- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT04707300
Étude évaluant l'innocuité et l'efficacité de l'injection de progéniteur lymphoïde T humain (HTLP) pour accélérer la reconstitution immunitaire après une greffe de sang de cordon ombilical (UCB) chez des patients adultes atteints d'hémopathies malignes (HTLP-ONCO) (HTLP-ONCO)
Une étude de phase I/II évaluant l'innocuité et l'efficacité de l'injection de progéniteur lymphoïde T humain (HTLP) pour accélérer la reconstitution immunitaire après une greffe de sang de cordon ombilical (UCB) chez des patients adultes atteints d'hémopathies malignes
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Intervention / Traitement
Description détaillée
La greffe allogénique de moelle osseuse (AlloSCT) est le traitement de choix des leucémies myéloïdes aiguës à haut risque en première rémission complète après traitement d'induction et des autres hémopathies malignes à haut risque. Les greffes de sang de cordon ombilical sont fréquemment utilisées chez les patients en l'absence d'un donneur familial compatible HLA (Matched-sibling donneur, MSD) ainsi qu'en l'absence d'un donneur non apparenté approprié (10/10 MUD). Comme toute HSCT, les transplantations d'UCB sont associées au risque de GVHD aiguë et chronique, d'immunodéficience post-greffe avec un risque accru d'infections ainsi que de rechute. En particulier, le risque d'infection et donc de mortalité sans rechute (NRM) ou de mortalité liée à la transplantation (TRM) est significativement plus élevé dans les transplantations UCB par rapport aux transplantations MSD ou 10/10 MUD. Tous ces risques ont été liés à un retard important dans la reconstitution immunitaire, y compris diverses populations de cellules immunitaires telles que les cellules T CD4 et CD8, Treg, NK, iNKT, pDC et autres.
Les chercheurs font donc l'hypothèse que si l'immunité médiée par les lymphocytes T était rapidement générée après une greffe d'UCB partiellement compatible HLA, cela réduirait le risque d'infection et empêcherait les rechutes sans augmenter le risque de GVHD.
Type d'étude
Inscription (Estimé)
Phase
- Phase 2
- La phase 1
Contacts et emplacements
Coordonnées de l'étude
- Nom: Olivier HERMINE, PhD & MD
- Numéro de téléphone: +33 144495282
- E-mail: olivier.hermine@aphp.fr
Sauvegarde des contacts de l'étude
- Nom: Nelly Briand, PhD
- Numéro de téléphone: +33 01 44 38 18 62
- E-mail: nelly.briand@aphp.fr
Lieux d'étude
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Paris, France
- Recrutement
- Hopital Saint Louis
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Contact:
- Nicolas BOISSEL, MD, PhD
- Numéro de téléphone: +33 1 42 49 96 43
- E-mail: nicolas.boissel@aphp.fr
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Pessac, France, 33604
- Recrutement
- Service d'Hématologie et thérapie cellulaire / CHU of Bordeaux
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Contact:
- Edouard FORCADE, PhD & MD
- E-mail: edouard.forcade@chu-bordeaux.fr
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Toulouse, France
- Recrutement
- IUCT Oncopole Toulouse
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Contact:
- Anne HUYNH, PhD, MD
- Numéro de téléphone: 05 31 15 71 91
- E-mail: huynh.anne@iuct-oncopole.fr
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Villejuif, France
- Pas encore de recrutement
- Institut Gustave Roussy
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Contact:
- Jean-Henri BOURHIS, PhD MD
- Numéro de téléphone: +33 1 42 11 53 82
- E-mail: jean-henri.bourhuis@gustaveroussy.fr
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Île-de-France Region
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Paris, Île-de-France Region, France, 75015
- Recrutement
- Hematology department / Necker Children's Hospital
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Contact:
- Olivier HERMINE, PhD & MD
- Numéro de téléphone: +33 144495282
- E-mail: olivier.hermine@aphp.fr
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Contact:
- Felipe SUAREZ, PhD & MD
- E-mail: felipe.suarez@aphp.fr
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Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
Accepte les volontaires sains
La description
Critère d'intégration:
- Patients adultes (≥ 18 ans et < 66 ans) au moment de l'inclusion et éligibles à une allogreffe de cellules souches et aptes à recevoir le régime de conditionnement spécifié
- Patients atteints d'hémopathies malignes
- Absence d'un donneur apparié - apparenté (MSD) ou d'un donneur apparié non apparenté (MUD) 10/10
- Score SORROR compatible avec le conditionnement pré-spécifié et à discuter avec le chercheur principal
- Présence de deux unités UCB avec les critères suivants* : HLA-matched 4/8, 5/8, 6/8, 7/8 or 8/8 for HLA- A, -B, -C and DRB1 loci ET
- Présence d'au moins une unité UCB avec les critères suivants* : ≥ 3 x 10e7 TNC/kg ou ≥ 1,5 10e5 CD34+/kg avant congélation critères, car il a été prouvé que l'expansion pendant la culture HTLP garantit le nombre approprié de CD7+ nécessaires pour chaque dose.
L'UCB non cultivé sera choisi pour avoir une teneur plus élevée en cellules CD34+ afin de permettre une greffe hématopoïétique à long terme
- Pas de traitement par un autre médicament expérimental dans le mois précédant l'inclusion
- Patient affilié à la sécurité sociale
- Consentement écrit et éclairé du patient
- Absence d'anticorps spécifiques du donneur (DSA) avec un MFI > 5000
Critère d'exclusion:
L'une des contre-indications standard à la greffe allogénique
- Fraction d'éjection ventriculaire gauche <50 %
- Résultats biochimiques anormaux (ALT/AST>10xULN, bilirubine totale>2.5xULN, clairance de la créatinine <60 ml/min)
- Incapacité à comprendre et à donner un consentement éclairé
- Maladie infectieuse concomitante : HTLV-I, VIH-I ou VIH-II
- Grossesse ou allaitement pour les femmes en âge de procréer
- Patients atteints d'hémopathies malignes progressives
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Objectif principal: Traitement
- Répartition: N / A
- Modèle interventionnel: Affectation à un seul groupe
- Masquage: Aucun (étiquette ouverte)
Armes et Interventions
Groupe de participants / Bras |
Intervention / Traitement |
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Expérimental: Injection de progéniteur lymphoïde T humain (HTLP)
Produit cellulaire HTLP obtenu après 7 jours de culture de CB immuno-sélectionné
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La suspension cellulaire HTLP sera injectée par voie intraveineuse au moment de l'UCB HSCT à J0
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Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Incidence cumulative de la maladie du greffon contre l'hôte de grade III-IV (GVHD)
Délai: Dans les 100 jours suivant la HSCT
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Selon le système de classement de Glucksberg, pour définir la toxicité
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Dans les 100 jours suivant la HSCT
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Analyse des cellules T CD4 +
Délai: Dans les 100 jours suivant HSCT
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Efficacité définie par la présence de> 50 / μL de cellules T CD4 + CD3 + TCRαβ + à 2 mesures consécutives <dans les 4 mois après la HSCT.
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Dans les 100 jours suivant HSCT
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Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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La survie globale
Délai: 2 années
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2 années
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Survie sans progression
Délai: 2 années
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2 années
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Survie sans maladie
Délai: 2 années
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2 années
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Taux de rechute
Délai: 2 ans
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2 ans
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Dernière transfusion de plaquettes et de globules rouges
Délai: Pendant le suivi
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Pendant le suivi
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Nombre absolu de neutrophiles
Délai: Mois 1, 2, 3, 6 et 12 après la transplantation
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Mois 1, 2, 3, 6 et 12 après la transplantation
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Reconstitution de la cellule NK
Délai: Mois 1, 2, 3, 6 et 12 après la transplantation
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compartiment (CD16+CD56+)
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Mois 1, 2, 3, 6 et 12 après la transplantation
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Taux d’échec/rejet du greffon
Délai: à 3 mois après la HSCT
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détecté par surveillance hématologique de chaque unité UCB
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à 3 mois après la HSCT
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Incidence cumulative des infections
Délai: à 3, 6 et 12 mois après la transplantation
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à 3, 6 et 12 mois après la transplantation
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Évolution temporelle de la reconstitution immunitaire des lymphocytes T
Délai: Mois 1, 2, 3, 6 et 12 après la transplantation
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par immunophénotypage (analyse par cytométrie en flux) - en mettant l'accent sur le temps nécessaire pour dépasser un nombre de 100 CD4+ naïfs et > 100 cellules CD8+ totales par μL
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Mois 1, 2, 3, 6 et 12 après la transplantation
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Reconstitution des cellules B
Délai: Mois 1, 2, 3, 6 et 12 après la transplantation
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(Population B CD19 naïve/mémoire (taux de CD27-IgD+/CD19+, CD27+IgD+/CD19+, CD27+IgD-/CD19 et Ig) à 1, 2, 3, 6 et 12 mois après la GCSH, en mettant l'accent sur le temps nécessaire à l'arrêt de thérapie de remplacement des IgG par voie intraveineuse
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Mois 1, 2, 3, 6 et 12 après la transplantation
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Temps de greffe hématologique
Délai: Jusqu'à 24 mois après la transplantation
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ANC> 0,5 g / L et plaquettes> 20 g / L sur 3 jours consécutifs
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Jusqu'à 24 mois après la transplantation
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Phénotype immunitaire (analyse de cytométrie en flux) des différentes sous-populations de cellules TCRαβ +
Délai: Mois 1, 2, 3, 6 et 12 post-transplantation
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TCD4 Population naïve / mémoire (CD31 + CD45RA + / CD4 +, CD45RO / CD4 +; CD31 + CD4 +); TCD8 Population naïve / mémoire (CD45RA + CCR7 + / CD8 +, CD45RA-CCR7 + / CD8 +, CD45RA- CCR7 + / CD8 +, CD45RA-CCR7- / CD8 +), Mémoire effectrice CD8 RA + (TEMRA) (CD45RA + CCR7- / CD8 +); Cellules T régulatrices (CD4 + CD25 + CD127LOWCD25 +). • L'analyse des nombres CD3, CD4, CD8 sera réalisée si des lymphocytes totaux ≥ 500 / μl et une analyse des sous-populations de cellules T si les cellules CD3 + ≥ 1000 / μl |
Mois 1, 2, 3, 6 et 12 post-transplantation
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Évaluation de la greffe de chaque unité UCB au fil du temps par surveillance hématologique et analyse du chimérisme
Délai: à 1, 2, 3, 6 et 12 mois après la HSCT.
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à 1, 2, 3, 6 et 12 mois après la HSCT et entre M1 et M2 après la transplantation si nécessaire en fonction du chimérisme à M1 sur les neutrophiles, T, B, NK, PDC et les macrophages. • Le chimérisme est étudié sur le sang total et sur les cellules mononucléaires (c'est-à-dire les cellules reconditionnant après Ficoll) jusqu'à ce que le nombre total de lymphocytes soit ≥ 100 / μl. Lorsque le nombre de lymphocytes est ≥ 100 / μL, le chimérisme sera analysé sur les populations de cellules immunosélégées (CD15 + / CD3 + / NK, CD19 +) |
à 1, 2, 3, 6 et 12 mois après la HSCT.
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Incidence cumulée des épisodes aigus et chroniques de GVHD et de leur note selon la stadification de Glucksberg GVHD.
Délai: à 3, 6, 12 et 24 mois après la transplantation
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à 3, 6, 12 et 24 mois après la transplantation
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Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Collaborateurs
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Olivier HERMINE, PhD & MD, Assistance Publique - Hôpitaux de Paris
- Directeur d'études: Elisa MAGRIN, MD, Département de Biothérapie : Hôpital Necker Enfants malades
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Réel)
Achèvement primaire (Estimé)
Achèvement de l'étude (Estimé)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Réel)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (Réel)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
Plus d'information
Termes liés à cette étude
Mots clés
Termes MeSH pertinents supplémentaires
- Processus pathologiques
- Tumeurs par site
- Tumeurs
- Tumeurs par type histologique
- Maladies hématologiques
- Processus néoplasiques
- Leucémie myéloïde
- Leucémie
- Conditions pathologiques, signes et symptômes
- Maladies hémiques et lymphatiques
- Leucémie, myéloïde, aiguë
- Tumeur résiduelle
- Tumeurs hématologiques
- Thérapeutique
- Voies d'administration du médicament
- Pharmacothérapie
- Injections
Autres numéros d'identification d'étude
- APHP191116
- 2019-004883-23 (Numéro EudraCT)
Plan pour les données individuelles des participants (IPD)
Prévoyez-vous de partager les données individuelles des participants (DPI) ?
Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude
Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine
Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine
produit fabriqué et exporté des États-Unis.
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