- ICH GCP
- Registro degli studi clinici negli Stati Uniti
- Sperimentazione clinica NCT04489056
Microbioma nella nascita pretermine
Il microbioma umano in pPROM, la nascita pretermine e il neonato: uno studio pilota prospettico longitudinale
Gli obiettivi di questo studio pilota prospettico longitudinale caso-controllo sono (1) caratterizzare i cambiamenti del microbioma vaginale, uterino e placentare nelle donne in gravidanza che presentano pPROM con ricovero immediato e taglio cesareo consecutivo a pretermine, rispetto alle nascite a termine senza incidenti con taglio cesareo elettivo, nonché (2) per valutare l'influenza della madre sul microbioma neonatale e l'esito neonatale precoce nei casi pretermine pPROM, rispetto alle nascite a termine senza incidenti.
Il primo obiettivo sarà raggiunto raccogliendo tamponi vaginali e rettali per l'analisi del microbioma nelle donne che soffrono di pPROM, seguiti da tamponi uterini e placentari raccolti durante il taglio cesareo. I campioni di controllo saranno raccolti negli stessi punti temporali da donne sottoposte a taglio cesareo elettivo a termine. Il secondo obiettivo sarà raggiunto mediante l'analisi del microbioma di tamponi rettali, orali/buccali e cutanei prelevati da neonati nati pretermine dopo pPROM, oa termine, entrambi con taglio cesareo.
Panoramica dello studio
Stato
Condizioni
Intervento / Trattamento
Descrizione dettagliata
Saranno inclusi un totale di 100 partecipanti allo studio, assegnati a uno dei seguenti gruppi:
Gruppo di studio:
• Questo gruppo sarà composto da 50 donne incinte, che hanno manifestato pPROM tra 22+5 e 28+0 settimane gestazionali, che si sono presentate presso il sito dello studio primario o che sono state indirizzate da altri ospedali e partorite prematuramente con taglio cesareo.
Gruppo di controllo:
• Questo gruppo sarà composto da 50 donne in gravidanza, che sono programmate per taglio cesareo elettivo presso il reparto ambulatoriale del sito di studio primario, tra 32+0 e 37+0 settimane gestazionali, e partorite a termine con taglio cesareo.
Reclutamento:
Il reclutamento di tutti i pazienti avverrà presso l'Università di Medicina di Vienna, Dipartimento di Ostetricia e Ginecologia. Le donne nel gruppo di studio verranno indirizzate da ospedali esterni o si presenteranno per qualsiasi motivo presso il nostro dipartimento. La verifica della pPROM sarà eseguita mediante esame speculum e rilevazione di pool di liquido amniotico. In caso di risultati poco chiari, verrà condotto un test enzimatico (ad esempio, Amnisure®, QUIAGEN Sciences, LLC; Germantown, MD 20874, USA). Dopo la verifica pPROM, alle donne che soddisfano i criteri di inclusione verrà offerto di partecipare allo studio. Coloro che sperimentano un parto vaginale spontaneo invece di un taglio cesareo per qualsiasi motivo, saranno considerati drop-out. Le donne nel gruppo di controllo verranno reclutate durante la loro presentazione di routine per taglio cesareo elettivo (per qualsiasi motivo che non soddisfi i criteri di esclusione dello studio) che sarà programmato a termine. Coloro che subiscono un parto pretermine pur essendo programmati per un cesareo elettivo a termine, saranno considerati drop-out. Durante la loro consultazione presso il reparto ambulatoriale, a queste donne verrà offerto di partecipare allo studio.
Campionamento:
Tutti i tamponi saranno raccolti dai sub-ricercatori di questo studio utilizzando una procedura standardizzata. Per l'anonimizzazione, sulle provette dei tamponi verranno contrassegnati solo il punto di raccolta, il luogo e il reparto. Dopo il consenso informato, i tamponi vaginali verranno raccolti durante l'esame speculum dalla parete vaginale laterale e dal fornice vaginale posteriore utilizzando un batuffolo di cotone sterile combinato con uno spazzolino epiteliale. Verrà raccolto un tampone rettale inserendo un tampone sterile nello sfintere anale. I tamponi intraoperatori della placenta e della cavità uterina saranno raccolti durante il taglio cesareo in condizioni sterili. I tamponi neonatali (mucosa buccale e cute) verranno raccolti subito dopo il parto e nel periodo neonatale. I campioni di feci saranno prelevati dal meconio, definito come prima feci del lattante e come feci del neonato nel periodo neonatale. Tutti i campioni verranno immediatamente conservati a -80°C dopo la raccolta. Il pennello epiteliale verrà inserito nella soluzione di stabilizzazione dell'RNA RNAlater® e conservato a -80°C.
Analisi del microbioma:
L'analisi del microbioma sarà eseguita presso la Joint Microbiome Facility (JMF) dell'Università di medicina di Vienna e dell'Università di Vienna. I test saranno eseguiti da sub-ricercatori presso il JMF. La composizione della comunità microbica nei campioni di tampone fecale raccolti sarà determinata mediante sequenziamento dell'amplicone del gene 16S rRNA. In breve, il DNA verrà estratto con il kit QIAamp Microbiome o il kit QIAamp DNA Mini (rispettivamente per campioni di tampone e feci), seguito dall'amplificazione del gene 16S rRNA e dal codice a barre come descritto in precedenza. Campioni di ampliconi multiplexati sequenziati sulla piattaforma Illumina MiSeq presso il JMF. I controlli negativi eseguiti durante l'estrazione del DNA e l'amplificazione del gene 16S rRNA sono regolarmente inclusi nel flusso di lavoro dell'elaborazione del campione. I dati di sequenza ottenuti saranno filtrati per la qualità e demultiplati, seguiti dall'inferenza della variante di sequenziamento dell'amplicone (ASV) con DADA2,16 consentendo l'analisi alla massima risoluzione tassonomica possibile. Le risultanti sequenze di ASV saranno classificate tassonomicamente utilizzando SINA con l'ultima versione del database SILVA SSU rRNA. Se necessario, i contaminanti verranno rimossi in silico utilizzando il pacchetto software decontam.
Dati perinatali:
Oltre al campionamento e all'analisi del tampone, verranno raccolti i seguenti parametri perinatali, utilizzando il PIA Fetal Database, versione 5.6.16.917 (GE Viewpoint, Monaco, Germania): età materna [numero], parità [numero], istruzione terziaria [sì /no], etnia [categoria], stato sentimentale [categoria], indice di massa corporea [numero], abuso di nicotina [sì/no], storia di pPROM [sì/no], storia di PTB [sì/no], malattie preesistenti [categoria], screening delle infezioni vaginali [sì/no], insufficienza cervicale [sì/no], preeclampsia [sì/no], sanguinamento [sì/no], profilassi steroidea prenatale [sì/no], trattamento antibiotico in corso [sì/ no], tocolisi [sì/no], profilassi con magnesio [sì/no], settimana gestazionale al parto [numero], peso alla nascita [numero], punteggio di Apgar a 1/5/10 minuti [numero], pH arterioso del cordone ombelicale [numero ], trasferimento in terapia intensiva neonatale [sì/no].
Tipo di studio
Iscrizione (Anticipato)
Contatti e Sedi
Luoghi di studio
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Vienna, Austria, 1090
- Reclutamento
- Medical University of Vienna, Dept. of Obstetrics and Gynecology
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Contatto:
- Philipp Foessleitner, MD BSc
- Numero di telefono: 28220 +43140400
- Email: philipp.foessleitner@muv.ac.at
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Contatto:
- Alex Farr, MD PhD
- Numero di telefono: 28220 +43140400
- Email: alex.farr@muv.ac.at
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Criteri di partecipazione
Criteri di ammissibilità
Età idonea allo studio
- Bambino
- Adulto
- Adulto più anziano
Accetta volontari sani
Sessi ammissibili allo studio
Metodo di campionamento
Popolazione di studio
Verranno inclusi un totale di 100 partecipanti allo studio, che soddisfano tutti i criteri di inclusione e non esclusione, assegnati a uno dei seguenti gruppi:
Gruppo di studio:
• Questo gruppo sarà composto da 50 donne incinte, che hanno manifestato pPROM tra 22+5 e 28+0 settimane gestazionali, che si sono presentate presso il sito dello studio primario o che sono state indirizzate da altri ospedali e partorite prematuramente con taglio cesareo.
Gruppo di controllo:
• Questo gruppo sarà composto da 50 donne in gravidanza, che sono programmate per taglio cesareo elettivo presso il reparto ambulatoriale del sito di studio primario, tra 32+0 e 37+0 settimane gestazionali, e partorite a termine con taglio cesareo.
Descrizione
Criterio di inclusione:
- Età materna ≥18 anni al momento dell'iscrizione allo studio
- Gravidanza singola
- Consenso informato firmato
- Rottura prematura pretermine confermata delle membrane (pPROM) o taglio cesareo elettivo per parto a termine (a seconda del gruppo di studio)
- Età gestazionale al momento della pPROM tra 22+5 e 28+0 settimane o ≥37+0 settimane gestazionali al momento del parto cesareo (a seconda del gruppo di studio)
Criteri di esclusione:
- Età materna
- Gravidanza multipla
- Impossibilità di acconsentire alla partecipazione allo studio
- Trattamento antibiotico in corso o trattamento antibiotico ≤2 settimane prima dell'arruolamento nello studio
- Rapporti sessuali vaginali entro 48 ore prima dell'iscrizione allo studio
- Sanguinamento vaginale fresco entro 48 ore prima dell'arruolamento nello studio
- Infezione materna da epatite B o epatite C (ossia, positiva alla PCR)
- Infezione materna da HIV (cioè positiva alla PCR)
- Diabete mellito materno o diabete gestazionale
Piano di studio
Come è strutturato lo studio?
Dettagli di progettazione
- Modelli osservazionali: Caso di controllo
- Prospettive temporali: Prospettiva
Coorti e interventi
Gruppo / Coorte |
Intervento / Trattamento |
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Gruppo di studio
Questo gruppo sarà composto da 50 donne incinte, che hanno sperimentato pPROM tra 22 + 5 e 28 + 0 settimane gestazionali, che si sono presentate presso il sito di studio primario o sono state indirizzate da altri ospedali e partorite prematuramente con taglio cesareo.
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Dopo il consenso informato, i tamponi vaginali verranno raccolti durante l'esame speculum dalla parete vaginale laterale e dal fornice vaginale posteriore utilizzando un batuffolo di cotone sterile combinato con uno spazzolino epiteliale.
Verrà raccolto un tampone rettale inserendo un tampone sterile nello sfintere anale.
I tamponi intraoperatori della placenta e della cavità uterina saranno raccolti durante il taglio cesareo in condizioni sterili.
I tamponi neonatali (mucosa buccale e cute) verranno raccolti subito dopo il parto e nel periodo neonatale.
I campioni di feci saranno prelevati dal meconio, definito come prima feci del lattante e come feci del neonato nel periodo neonatale.
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Gruppo di controllo
Questo gruppo sarà composto da 50 donne incinte, che sono programmate per taglio cesareo elettivo presso il reparto ambulatoriale del sito di studio primario, tra 32+0 e 37+0 settimane gestazionali, e partorite a termine con taglio cesareo.
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Dopo il consenso informato, i tamponi vaginali verranno raccolti durante l'esame speculum dalla parete vaginale laterale e dal fornice vaginale posteriore utilizzando un batuffolo di cotone sterile combinato con uno spazzolino epiteliale.
Verrà raccolto un tampone rettale inserendo un tampone sterile nello sfintere anale.
I tamponi intraoperatori della placenta e della cavità uterina saranno raccolti durante il taglio cesareo in condizioni sterili.
I tamponi neonatali (mucosa buccale e cute) verranno raccolti subito dopo il parto e nel periodo neonatale.
I campioni di feci saranno prelevati dal meconio, definito come prima feci del lattante e come feci del neonato nel periodo neonatale.
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Cosa sta misurando lo studio?
Misure di risultato primarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
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Cambiamenti del microbioma vaginale dopo pPROM rispetto alle nascite a termine
Lasso di tempo: Fino a luglio 2021
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Saranno valutate le misurazioni dell'abbondanza (conteggio) delle varianti di sequenza dell'amplicone (ASV), così come i conteggi della somma degli ASV a livelli tassonomici più elevati, per testare sovrapposizioni o differenze significative nella composizione della comunità microbica in diversi gruppi di campioni.
Questi parametri saranno analizzati all'interno di ciascuno dei gruppi di studio, comprese analisi longitudinali per rilevare una potenziale differenza dall'inizio della pPROM al momento del parto o successivo (gruppo di studio), o dalla gravidanza al momento del parto o successivo (gruppo di controllo ).
Inoltre, i conteggi della somma di ASV e ASV verranno confrontati tra lo studio e il gruppo di controllo in punti temporali predeterminati.
Verrà eseguita la rilevazione di varianti di sequenza dell'amplicone significativamente più abbondanti tra i gruppi e i valori P aggiustati saranno calcolati utilizzando il metodo Benjamini-Hochberg e le differenze supportate con i valori P
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Fino a luglio 2021
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Cambiamenti del microbioma rettale dopo pPROM rispetto alle nascite a termine
Lasso di tempo: Fino a luglio 2021
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Saranno valutate le misurazioni dell'abbondanza (conteggio) delle varianti di sequenza dell'amplicone (ASV), così come i conteggi della somma degli ASV a livelli tassonomici più elevati, per testare sovrapposizioni o differenze significative nella composizione della comunità microbica in diversi gruppi di campioni.
Questi parametri saranno analizzati all'interno di ciascuno dei gruppi di studio, comprese analisi longitudinali per rilevare una potenziale differenza dall'inizio della pPROM al momento del parto o successivo (gruppo di studio), o dalla gravidanza al momento del parto o successivo (gruppo di controllo ).
Inoltre, i conteggi della somma di ASV e ASV verranno confrontati tra lo studio e il gruppo di controllo in punti temporali predeterminati.
Verrà eseguita la rilevazione di varianti di sequenza dell'amplicone significativamente più abbondanti tra i gruppi e i valori P aggiustati saranno calcolati utilizzando il metodo Benjamini-Hochberg e le differenze supportate con i valori P
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Fino a luglio 2021
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Cambiamenti del microbioma placentare dopo pPROM rispetto alle nascite a termine
Lasso di tempo: Fino a luglio 2021
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Saranno valutate le misurazioni dell'abbondanza (conteggio) delle varianti di sequenza dell'amplicone (ASV), così come i conteggi della somma degli ASV a livelli tassonomici più elevati, per testare sovrapposizioni o differenze significative nella composizione della comunità microbica in diversi gruppi di campioni.
Questi parametri saranno analizzati all'interno di ciascuno dei gruppi di studio, comprese analisi longitudinali per rilevare una potenziale differenza dall'inizio della pPROM al momento del parto o successivo (gruppo di studio), o dalla gravidanza al momento del parto o successivo (gruppo di controllo ).
Inoltre, i conteggi della somma di ASV e ASV verranno confrontati tra lo studio e il gruppo di controllo in punti temporali predeterminati.
Verrà eseguita la rilevazione di varianti di sequenza dell'amplicone significativamente più abbondanti tra i gruppi e i valori P aggiustati saranno calcolati utilizzando il metodo Benjamini-Hochberg e le differenze supportate con i valori P
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Fino a luglio 2021
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Cambiamenti del microbioma uterino dopo pPROM rispetto alle nascite a termine
Lasso di tempo: Fino a luglio 2021
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Saranno valutate le misurazioni dell'abbondanza (conteggio) delle varianti di sequenza dell'amplicone (ASV), così come i conteggi della somma degli ASV a livelli tassonomici più elevati, per testare sovrapposizioni o differenze significative nella composizione della comunità microbica in diversi gruppi di campioni.
Questi parametri saranno analizzati all'interno di ciascuno dei gruppi di studio, comprese analisi longitudinali per rilevare una potenziale differenza dall'inizio della pPROM al momento del parto o successivo (gruppo di studio), o dalla gravidanza al momento del parto o successivo (gruppo di controllo ).
Inoltre, i conteggi della somma di ASV e ASV verranno confrontati tra lo studio e il gruppo di controllo in punti temporali predeterminati.
Verrà eseguita la rilevazione di varianti di sequenza dell'amplicone significativamente più abbondanti tra i gruppi e i valori P aggiustati saranno calcolati utilizzando il metodo Benjamini-Hochberg e le differenze supportate con i valori P
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Fino a luglio 2021
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Cambiamenti del microbioma neonatale dei neonati nati dopo pPROM rispetto ai neonati che hanno avuto un parto a termine
Lasso di tempo: Fino a luglio 2021
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Saranno valutate le misurazioni dell'abbondanza (conteggio) delle varianti di sequenza dell'amplicone (ASV), così come i conteggi della somma degli ASV a livelli tassonomici più elevati, per testare sovrapposizioni o differenze significative nella composizione della comunità microbica in diversi gruppi di campioni.
Questi parametri saranno analizzati all'interno di ciascuno dei gruppi di studio, comprese analisi longitudinali per rilevare una potenziale differenza dall'inizio della pPROM al momento del parto o successivo (gruppo di studio), o dalla gravidanza al momento del parto o successivo (gruppo di controllo ).
Inoltre, i conteggi della somma di ASV e ASV verranno confrontati tra lo studio e il gruppo di controllo in punti temporali predeterminati.
Verrà eseguita la rilevazione di varianti di sequenza dell'amplicone significativamente più abbondanti tra i gruppi e i valori P aggiustati saranno calcolati utilizzando il metodo Benjamini-Hochberg e le differenze supportate con i valori P
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Fino a luglio 2021
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Collaboratori e investigatori
Sponsor
Collaboratori
Investigatori
- Investigatore principale: Alex Farr, MD PhD, Medical University of Vienna
- Cattedra di studio: Herbert Kiss, MD MBA, Medical University of Vienna
- Cattedra di studio: Angelika Berger, MD MBA, Medical University of Vienna
Pubblicazioni e link utili
Pubblicazioni generali
- Human Microbiome Project Consortium. Structure, function and diversity of the healthy human microbiome. Nature. 2012 Jun 13;486(7402):207-14. doi: 10.1038/nature11234.
- Jovel J, Patterson J, Wang W, Hotte N, O'Keefe S, Mitchel T, Perry T, Kao D, Mason AL, Madsen KL, Wong GK. Characterization of the Gut Microbiome Using 16S or Shotgun Metagenomics. Front Microbiol. 2016 Apr 20;7:459. doi: 10.3389/fmicb.2016.00459. eCollection 2016.
- Dominguez-Bello MG, Costello EK, Contreras M, Magris M, Hidalgo G, Fierer N, Knight R. Delivery mode shapes the acquisition and structure of the initial microbiota across multiple body habitats in newborns. Proc Natl Acad Sci U S A. 2010 Jun 29;107(26):11971-5. doi: 10.1073/pnas.1002601107. Epub 2010 Jun 21.
- Brown RG, Marchesi JR, Lee YS, Smith A, Lehne B, Kindinger LM, Terzidou V, Holmes E, Nicholson JK, Bennett PR, MacIntyre DA. Vaginal dysbiosis increases risk of preterm fetal membrane rupture, neonatal sepsis and is exacerbated by erythromycin. BMC Med. 2018 Jan 24;16(1):9. doi: 10.1186/s12916-017-0999-x.
- Chu DM, Ma J, Prince AL, Antony KM, Seferovic MD, Aagaard KM. Maturation of the infant microbiome community structure and function across multiple body sites and in relation to mode of delivery. Nat Med. 2017 Mar;23(3):314-326. doi: 10.1038/nm.4272. Epub 2017 Jan 23.
- Chu DM, Seferovic M, Pace RM, Aagaard KM. The microbiome in preterm birth. Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol. 2018 Oct;52:103-113. doi: 10.1016/j.bpobgyn.2018.03.006. Epub 2018 Apr 9.
- Klindworth A, Pruesse E, Schweer T, Peplies J, Quast C, Horn M, Glockner FO. Evaluation of general 16S ribosomal RNA gene PCR primers for classical and next-generation sequencing-based diversity studies. Nucleic Acids Res. 2013 Jan 7;41(1):e1. doi: 10.1093/nar/gks808. Epub 2012 Aug 28.
- Gosmann C, Anahtar MN, Handley SA, Farcasanu M, Abu-Ali G, Bowman BA, Padavattan N, Desai C, Droit L, Moodley A, Dong M, Chen Y, Ismail N, Ndung'u T, Ghebremichael MS, Wesemann DR, Mitchell C, Dong KL, Huttenhower C, Walker BD, Virgin HW, Kwon DS. Lactobacillus-Deficient Cervicovaginal Bacterial Communities Are Associated with Increased HIV Acquisition in Young South African Women. Immunity. 2017 Jan 17;46(1):29-37. doi: 10.1016/j.immuni.2016.12.013. Epub 2017 Jan 10.
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- Callahan BJ, DiGiulio DB, Goltsman DSA, Sun CL, Costello EK, Jeganathan P, Biggio JR, Wong RJ, Druzin ML, Shaw GM, Stevenson DK, Holmes SP, Relman DA. Replication and refinement of a vaginal microbial signature of preterm birth in two racially distinct cohorts of US women. Proc Natl Acad Sci U S A. 2017 Sep 12;114(37):9966-9971. doi: 10.1073/pnas.1705899114. Epub 2017 Aug 28.
- Brown RG, Al-Memar M, Marchesi JR, Lee YS, Smith A, Chan D, Lewis H, Kindinger L, Terzidou V, Bourne T, Bennett PR, MacIntyre DA. Establishment of vaginal microbiota composition in early pregnancy and its association with subsequent preterm prelabor rupture of the fetal membranes. Transl Res. 2019 May;207:30-43. doi: 10.1016/j.trsl.2018.12.005. Epub 2018 Dec 27.
- Stout MJ, Zhou Y, Wylie KM, Tarr PI, Macones GA, Tuuli MG. Early pregnancy vaginal microbiome trends and preterm birth. Am J Obstet Gynecol. 2017 Sep;217(3):356.e1-356.e18. doi: 10.1016/j.ajog.2017.05.030. Epub 2017 May 23.
- Thorsen J, Brejnrod A, Mortensen M, Rasmussen MA, Stokholm J, Al-Soud WA, Sorensen S, Bisgaard H, Waage J. Large-scale benchmarking reveals false discoveries and count transformation sensitivity in 16S rRNA gene amplicon data analysis methods used in microbiome studies. Microbiome. 2016 Nov 25;4(1):62. doi: 10.1186/s40168-016-0208-8.
- Davis NM, Proctor DM, Holmes SP, Relman DA, Callahan BJ. Simple statistical identification and removal of contaminant sequences in marker-gene and metagenomics data. Microbiome. 2018 Dec 17;6(1):226. doi: 10.1186/s40168-018-0605-2.
- Pruesse E, Peplies J, Glockner FO. SINA: accurate high-throughput multiple sequence alignment of ribosomal RNA genes. Bioinformatics. 2012 Jul 15;28(14):1823-9. doi: 10.1093/bioinformatics/bts252. Epub 2012 May 3.
- Quast C, Pruesse E, Yilmaz P, Gerken J, Schweer T, Yarza P, Peplies J, Glockner FO. The SILVA ribosomal RNA gene database project: improved data processing and web-based tools. Nucleic Acids Res. 2013 Jan;41(Database issue):D590-6. doi: 10.1093/nar/gks1219. Epub 2012 Nov 28.
- Callahan BJ, McMurdie PJ, Rosen MJ, Han AW, Johnson AJ, Holmes SP. DADA2: High-resolution sample inference from Illumina amplicon data. Nat Methods. 2016 Jul;13(7):581-3. doi: 10.1038/nmeth.3869. Epub 2016 May 23.
- Herbold CW, Pelikan C, Kuzyk O, Hausmann B, Angel R, Berry D, Loy A. Corrigendum: A flexible and economical barcoding approach for highly multiplexed amplicon sequencing of diverse target genes. Front Microbiol. 2016 Jun 6;7:870. doi: 10.3389/fmicb.2016.00870. eCollection 2016.
- Huurre A, Kalliomaki M, Rautava S, Rinne M, Salminen S, Isolauri E. Mode of delivery - effects on gut microbiota and humoral immunity. Neonatology. 2008;93(4):236-40. doi: 10.1159/000111102. Epub 2007 Nov 16.
- Mueller NT, Bakacs E, Combellick J, Grigoryan Z, Dominguez-Bello MG. The infant microbiome development: mom matters. Trends Mol Med. 2015 Feb;21(2):109-17. doi: 10.1016/j.molmed.2014.12.002. Epub 2014 Dec 11.
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- 1668/2020
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