stokholm J, Al-Soud WA, Sorensen S, Bisgaard H, Waage J. Large-scale benchmarking reveals false discoveries and count transformation sensitivity in 16S rRNA gene amplicon data analysis methods used in microbiome studies. Microbiome. 2016 Nov 25;4(1):62. doi: 10.1186/s40168-016-0208-8.
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- Pruesse E, Peplies J, Glockner FO. SINA: accurate high-throughput multiple sequence alignment of ribosomal RNA genes. Bioinformatics. 2012 Jul 15;28(14):1823-9. doi: 10.1093/bioinformatics/bts252. Epub 2012 May 3.
- Quast C, Pruesse E, Yilmaz P, Gerken J, Schweer T, Yarza P, Peplies J, Glockner FO. The SILVA ribosomal RNA gene database project: improved data processing and web-based tools. Nucleic Acids Res. 2013 Jan;41(Database issue):D590-6. doi: 10.1093/nar/gks1219. Epub 2012 Nov 28.
- Callahan BJ, McMurdie PJ, Rosen MJ, Han AW, Johnson AJ, Holmes SP. DADA2: High-resolution sample inference from Illumina amplicon data. Nat Methods. 2016 Jul;13(7):581-3. doi: 10.1038/nmeth.3869. Epub 2016 May 23.
- Herbold CW, Pelikan C, Kuzyk O, Hausmann B, Angel R, Berry D, Loy A. Corrigendum: A flexible and economical barcoding approach for highly multiplexed amplicon sequencing of diverse target genes. Front Microbiol. 2016 Jun 6;7:870. doi: 10.3389/fmicb.2016.00870. eCollection 2016.
- Huurre A, Kalliomaki M, Rautava S, Rinne M, Salminen S, Isolauri E. Mode of delivery - effects on gut microbiota and humoral immunity. Neonatology. 2008;93(4):236-40. doi: 10.1159/000111102. Epub 2007 Nov 16.
- Mueller NT, Bakacs E, Combellick J, Grigoryan Z, Dominguez-Bello MG. The infant microbiome development: mom matters. Trends Mol Med. 2015 Feb;21(2):109-17. doi: 10.1016/j.molmed.2014.12.002. Epub 2014 Dec 11.
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Réel)
Achèvement primaire (Anticipé)
Achèvement de l'étude (Anticipé)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Réel)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (Réel)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
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Termes liés à cette étude
Termes MeSH pertinents supplémentaires
Autres numéros d'identification d'étude
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