- ICH GCP
- Registro de ensayos clínicos de EE. UU.
- Ensayo clínico NCT04489056
Microbioma en parto prematuro
El microbioma humano en pPROM, parto prematuro y recién nacido: un estudio piloto longitudinal prospectivo
Los objetivos de este estudio piloto longitudinal prospectivo de casos y controles son (1) caracterizar los cambios del microbioma vaginal, uterino y placentario en mujeres embarazadas que experimentan RPMp con hospitalización inmediata y cesárea consecutiva en pretérmino, en comparación con partos a término sin incidentes con cesárea electiva, así como (2) para evaluar la influencia de la madre en el microbioma neonatal y el resultado neonatal temprano en casos de pPROM prematuros, en comparación con nacimientos a término sin incidentes.
El primer objetivo se logrará recolectando hisopos vaginales y rectales para el análisis del microbioma en mujeres que experimentan RPMp, seguido de hisopos uterinos y placentarios que se recolectan durante la cesárea. Las muestras de control se recolectarán en los mismos puntos de tiempo de mujeres que se someten a una cesárea electiva a término. El segundo objetivo se logrará mediante el análisis del microbioma de hisopos rectales, orales/bucales y de piel tomados de recién nacidos prematuros después de pPROM o a término, ambos por cesárea.
Descripción general del estudio
Estado
Condiciones
Intervención / Tratamiento
Descripción detallada
Se incluirán un total de 100 participantes del estudio, asignados a uno de los siguientes grupos:
Grupo de estudio:
• Este grupo constará de 50 mujeres embarazadas, que experimentaron pPROM entre las semanas 22+5 y 28+0 de gestación, ya sea que se presenten en el sitio de estudio primario o sean derivadas de otros hospitales, y tengan un parto prematuro por cesárea.
Grupo de control:
• Este grupo estará compuesto por 50 mujeres embarazadas, que están programadas para cesárea electiva en el departamento de pacientes ambulatorios del sitio de estudio primario, entre 32+0 y 37+0 semanas de gestación, y que dieron a luz a término por cesárea.
Reclutamiento:
El reclutamiento de todos los pacientes se llevará a cabo en la Universidad Médica de Viena, Departamento de Obstetricia y Ginecología. Las mujeres del grupo de estudio serán derivadas de hospitales externos o se presentarán por cualquier motivo en nuestro departamento. La verificación de pPROM se realizará mediante examen con espéculo y detección de acumulación de líquido amniótico. En caso de resultados poco claros, se realizará una prueba enzimática (p. ej., Amnisure®, QUIAGEN Sciences, LLC; Germantown, MD 20874, EE. UU.). Luego de la verificación de la pPROM, se ofrecerá participar en el estudio a las mujeres que cumplan con los criterios de inclusión. Aquellas que experimenten un parto vaginal espontáneo en lugar de una cesárea por cualquier motivo, serán consideradas como desertoras. Las mujeres en el grupo de control serán reclutadas durante su presentación de rutina para una cesárea electiva (por cualquier motivo que no cumpla con los criterios de exclusión del estudio) que se programará a término. Aquellas que presenten parto pretérmino a pesar de estar programadas para cesárea electiva a término, serán consideradas como desertoras. Durante su consulta en el departamento de pacientes externos, a estas mujeres se les ofrecerá participar en el estudio.
Muestreo:
Todos los hisopos se recolectarán de los subinvestigadores de este estudio utilizando un procedimiento estandarizado. Para la anonimización, solo se marcarán en los tubos de hisopos el punto de recogida, la ubicación y la sala. Después del consentimiento informado, se recolectarán hisopos vaginales durante el examen con espéculo de la pared vaginal lateral y del fórnix vaginal posterior utilizando un hisopo de algodón estéril combinado con un cepillo epitelial. Se recolectará un hisopo rectal mediante la inserción de un hisopo estéril en el esfínter anal. Se recolectarán hisopos intraoperatorios de la placenta y la cavidad uterina durante la cesárea en condiciones estériles. Los hisopos neonatales (mucosa bucal y piel) se recolectarán directamente después del parto y en el período neonatal. Las muestras de heces se tomarán del meconio, definido como primera deposición del lactante y deposición del recién nacido en el período neonatal. Todas las muestras se almacenarán inmediatamente a -80 °C después de la recolección. El cepillo epitelial se colocará en la solución de estabilización de ARN RNAlater® y se almacenará a -80 °C.
Análisis de microbioma:
El análisis del microbioma se realizará en el Joint Microbiome Facility (JMF) de la Universidad Médica de Viena y la Universidad de Viena. Las pruebas serán realizadas por sub-investigadores en el JMF. La composición de la comunidad microbiana en las muestras de hisopos de heces recolectadas se determinará mediante la secuenciación del amplicón del gen 16S rRNA. Brevemente, el ADN se extraerá con el QIAamp Microbiome Kit o el QIAamp DNA Mini Kit (para muestras de hisopos y heces, respectivamente), seguido de la amplificación del gen 16S rRNA y el código de barras como se describió anteriormente. Muestras de amplicón multiplexadas secuenciadas en la plataforma Illumina MiSeq en el JMF. Los controles negativos realizados durante la extracción de ADN y la amplificación del gen 16S rRNA se incluyen de forma rutinaria en el flujo de trabajo de procesamiento de muestras. Los datos de secuencia obtenidos se filtrarán por calidad y se demultiplexarán, seguidos de la inferencia de la variante de secuenciación de amplicón (ASV) con DADA2,16 que permite el análisis con la resolución taxonómica más alta posible. Las secuencias de ASV resultantes se clasificarán taxonómicamente utilizando SINA con la versión más reciente de la base de datos de ARNr de SILVA SSU. Si es necesario, los contaminantes se eliminarán in silico utilizando el paquete de software de descontaminación.
Datos perinatales:
Además del muestreo y análisis de hisopos, se recopilarán los siguientes parámetros perinatales utilizando la base de datos fetal de PIA, versión 5.6.16.917 (GE Viewpoint, Múnich, Alemania): edad materna [número], paridad [número], educación terciaria [sí /no], origen étnico [categoría], estado civil [categoría], índice de masa corporal [número], abuso de nicotina [sí/no], antecedentes de pPROM [sí/no], antecedentes de PTB [sí/no], enfermedades preexistentes [categoría], detección de infección vaginal [sí/no], insuficiencia cervical [sí/no], preeclampsia [sí/no], sangrado [sí/no], profilaxis prenatal con esteroides [sí/no], tratamiento antibiótico en curso [sí/ no], tocólisis [sí/no], profilaxis con magnesio [sí/no], semana gestacional al parto [número], peso al nacer [número], puntuación de Apgar a los 1/5/10 minutos [número], pH arterial del cordón umbilical [número ], traslado a unidad de cuidados intensivos neonatales [sí/no].
Tipo de estudio
Inscripción (Anticipado)
Contactos y Ubicaciones
Estudio Contacto
- Nombre: Philipp Foessleitner, MD BSc
- Número de teléfono: +4314040028190
- Correo electrónico: philipp.foessleitner@meduniwien.ac.at
Copia de seguridad de contactos de estudio
- Nombre: Nikolaus Keil, MD
- Número de teléfono: +4314040028190
- Correo electrónico: nikolaus.keil@gmail.com
Ubicaciones de estudio
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-
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Vienna, Austria, 1090
- Reclutamiento
- Medical University of Vienna, Dept. of Obstetrics and Gynecology
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Contacto:
- Philipp Foessleitner, MD BSc
- Número de teléfono: 28220 +43140400
- Correo electrónico: philipp.foessleitner@muv.ac.at
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Contacto:
- Alex Farr, MD PhD
- Número de teléfono: 28220 +43140400
- Correo electrónico: alex.farr@muv.ac.at
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Criterios de participación
Criterio de elegibilidad
Edades elegibles para estudiar
- Niño
- Adulto
- Adulto Mayor
Acepta Voluntarios Saludables
Géneros elegibles para el estudio
Método de muestreo
Población de estudio
Se incluirán un total de 100 participantes del estudio, que cumplan con todos los criterios de inclusión y no exclusión, asignados a uno de los siguientes grupos:
Grupo de estudio:
• Este grupo constará de 50 mujeres embarazadas, que experimentaron pPROM entre las semanas 22+5 y 28+0 de gestación, ya sea que se presenten en el sitio de estudio primario o sean derivadas de otros hospitales, y tengan un parto prematuro por cesárea.
Grupo de control:
• Este grupo estará compuesto por 50 mujeres embarazadas, que están programadas para cesárea electiva en el departamento de pacientes ambulatorios del sitio de estudio primario, entre 32+0 y 37+0 semanas de gestación, y que dieron a luz a término por cesárea.
Descripción
Criterios de inclusión:
- Edad materna ≥18 años en el momento de la inscripción en el estudio
- Embarazo único
- Consentimiento informado firmado
- Rotura prematura de membranas pretérmino confirmada (pPROM) o cesárea electiva para parto a término (dependiendo del grupo de estudio)
- Edad gestacional en el momento de la pPROM entre 22+5 y 28+0 semanas o ≥37+0 semanas de gestación en el momento de la cesárea a término (dependiendo del grupo de estudio)
Criterio de exclusión:
- Edad materna
- Embarazo múltiple
- Incapacidad para dar su consentimiento a la participación en el estudio.
- Tratamiento con antibióticos en curso o tratamiento con antibióticos ≤2 semanas antes de la inscripción en el estudio
- Relaciones sexuales vaginales dentro de las 48 horas anteriores a la inscripción en el estudio
- Sangrado vaginal fresco dentro de las 48 horas anteriores a la inscripción en el estudio
- Infección materna por hepatitis B o hepatitis C (es decir, positivo en PCR)
- Infección materna por VIH (es decir, positivo en PCR)
- Diabetes mellitus materna o diabetes gestacional
Plan de estudios
¿Cómo está diseñado el estudio?
Detalles de diseño
- Modelos observacionales: Control de caso
- Perspectivas temporales: Futuro
Cohortes e Intervenciones
Grupo / Cohorte |
Intervención / Tratamiento |
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Grupo de estudio
Este grupo constará de 50 mujeres embarazadas, que experimentaron pPROM entre las semanas 22+5 y 28+0 de gestación, ya sea que se presenten en el sitio de estudio primario o que sean derivadas de otros hospitales, y que hayan tenido un parto prematuro por cesárea.
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Después del consentimiento informado, se recolectarán hisopos vaginales durante el examen con espéculo de la pared vaginal lateral y del fórnix vaginal posterior utilizando un hisopo de algodón estéril combinado con un cepillo epitelial.
Se recolectará un hisopo rectal mediante la inserción de un hisopo estéril en el esfínter anal.
Se recolectarán hisopos intraoperatorios de la placenta y la cavidad uterina durante la cesárea en condiciones estériles.
Los hisopos neonatales (mucosa bucal y piel) se recolectarán directamente después del parto y en el período neonatal.
Las muestras de heces se tomarán del meconio, definido como primera deposición del lactante y deposición del recién nacido en el período neonatal.
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Grupo de control
Este grupo estará compuesto por 50 mujeres embarazadas, que están programadas para cesárea electiva en el departamento de pacientes externos del sitio primario de estudio, entre 32+0 y 37+0 semanas de gestación, y que dieron a luz a término por cesárea.
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Después del consentimiento informado, se recolectarán hisopos vaginales durante el examen con espéculo de la pared vaginal lateral y del fórnix vaginal posterior utilizando un hisopo de algodón estéril combinado con un cepillo epitelial.
Se recolectará un hisopo rectal mediante la inserción de un hisopo estéril en el esfínter anal.
Se recolectarán hisopos intraoperatorios de la placenta y la cavidad uterina durante la cesárea en condiciones estériles.
Los hisopos neonatales (mucosa bucal y piel) se recolectarán directamente después del parto y en el período neonatal.
Las muestras de heces se tomarán del meconio, definido como primera deposición del lactante y deposición del recién nacido en el período neonatal.
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¿Qué mide el estudio?
Medidas de resultado primarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
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Cambios en el microbioma vaginal después de pPROM en comparación con nacimientos a término
Periodo de tiempo: Hasta julio de 2021
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Se evaluarán las mediciones de abundancia (recuentos) de las variantes de secuencia de amplicón (ASV), así como los recuentos de suma de ASV en niveles taxonómicos más altos, para probar la superposición significativa o las diferencias en la composición de la comunidad microbiana en diferentes grupos de muestras.
Estos parámetros se analizarán dentro de cada uno de los grupos de estudio, incluidos los análisis longitudinales para detectar una diferencia potencial desde el inicio de la RPMp hasta el momento del parto o más tarde (grupo de estudio), o desde el embarazo hasta el momento del parto o más tarde (grupo de control). ).
Además, los ASV y los recuentos de la suma de ASV se compararán entre el grupo de estudio y el de control en puntos de tiempo predeterminados.
Se realizará la detección de variantes de secuencia de amplicón significativamente más abundantes entre los grupos, y se calcularán los valores de P ajustados utilizando el método de Benjamini-Hochberg y las diferencias respaldadas con valores de P.
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Hasta julio de 2021
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Cambios en el microbioma rectal después de pPROM en comparación con los nacimientos a término
Periodo de tiempo: Hasta julio de 2021
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Se evaluarán las mediciones de abundancia (recuentos) de las variantes de secuencia de amplicón (ASV), así como los recuentos de suma de ASV en niveles taxonómicos más altos, para probar la superposición significativa o las diferencias en la composición de la comunidad microbiana en diferentes grupos de muestras.
Estos parámetros se analizarán dentro de cada uno de los grupos de estudio, incluidos los análisis longitudinales para detectar una diferencia potencial desde el inicio de la RPMp hasta el momento del parto o más tarde (grupo de estudio), o desde el embarazo hasta el momento del parto o más tarde (grupo de control). ).
Además, los ASV y los recuentos de la suma de ASV se compararán entre el grupo de estudio y el de control en puntos de tiempo predeterminados.
Se realizará la detección de variantes de secuencia de amplicón significativamente más abundantes entre los grupos, y se calcularán los valores de P ajustados utilizando el método de Benjamini-Hochberg y las diferencias respaldadas con valores de P.
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Hasta julio de 2021
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Cambios en el microbioma placentario después de pPROM en comparación con los nacimientos a término
Periodo de tiempo: Hasta julio de 2021
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Se evaluarán las mediciones de abundancia (recuentos) de las variantes de secuencia de amplicón (ASV), así como los recuentos de suma de ASV en niveles taxonómicos más altos, para probar la superposición significativa o las diferencias en la composición de la comunidad microbiana en diferentes grupos de muestras.
Estos parámetros se analizarán dentro de cada uno de los grupos de estudio, incluidos los análisis longitudinales para detectar una diferencia potencial desde el inicio de la RPMp hasta el momento del parto o más tarde (grupo de estudio), o desde el embarazo hasta el momento del parto o más tarde (grupo de control). ).
Además, los ASV y los recuentos de la suma de ASV se compararán entre el grupo de estudio y el de control en puntos de tiempo predeterminados.
Se realizará la detección de variantes de secuencia de amplicón significativamente más abundantes entre los grupos, y se calcularán los valores de P ajustados utilizando el método de Benjamini-Hochberg y las diferencias respaldadas con valores de P.
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Hasta julio de 2021
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Cambios del microbioma uterino después de pPROM en comparación con nacimientos a término
Periodo de tiempo: Hasta julio de 2021
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Se evaluarán las mediciones de abundancia (recuentos) de las variantes de secuencia de amplicón (ASV), así como los recuentos de suma de ASV en niveles taxonómicos más altos, para probar la superposición significativa o las diferencias en la composición de la comunidad microbiana en diferentes grupos de muestras.
Estos parámetros se analizarán dentro de cada uno de los grupos de estudio, incluidos los análisis longitudinales para detectar una diferencia potencial desde el inicio de la RPMp hasta el momento del parto o más tarde (grupo de estudio), o desde el embarazo hasta el momento del parto o más tarde (grupo de control). ).
Además, los ASV y los recuentos de la suma de ASV se compararán entre el grupo de estudio y el de control en puntos de tiempo predeterminados.
Se realizará la detección de variantes de secuencia de amplicón significativamente más abundantes entre los grupos, y se calcularán los valores de P ajustados utilizando el método de Benjamini-Hochberg y las diferencias respaldadas con valores de P.
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Hasta julio de 2021
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Cambios en el microbioma neonatal de los recién nacidos después de la pPROM en comparación con los recién nacidos que tuvieron un parto a término
Periodo de tiempo: Hasta julio de 2021
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Se evaluarán las mediciones de abundancia (recuentos) de las variantes de secuencia de amplicón (ASV), así como los recuentos de suma de ASV en niveles taxonómicos más altos, para probar la superposición significativa o las diferencias en la composición de la comunidad microbiana en diferentes grupos de muestras.
Estos parámetros se analizarán dentro de cada uno de los grupos de estudio, incluidos los análisis longitudinales para detectar una diferencia potencial desde el inicio de la RPMp hasta el momento del parto o más tarde (grupo de estudio), o desde el embarazo hasta el momento del parto o más tarde (grupo de control). ).
Además, los ASV y los recuentos de la suma de ASV se compararán entre el grupo de estudio y el de control en puntos de tiempo predeterminados.
Se realizará la detección de variantes de secuencia de amplicón significativamente más abundantes entre los grupos, y se calcularán los valores de P ajustados utilizando el método de Benjamini-Hochberg y las diferencias respaldadas con valores de P.
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Hasta julio de 2021
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Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Colaboradores
Investigadores
- Investigador principal: Alex Farr, MD PhD, Medical University of Vienna
- Silla de estudio: Herbert Kiss, MD MBA, Medical University of Vienna
- Silla de estudio: Angelika Berger, MD MBA, Medical University of Vienna
Publicaciones y enlaces útiles
Publicaciones Generales
- Human Microbiome Project Consortium. Structure, function and diversity of the healthy human microbiome. Nature. 2012 Jun 13;486(7402):207-14. doi: 10.1038/nature11234.
- Jovel J, Patterson J, Wang W, Hotte N, O'Keefe S, Mitchel T, Perry T, Kao D, Mason AL, Madsen KL, Wong GK. Characterization of the Gut Microbiome Using 16S or Shotgun Metagenomics. Front Microbiol. 2016 Apr 20;7:459. doi: 10.3389/fmicb.2016.00459. eCollection 2016.
- Dominguez-Bello MG, Costello EK, Contreras M, Magris M, Hidalgo G, Fierer N, Knight R. Delivery mode shapes the acquisition and structure of the initial microbiota across multiple body habitats in newborns. Proc Natl Acad Sci U S A. 2010 Jun 29;107(26):11971-5. doi: 10.1073/pnas.1002601107. Epub 2010 Jun 21.
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- Chu DM, Ma J, Prince AL, Antony KM, Seferovic MD, Aagaard KM. Maturation of the infant microbiome community structure and function across multiple body sites and in relation to mode of delivery. Nat Med. 2017 Mar;23(3):314-326. doi: 10.1038/nm.4272. Epub 2017 Jan 23.
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- Gosmann C, Anahtar MN, Handley SA, Farcasanu M, Abu-Ali G, Bowman BA, Padavattan N, Desai C, Droit L, Moodley A, Dong M, Chen Y, Ismail N, Ndung'u T, Ghebremichael MS, Wesemann DR, Mitchell C, Dong KL, Huttenhower C, Walker BD, Virgin HW, Kwon DS. Lactobacillus-Deficient Cervicovaginal Bacterial Communities Are Associated with Increased HIV Acquisition in Young South African Women. Immunity. 2017 Jan 17;46(1):29-37. doi: 10.1016/j.immuni.2016.12.013. Epub 2017 Jan 10.
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- Callahan BJ, DiGiulio DB, Goltsman DSA, Sun CL, Costello EK, Jeganathan P, Biggio JR, Wong RJ, Druzin ML, Shaw GM, Stevenson DK, Holmes SP, Relman DA. Replication and refinement of a vaginal microbial signature of preterm birth in two racially distinct cohorts of US women. Proc Natl Acad Sci U S A. 2017 Sep 12;114(37):9966-9971. doi: 10.1073/pnas.1705899114. Epub 2017 Aug 28.
- Brown RG, Al-Memar M, Marchesi JR, Lee YS, Smith A, Chan D, Lewis H, Kindinger L, Terzidou V, Bourne T, Bennett PR, MacIntyre DA. Establishment of vaginal microbiota composition in early pregnancy and its association with subsequent preterm prelabor rupture of the fetal membranes. Transl Res. 2019 May;207:30-43. doi: 10.1016/j.trsl.2018.12.005. Epub 2018 Dec 27.
- Stout MJ, Zhou Y, Wylie KM, Tarr PI, Macones GA, Tuuli MG. Early pregnancy vaginal microbiome trends and preterm birth. Am J Obstet Gynecol. 2017 Sep;217(3):356.e1-356.e18. doi: 10.1016/j.ajog.2017.05.030. Epub 2017 May 23.
- Thorsen J, Brejnrod A, Mortensen M, Rasmussen MA, Stokholm J, Al-Soud WA, Sorensen S, Bisgaard H, Waage J. Large-scale benchmarking reveals false discoveries and count transformation sensitivity in 16S rRNA gene amplicon data analysis methods used in microbiome studies. Microbiome. 2016 Nov 25;4(1):62. doi: 10.1186/s40168-016-0208-8.
- Davis NM, Proctor DM, Holmes SP, Relman DA, Callahan BJ. Simple statistical identification and removal of contaminant sequences in marker-gene and metagenomics data. Microbiome. 2018 Dec 17;6(1):226. doi: 10.1186/s40168-018-0605-2.
- Pruesse E, Peplies J, Glockner FO. SINA: accurate high-throughput multiple sequence alignment of ribosomal RNA genes. Bioinformatics. 2012 Jul 15;28(14):1823-9. doi: 10.1093/bioinformatics/bts252. Epub 2012 May 3.
- Quast C, Pruesse E, Yilmaz P, Gerken J, Schweer T, Yarza P, Peplies J, Glockner FO. The SILVA ribosomal RNA gene database project: improved data processing and web-based tools. Nucleic Acids Res. 2013 Jan;41(Database issue):D590-6. doi: 10.1093/nar/gks1219. Epub 2012 Nov 28.
- Callahan BJ, McMurdie PJ, Rosen MJ, Han AW, Johnson AJ, Holmes SP. DADA2: High-resolution sample inference from Illumina amplicon data. Nat Methods. 2016 Jul;13(7):581-3. doi: 10.1038/nmeth.3869. Epub 2016 May 23.
- Herbold CW, Pelikan C, Kuzyk O, Hausmann B, Angel R, Berry D, Loy A. Corrigendum: A flexible and economical barcoding approach for highly multiplexed amplicon sequencing of diverse target genes. Front Microbiol. 2016 Jun 6;7:870. doi: 10.3389/fmicb.2016.00870. eCollection 2016.
- Huurre A, Kalliomaki M, Rautava S, Rinne M, Salminen S, Isolauri E. Mode of delivery - effects on gut microbiota and humoral immunity. Neonatology. 2008;93(4):236-40. doi: 10.1159/000111102. Epub 2007 Nov 16.
- Mueller NT, Bakacs E, Combellick J, Grigoryan Z, Dominguez-Bello MG. The infant microbiome development: mom matters. Trends Mol Med. 2015 Feb;21(2):109-17. doi: 10.1016/j.molmed.2014.12.002. Epub 2014 Dec 11.
Fechas de registro del estudio
Fechas importantes del estudio
Inicio del estudio (Actual)
Finalización primaria (Anticipado)
Finalización del estudio (Anticipado)
Fechas de registro del estudio
Enviado por primera vez
Primero enviado que cumplió con los criterios de control de calidad
Publicado por primera vez (Actual)
Actualizaciones de registros de estudio
Última actualización publicada (Actual)
Última actualización enviada que cumplió con los criterios de control de calidad
Última verificación
Más información
Términos relacionados con este estudio
Palabras clave
Términos MeSH relevantes adicionales
Otros números de identificación del estudio
- 1668/2020
Plan de datos de participantes individuales (IPD)
¿Planea compartir datos de participantes individuales (IPD)?
Descripción del plan IPD
Información sobre medicamentos y dispositivos, documentos del estudio
Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.
Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.
Esta información se obtuvo directamente del sitio web clinicaltrials.gov sin cambios. Si tiene alguna solicitud para cambiar, eliminar o actualizar los detalles de su estudio, comuníquese con register@clinicaltrials.gov. Tan pronto como se implemente un cambio en clinicaltrials.gov, también se actualizará automáticamente en nuestro sitio web. .
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